Objectives: The purpose of this study was to characterize penicillin G resistant bacteria in surface water from pharmaceutical complex effluent. Methods: Surface water was sampled from pharmaceutical complex effluent in Gyeonggi-do Province, Korea in March 2015. Water samples were plated in triplicate on tryptic soy agar plates with 32 mg/L of penicillin G. Penicillin G resistant bacteria were selected from the effluent and subjected to 16S rRNA analysis for the penicillin G resistant species determination. Identified resistant strains were tested for resistance to various antibiotics. Results: Penicillin G resistant bacteria were present at 8.0% in terms of culturable heterotrophic bacteria. Identified penicillin G resistant bacteria exhibited resistance to more than nine of the antibiotics studied. These resistant bacteria are gram negative and are closely related to pathogenic species. Conclusion: Multi-antibiotic resistant bacteria in the surface water of pharmaceutical complex effluent suggest the need for disinfection and advanced oxidation processed for pharmaceutical effluent.
Objectives: To estimate the multi-antibiotic resistant bacterial contaminant load discharged from livestock farms, we randomly selected livestock farms specializing in cattle, swine, and fowl and collected bacterial strains from domesticated animal feces and compost samples. Problems with resistance to antibiotics are becoming worldwide issues, and as the consumption of antibiotics appears to be excessive in Korea as well, the emergence of antibiotic resistant bacteria shows the possibility to cause potentially serious social problems. Methods: To monitor multi-antibiotic resistant bacterial constituents, aerobic bacteria and Escherichia coli were isolated from domesticated animal feces and compost. Antibiotic resistance testing was performed by the disc diffusion method using 13 different antibiotics. Results: Examining the degree of sensitivity to antibiotics of the aerobic bacteria originating from domesticated animal feces, fowl feces showed the highest distribution rate (35.5%), followed by swine feces compost (23.1%), swine feces (18.2%), cattle feces (14.9%), and cattle feces compost (8.2%). Antibiotic resistance tests of aerobic bacteria and E. coli originating from domestic animals feces resulted in 83.6% and 73.5% of each strain showing resistance to more than one antibiotic, respectively. Conclusions: These results suggest that increasing multi-antibiotic resistant bacteria in the environment has a close relation to the reckless use of antibiotics in livestock.
Objectives: To estimate the microbial contaminant load discharged from livestock farms, we randomly selected livestock farmers of cattle, swine, and fowl and collected bacterial strains from domestic animals' feces and compost samples. Recently, as multi-antibiotic-resistant bacteria and super bacteria showing resistance to a variety of antibiotics have been reported one after another, the ecological and health hazard of antibiotic-resistant bacteria is emerging as an important issue. Methods: Monitored indicator microorganism constituents were totak coliform (TC), fecal coliform (FC), and aerobic bacteria. The multi-antibiotic-resistant bacteria were identified from investigated indicator microorganisms by 16S rRNA sequencing. Results: By microbiological analysis, the largest population of aerobic bacteria ($1.5{\times}10^5$ CFU/g) was found in cattle fecal compost, and total coliforms ($1.1{\times}10^7$ CFU/g) and fecal coliforms ($1.0{\times}10^5$ CFU/g) were found primarily in swine fecal compost, while the lowest population was found in fowl fecal compost. Among the 67 strains separated from aerobic bacteria, five strains expressing high antibiotic resistance were selected in each sample. We found the multi-antibiotic resistant strains to be Shigella boydii, Staphylococcus lentus, Acinetobacter sp. and Brevibacterium luteolum. Conclusions: These results suggest that increasing numbers of multi-antibiotic-resistant bacteria in the environment have a close relation to the reckless use of antibiotics with livestock.
Objectives: This study aims to examine the concentration, diversity, and antibiotic characteristics of penicillin G resistant enterobacteria present in pharmaceutical effluent. Methods: Water sampling was performed from a pharmaceutical company in Gyeonggi-do Province, Korea in March 2015. Water samples were plated in triplicate on tryptic soy agar plates with 32 mg/L of penicillin G. Penicillin G resistant enterobacteria were selected from the effluent and were subjected to 16S rRNA analysis for penicillin G resistant species determination. Identified resistant strains were tested for resistance to various antibiotics. Results: Penicillin G resistant enterobacteria were present at 6.2% as to culturable heterotrophic bacteria. Identified penicillin G resistant enterobacteria exhibited resistance to more than 10 of the antibiotics studied. These resistant bacteria are gram negative and are closely related to pathogenic species. Conclusion: Multi-antibiotic resistant bacteria in the effluent suggest a need for disinfection and advanced oxidation processes for pharmaceutical effluents.
