To investigate the ability to decondense sperm head penetrated into cytoplasm of the oocytes and the relationship between this ability and the level of glutatione (GSH) in mouse oocyte at various maturing stages. The fertilizability of oocytes at various stages of maturation the decondensation of sperm nucleus and the formation of male pronucleus, were observed and the levels of GSH were measured in oocyte at same stages. Besides, the relation between fertilizability and level of GSH in oocyte cytoplasm treated with L-buthionine-S, R-sulfoxmine (L-BSO), the inbitor of biosynthesis of GSH, was determined. The decondensation of sperm head was not found in GV stage and L-BSO treated oocytes. In maturing oocytes (GVBD, MI), the decondensation was found, but the formation of male pronucleus was not. The levels of GSH in oocyte cytoplasm were measured; 2.2 pmol per oocyte in the ovulated and the matured in vitro each, 1.0 pmol in GV intact oocyte, 1.3 pmol in GVBD, and 1.5 pmol in MI phase oocyte. In L-BSO treated oocytes the levels of CSH were measured 0.08~o.09 pmol per oocyte, slightly lower than GV stage oocyte. In conclusion, GSH in oocyte is supposed to be synthesized and storaged in cytoplasm during maturation. The failure of decondensation in the cytoplasm of GV stage and L-BSO treated is suggested that GSH is an essential factor in decondensing the sperm head and that the a certain level of GSH, more than in GV oocyte cytoplasm, is required in decondensation.
For many animals the centrosome consists of a pair of centrioles and surrounding pericentriolar materials (PCMs). PCMs have been known to play roles during cell division. It is known that centrioles are necessary to assemble centrosomal components. However, many types of oocytes undergo meiosis without centrioles. It is known that in nonmurine mammalian species, the sperm introduces an intact proximal centriole unlike sea urchin where two centrioles are introduced. In case of mouse sperm, the presence of centrosome is not clear In this study, a monoclonal antibody was developed to investigate centrosome during mouse germ cell and early embryo development. Results of immunostaining and Western blotting in CHO cells suggest that the monoclonal antibody recognizes a nuclear and centrosomal protein, thus called NCP. The NCP monoclonal antibody was used to screen a cDNA expression library prepared from 12.5 mouse brain to isolate NCP gene. Nucleotide size of NCP gene obtained from immunoscreening was about 5.5kb. It is determined that the NCP may be closely related with pericentriolar material -1 gene (Pcm-1) from the result of sequencing analysis. The molecular weight, 66kDa, calculated by known DNA sequence in database is consistent with that of detected from Western blotting using CHO cell lysates. Therefore, it is assumed that NCP may be alternative splicing form of Pcm-1 of which molecular weight is 228kDa. In mouse oocytes, NCP was distributed in nucleus as in CHO cells. It was shown that the NCP was localized around neck region, probably the centrosome in mouse neck region. Interestingly, dramatic change in distribution of NCP was also shown in male germ cell development. Finally, we observed the cellular distribution of NCP during early embryo development. NCP was detected in nucleus as well as centrosome foci. It is suggested that the centrioles reassembly we occurring in blastocysts and then affects the distribution of NCP.
In order to study process of spermiogenesis of the Korean manchurian field mouse, Apodemus spesiosus peninsulae, the testis obtained from sexually matured male reproductive organs, were examined with electron microscopy, and the following results were obtained based on the characters of cell differentiation. 1. According to the features of cell structure, spermiogenesis of the Apodemus spesiosus peninsulae was five phases: Golgi, cap, acrosome, maturation and spermiation phase. They were further subdivided into two steps of early and late phases respectively. Hence, the spermiogenesis consists of ten steps. 2. In the changes of the chromatin, the chromatin granules began to be condenced in the cap phase and regularizated at maturation phases, and a perfect nucleus of sperm was formed at the spermiation phases. 3. The formative period of sperm tail began to be develop in the early Golgi phase and completed at the spermiation phases 4. The outer dence fibers of middle piece were arranged in a horseshoe fashion. Nos. 1, 5, 6 and 9 of the outer dense fibers were larger than the others. The structure of axoneme in the middle piece was 9+2, and the axonemal complex consists of A and B microtubules, dynein arms and radial links.
