Goto, K.;Koba, M.;Takuma, Y.;Nakanishi, Y.;Ogawa, K.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.2
no.4
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pp.595-598
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1989
Bovine embryos/ova obtained from in-vitro fertilization were either co-cultured on a monolayer of bovine cumulus cells or cultured in medium alone. Embryos/ova co-cultured with cumulus cells developed to 8-cell (30.9%), morula (29.8%) and blastocyst stages (26.6%) after 3-4, 5-6, and 7-8 days of culture, respectively, while embryos/ova cultured in medium alone failed to develop beyond 8-cell (0-13.3%), morula (0-1.5%) and blastocyst stages (0%). The results of this study demonstrated the beneficial effect of cumulus cells on the development of bovine embryos.
Vitellogenin (VTG) and VTG mRNA induction by $estradiol-17\beta\;(E_2)$ were examined in the primary cultures of hepatocyte in the rainbow trout. Hepatocytes were precultured for 2 days, then $E_2$ was added and cultured for another 5 days. Media and hepatocytes were then analyzed by electrophoresis and Northern blotting for VTG and VTG mRNA, respectively. The hepatocytes were formed a few aggregates within 5 days without further spreading to a monolayer. Cell viability and high DNA content were maintained during the incubation. The hepatocyte culture with E2 induced a weak VTG band at a molecular weight of 175kDa on Day 2 after $E_2$ addition. The relative amount of VTG was expressed in percentage of total protein concentrations. VTG was gradually increased as $1.9\%$ on Day 2, $6.3\%$ on Day 4 and $7.3\%$ on Day 5. VTG mRNA band was detected at about 6.6 kb in the culture with $E_2$ at day 1 of culture. The level of VTG mRNA expression linearly increased with time until Day 5 (r=0.97).
The aim of this study is to optimize the monolayer cultivation of human articular chondrocytes in serum-free media. For this purpose, chondrocytes were isolated from human articular cartilage and monolayer cultures were performed in DMEM/F12 medium with 10% fetal bovine serum (FBS) or serum-free media (SFM) containing various supplements and epidermal growth factor (EGF). Western blotting analysis, RT-PCR, dimethylmethylene blue (DMB) assay were carried out to evaluate the synthesis of collagen type II (Col. II) and glycosaminoglycans (GAGs). We observed that SFM with EGF stimulated the cell growth while the amounts of synthesized GAGs and Col. II were decreased gradually. However, the Col. II mRNA level was increased when the SFM was replaced by media containing 10% FBS. This study suggests that it is possible to obtain large amount of human articular chondrocytes by short-term monolayer cultures in SFM.
We have fabricated gelatin-immobilized polyurethane foams (PUFG) by dipping polyurethane foam (PUF) in an aqueous solution containing gelatin and by subsequent reaction with glutaraldehyde after freeze-drying. Gelatin aqueous solutions of different concentrations were used as the dipping solutions to control the amount of immobilized gelatin. The average pore size of PUF decreased with an increase in gelatin concentration. It was found from the hepatocyte adhesion experiment that the amount of hepatocytes seeded on PUFG1, prepared by using a 1% aqueous gelatin solution, was higher than that on other PUFGs. The hepatocytes inoculated in PUFG1, were slightly aggregated as the incubation time increased. The cells inoculated in PUFG1 showed higher ammonia removal ability than those monolayer-cultured on a gelatin-immobilized polystyrene dish (PSG) after 1 and 4 days of incubation time. The inoculated cells exhibited higher albumin secretion relative to monolayer-cultured hepatocytes on PSG. Albumin secretion by hepatocytes seeded on PUFG1 was increased by the presence of serum and was further increased by both the presence of serum and cytokines. The results obtained from a 3-(3,4-dimethylthiazol-2yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) assay indicated that PUFG can provide a better microenvironment for hepatocyte culture along with nutrition and metabolite transfer through the high porosity of PUF.
This study was undertaken to investigate the effects of ITS and EGF on embryonic development of in vitro matured and fertilized bovine oocytes in culture medium su, pp.ementing with or without calf serum. When fertilized oocytes were cultured in TCM-199 containing 0, 0.1, 0.5 and 1.0\ulcorner/ml ITS with 5% calf serum, the rates of development to blastocyst stage and the cell number of blastocysts were not significantly different among all treatments. And also monolayer of cumulus/granulosa cells prepared in containing calf serum and ITS were no beneficial effects of embryonic development. On the other hand, when EGF was su, pp.imented to TCM-199 containing calf serum or calf serum free, embryonic development rates(24.0 2.8% to 29.2 1.7% or 8% to 9%) and cell number of blastocysts(p<0.05) were significantly increased compared with EGF-free(22.1 2.1 or 1.0%, p<0.05). But when fertilized oocytes were cultured with cumulus/granurosa cells in TCM-199 containing EGF and calf serum, the rate of embryos development to the blastocyst stage and cell number of blastocysts were not significantly different compared with EGF-free and any concentrations. These results showed that ITS and EGF was not improved the development of bovine embryo in vitro matured and in vitro fertilized with calf serum and/or monolayer of cumulus/granulosa cells.