Various antibiotics, that could induce the appearance of resistant microorganisms, have been used for treatment or prevention of bacterial diseases in marine and ornamental fish. We determined and characterized the level of antibiotic-resistant bacteria and proportion of multi-drug resistant bacteria in intestinal microflora of both marine fish cultured in Korea and imported ornamental freshwater fish. For this the bacterial species and resistance to antibiotics were investigated in intestine of rock bream Oplegnathus fasciatus cultured in Korea and pearl gourami Trichogaster leeri imported from Singapore to characterise. Although the bacterial species were different, proportions of resistant bacteria to single antibiotics or multi-drug were higher in intestinal microflora of pearl gourami Trichogaster leeri imported from Singapore than in rock bream Oplegnathus fasciatus cultured in Korea. These results indicate that various antibiotics have been being used before trading without measures in the market of asian ornamental fishes, providing high risks for the emergence of multi-drug resistant bacteria.
Objectives: This study aims to understand the concentration, diversity, and antibiotic characteristics of oxytetracycline resistant bacteria present in a surface water environment. Methods: Water sampling was performed in Cheongmi Stream in Gyeonggi-do, Korea in February and August 2014. Water samples collected from two sites were plated in triplicate on tryptic soy agar plates with 30 mg/L of oxytetracycline. Oxytetracycline resistant bacteria were selected from surface water in Cheongmi Stream and were subjected to 16S rDNA analysis for oxytetracycline resistant species determination. Identified resistant strains were tested for resistance to various antibiotics. Results: Results from this study indicate that the dominant resistant organisms in this aquatic environment are from family Acinetobacter and family Aeromonas. As to culturable heterotrophic bacteria, Oxytetracycline resistant bacteria were present 0.45-0.93% during winter and 0.08-0.38% during summer. Most oxytetracycline resistant bacteria exhibited resistance to more than ten of the antibiotics studied. The diversity of oxytetracycline resistant bacteria in winter was higher than in summer. Conclusion: Most of these resistant bacteria are Gram negative and are closely related to pathogenic species. These results suggest that increasing multi-antibiotic resistant bacteria in the surface water environment has a close relation to the reckless use of antibiotics in livestock.
Purpose: The emergency of multi-drug resistant stains of bacteria represents a challenge in the field of plastic surgery. Especially, MRSA(methycillin-resistant Staphylococcus aureus) and Pseudomonas aeruginosa have strong pathogenicity as well as multi-drug resistance so that they have become a lot more problematic strains. This study has been planned to reduce the bacterial burden by applying $Acticoat^{(R)}$(Smith & Nephew Healthcare, Hull, England)dressing into the chronic wounds infected by multi-drug resistant strains and to facilitate their healing. Methods: Nanocrystalline silver dressings($Acticoat^{(R)}$) were applied to chronic wound infected by MRSA or Pseudomonas aeruginosa. Multi-drug resistant bacteria were smeared over a slide glass using sterilized cotton swabs and gram stains were performed directly before and after applying $Acticoat^{(R)}$ dressings at 1, 24, 48 and 72 hours. The gram-stained slides were observed using an optical microscope magnified 1000 times(${\times}1000$). The bacterial counts of the control group(0 hour) were compared to those of the experimental groups(1, 24, 48, and 72 hour). Paired T-test was used to assess a statistical significance. MRSA was cultured in two BAPs(blood agar plate) and two MacConkey plates with streak plate method. None were interventions on one culture plate, while on the other culture plate, $Acticoat^{(R)}$ was placed in a square shape and cultured for 72 hours at $37^{\circ}C$, then plates were examined. Pseudomonas aeruginosa was cultured in the same manner as MRSA. Results: There are the large amount of declination of bacterial counts with statistical significance after $Acticoat^{(R)}$ dressing. The bacteria grew in culture plate without specific intervention, but no bacteria grew in culture plate with applying of $Acticoat^{(R)}$ dressing. Conclusion: We believe that $Acticoat^{(R)}$ dressing could be used as an effective method of treating chronic wounds which are infected by multi-drug resistant organisms.