Capacitation of mouse spermatozoa in vitro is brought about by epididymal secretions released into the m-Tgrode medium at the time of sperm collection. Epididymal mouse sperm suspension achived by centrifugation were preincubated for a total of 120min with aliquants being removed at 5, 30 and 120min. By gently centrifugation and resuspending in fresh medium, the fertilizing rate of unwashed 5-and 30-min suspensions was increased such that 30-min washed samples did not differ significiantly from full capacitated, highly fertile 120-min unwashed samples. When epididymal suspension was added fertilization of cumulus intact oocyte was markedly inhibited, although fertilization of zona free oocytes was unaffected. Washing sperm suspensions preincubated in the absence of $Ca^{2+}$ with the subsequent introduction of exogenous $Ca^{2+}$ resulted in a significant increase in fertilization rates over equivalent unwashed samples.
Lonicera caerulea (Honey berry, HB) has been used in medical treatment in Russia, Japan, China and Korea. It has high level of vitamin C and polyphenolics. Polyphenolics can improve anti-inflammatory effect and prevent cancer, diabetes mellitus type 2. Also, Vitamin C is a representative anti-oxidant. however, it is still unknown what effect it will have on the oxidation stress of the reproductive system. In previous studies, ROS can be produced when it is exposed to heat stress and has negative effect on sperm's maturation, capacitation, hyperactivation, acrosome reaction and fusion of egg and sperm. Therefore, the purpose of this study is to investigate the antioxidant effects of L. Caerulea on the sperm and mice. At first, it conducted using ICR mouse (n = 20) for 4 weeks. There are four groups of mice (n = 5 per group). Also, L. Caerulea was taken by oral gavage. Group I (control) kept at 23℃-27℃ and administer D.W (0.5 mL/day), Likewise, Group II (HB) kept at room temperature but gave HB (250 mg/kg, 0.5 mL/day), Group III (HB + HS) received heat stress (40℃) using hyperthermia induction chamber and gave HB at same dose. and Group IV (HS) exposed heat stress only. Mainly, we showed degree of gene expression using Western blot in SOD, HSP 70, 17β-HSD and Real-time PCR. It can find correlation between intracellular activity like steroid hormone, apoptosis under ROS and antioxidant activity of L. Caerulea.
Dioscorea bulbifera tubers contain several phytochemicals of pharmaceutical value. They have been traditionally used for treating various ailments, including postmenopausal symptoms. In the present study, we analyzed the direct effects of Dioscorea tuber extract on mouse spermatozoa. Its contraceptive effect was also evaluated by an intravaginal application before copulation. Mouse spermatozoa were cultured in vitro with various concentrations of the extract. After culturing, the spermatozoa were stained with fluorescein isothiocyanate peanut agglutinin or Coomassie blue to study the acrosome reaction, stained with trypan blue to study the viability, or treated with a hypo-osmotic medium to study the membrane damage. Estrous female mice were intravaginally injected with the extract and copulated with males. The extract induced acrosome exocytosis, viability loss, and membrane damage in a concentration-dependent manner. Female mice treated with the extract showed complete loss of fertility. These observations indicate that the Dioscorea bulbifera tuber extract could be used as a topical contraceptive. Infertility could be due to the precocious acrosome exocytosis of the spermatozoa or membrane damage.