Bacterial antibiotic resistance is a real and growing problem for both Gram positive and Gram negative bacterial pathogens in the hospital setting. Among Gram negative bacteria, the ubiquitous bacterium Pseudomonas aeruginosa is a particular concern in immunocompromised and burn patients. The present study evaluated antibacterial activity and efficacy of a Korean herbal medicine against eight multi-drug resistant clinical isolates of P. aeruginosa (0225, 0254, 0347, 0826, 1113, 1378, 1731, and 2492) isolated at Daegu Catholic University Hospital. Methanol extracts of Galla rhois (5 and 10 mg/mL) displayed inhibition diameters for isolate 2492 of 10 and 12 mm, respectively, in a conventional disc diffusion assay. In seven kinds of Korean herbal medicines, increased inhibitory power of Lonicera japonica, Gardenia jasminoides, Galla rhois, and Scultellaria baicalensis was evident with the fermentation of six kinds of lactic acid bacteria. Three lactic acid bacteria (Lactobacillus plantarum subsp. plantarum KCTC 3108, L. casei KCTC 3109, and L. fermentum KCTC 3112) were identified as excellent strains for the production of antibacterial materials. In the six Korean herbal medicine extracts, strong inhibitory activity of fermented Forsythia suspensa, Glycyrrhizae radix, Lycium chinense, Platycodon grum, and Schizandra chinensis with five kinds of lactic acid bacteria was evident for seven multi-drug resistant P. aeruginosa isolates.
There are a growing number of reports of hospital-acquired infections caused by pathogenic bacteria, especially methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Many plant products are now being used as a natural means of exploring antimicrobial agents against different types of human pathogenic bacteria. In this research, we sought to isolate and identify an active molecule from Sedum takesimense that has possible antibacterial activity against various clinical isolates of MRSA. NMR analysis revealed that the structure of the HPLC-purified compound was 1,2,4,6-tetra-O-galloyl-glucose. The minimum inhibitory concentration (MIC) of different extract fractions against numerous pathogenic bacteria was determined, and the actively purified compound has potent antibacterial activity against multidrug-resistant pathogenic bacteria, i.e., MRSA and its clinical isolates. In addition, the combination of the active compound and β-lactam antibiotics (e.g., oxacillin) demonstrated synergistic action against MRSA, with a fractional inhibitory concentration (FIC) index of 0.281. The current research revealed an alternative approach to combating pathogenesis caused by multi-drug resistant bacteria using plant materials. Furthermore, using a combination approach in which the active plant-derived compound is combined with antibiotics has proved to be a successful way of destroying pathogens synergistically.
In this study, lactic acid bacteria were isolated from 21 top-selling probiotic products on Korean market and their antimicrobial resistance were analyzed. A total 152 strains were claimed to be contained in these products and 70 isolates belonging to three genera (Bifidobacterium, Lactobacillus, and Lactococcus) were obtained from these products. RAPD-PCR showed diversity among isolates of the same species except for two isolates of Lacticaibacillus rhamnosus from two different products. The agar dilution method and the broth dilution method produced different MICs for several antimicrobials. With the agar dilution method, five isolates (three isolates of Bifidobacterium animalis subsp. lactis, one isolate of B. breve, one isolate of B. longum) were susceptible to all nine antimicrobials and 15 isolates were multi-drug resistant. With the broth microdilution method, only two isolates (one isolate of B. breve and one isolate of B. longum) were susceptible while 16 isolates were multi-drug resistant. In this study, only two AMR genes were detected: 1) lnu(A) in one isolate of clindamycin-susceptible and lincomycin-resistant Limosilactobacillus reuteri; and 2) tet(W) in one tetracycline-susceptible isolate of B. longum B1-1 and two tetracycline-susceptible isolates and three tetracycline resistant isolates of B. animalis subsp. lactis. Transfer of these two genes via conjugation with a filter mating technique was not observed. These results suggest a need to monitor antimicrobial resistance in newly registered probiotics as well as probiotics with a long history of use.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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