Objective: The purpose of this study was to evaluate effects of goat milk and fermented goat milk on reproductive function and stamina of male rodent. Methods: Experiment I: Male ICR mouse was divided into four groups. Group 1 none-treated control; Group 2 received saline; Group 3 received cow milk 10 ml/kg per day for 15 days; Group 4 received goat milk 10 ml/kg per day for 15 days. The cauda epididymal sperm motility and testicular sperm production were investigated. Experiment II: Male SD rat was divided into three groups. Group 1 received saline; Group 2 received goat milk 10 ml/kg per day for 28 days; Group 3 received fermented goat milk 10 ml/kg per day for 28 days. The cauda epididymal sperm motility and testicular sperm production were also investigated. The concentration of testosterone in serum at 1 and 3 weeks after treatment was determined using Immulite 2000 kit. Testes, epididymis, prostate, and seminal vesicle were weighed. Experiment III: Male ICR mouse was divided into four groups. Group 1 none-treated control; Group 2 received saline; Group 3 received goat milk 10 ml/kg per day for 4 weeks; Group 4 received fermented goat milk 10 ml/kg per day for 4 weeks. After treatment, the mouse was forced to swim to test for stamina. Results: In Experiment I, the cauda epididymal sperm motility after in vitro culture for 1 or 3 h was significantly (p<0.05) higher in cow milk and goat milk than in the control and saline. There was no significant difference in the cauda epidymal sperm motility between cow and goat milk. The testicular spermatid number was significantly (p<0.01) higher in goat milk (222.8${\times}10^6$) than in the control (108.6), saline (98.2), and cow milk (118.2). In Experiment II, the cauda epididymal sperm motility after in vitro culture for 1 h was significantly (p<0.05) higher in fermented goat milk than in saline and goat milk. There was no significant difference in the cauda epidymal sperm motility between saline and goat milk but goat milk showed slightly higher sperm motility than saline. After in vitro culture for 3 h, the cauda epididymal sperm motility was significantly (p<0.01) higher in fermented goat milk and goat milk than in saline. The testicular spermatid number was significantly (p<0.05) higher in goat milk than in saline, and significantly (p<0.01) higher in fermented goat milk than in saline. And the serum testosterone levels of rats administered with goat milk or fermented goat milk were increased but were no significant difference among three groups. Also the prostate weight was significantly (p<0.05) increased in the goat and fermented goat milk. In Experiment III, the swimming time in the goat milk and fermented goat milk groups was significantly (p<0.01) longer than in the control and saline. There was no significant difference in the swimming time between goat and fermented goat milk but the fermented goat milk showed slightly longer swimming time than the goat milk. Conclusion: The cauda epididymal sperm motility, the testicular spermatid number and stamina were improved when the mice and rats were drunk with goat milk or fermented goat milk.
Guanidinoacetate N-methyltransferase (GAMT) catalyzes the last step of creatine biosynthesis and the resultant creatine plays an important role in cellular energy metabolism. GAMT is mainly found in liver, kidney as well as testis and epididymis. We have localized the site of creatine biosynthesis in mouse epididymis by immunoperoxidase staining of GAMT using anti-GAMT antibody. Gamt is extensively expressed in the microvilli of epididymal epithelial cells and also expressed weakly in the cyto plasm of the cells. The staining of GAMT was most prominent in the microvilli of proximal caput epididymis and the intensity was progressively diminished as the epididymal tubule proceeds toward caudal part. The result suggests that GAMT or Cr might be involved in sperm function and/or maturation process in epididymis.
Kim, N. H.;Cui, X. S;Kim, B. K .;S. H. Jun;D. I. Jin;Lee, S. H.;Park, C. S.
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.26
no.4
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pp.361-368
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2002
The onset of pronucleus formation and DNA synthesis in porcine oocytes following the injection of porcine or murine sperm was determined in order to obtain insights into species-specific paternal factors that contribute to fertilization. After 44h in vitro maturation, spermatozoa was injected into the cytoplasm of oocytes. After injection, all oocytes were transferred to NCSU23 medium and cultured at 39'E under 5% CO2 in air. Similar frequencies of oocytes with female pronuclei were observed after injection with porcine sperm or with murine sperm. In contrast, male pronuclei formed 8 to 9 h following the injection of porcine sperm, and 6 to 8 h following the injection of murine sperm. After pronucleus formation maternally derived microtubules were assembled and appeared to move both male and female pronuclei to the oocyte center. A few porcine oocytes entered metaphase 22 h after the injection of murine sperm, but normal cell division was not observed. The mean time of onset of S-phase in male pronuclei was 9.7 h following porcine sperm injection and 7.4 h following mouse sperm injection. These results suggested that DNA synthesis was delayed in both pronuclei until the sperm chromatin fully decondensed, and the sperm nuclear decondensing activity and microtubule nucleation abilities of the male centrosome are cell cycle dependent.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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