In this experiment, oocytes were collected from goat ovaries available in slaughterhouse by follicle puncture method. Morphologically culturable type of oocytes which having compact, multilayered cumulus granulosa cell complex and evenly granulated cytoplasm, was separated under a stereozoom microscope. Oocytes were washed thoroughly in maturation medium containing TCM-199, $1{\mu}g/ml$ estradiol-$17{\beta}$, 0.5 ${\mu}g/ml$ FSH, $100{\mu}g/ml$ LH, 3 mg/ml BSA and 10% estrus goat serum. Washed oocytes were cultured into maturation medium on granulosa cell monolayer. Culture plate was then kept into $CO_2$ incubator at $38{\pm}1^{\circ}C$, maximum humidity and 5% $CO_2$ for 18 h. After maturation the oocytes were washed thoroughly with maturation medium containing polyvinyl alcohol (PVA) without serum and BSA and further cultured for 12 h for secretory proteins of oocytes. PVA medium was collected, pooled and concentrated by 5000 cut off centrisart. Secretory proteins were separated on 12.5% SDS-PAGE. A total number of 3.41 oocytes per ovary were obtained and 2.17 culturable oocytes per ovary were cultured into maturation medium. After 18 h of maturation, 4,567 oocytes (1.82 oocytes per ovary) were further cultured into serum and BSA free PVA medium for its secretory proteins. Four secretory proteins of oocytes with approximately molecular weight of 45, 55, 65 and 95 kDa were obtained on SDS-PAGE in silver staining and three proteins with approximately molecular weight of 45, 55 and 65 kDa in Coomassie brilliant blue staining. In conclusion, four secretory proteins with approximately molecular weight of 45, 55, 65 and 95 kDa was obtained from in vitro cultured oocytes of goats.
This study of culturing testicular cell types in vitro has potential to be an invaluable tool for assessing the mechanisms of testicular toxicity, especially those of intragonadal interaction and spermatogenesis. Combined with the Sertoli/germ cell cultures, Leydig cells provide comprehensive and detailed information on the action of testicular toxicants at the level of the testis. Sertoli/germ cell were isolated and incubated well in vitro from 20~30 g rats and Leydig cells from 250~300 g rats. The Sertoli cells isolated from the testis of the SD rats grew into monolayer on about the 2nd~3rd day of culture, an appreciable cell increment being observed between the 4th~5th day. The Leydig cells isolated from the testis of the SD rats grew into a monolayer on about the 3rd-4th day of culture, an appreciable cell increment being observed between the 5th-7th day. These results suggest that Sertoli and Leydig cells can be cultured as a male fertility evaluation method alternative to the in vivo/conventional fertility test method and further study for the physio-chemical determination is needed.
This study was conducted to investigate the effects of co-culture for the development rate to morula /blastocyst stages of early porcine embryos, derived from oocytes matured and fertilized in vitro, with porcine endometrial cell monolayers(PEM) in the two different media, respectively. The rates of embryos developed to 2-, 4-, 8~16-cell and morula /blastocyst stage were 49.6, 40.5, 28.2 and 15.3% in Ham's F-10 with PEM, and 55.3, 45.9, 32.7, and 17.6% in TCM-HEPES with PEM, respectively. The above development rates to morula /blastocyst stages were significantly higher than those of the embryos cultured in the Ham's F-10 and TGM-HEPES without PEM(P<0.05). The in vitro development rates to the morula /blastocyst stage of 1-cell embryos cultured in Ham's F-10 and TCM-HEPES without PEM were 0~1.2%. Especially, most of embryos were observed to arrest the development beyond 4-cell stages. As shown in the above results, the co-culture of in vitro produced porcine embryos with PEM in the two different media enhanced the development of fertilized eggs to morula /blastocyst stages in vitro. However, we didn't find out any differences for the in vitro development to morula /blastocyst stages between Ham's F-10 and TcM-HEPES media.
Ingrid Pernet;Corinne Reymermier;Anne Guezennec;Jacqueline Viac;Branca, Jean-Eric;Joelle Guesnet;Eric Perrier
Proceedings of the SCSK Conference
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2003.09a
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pp.85-96
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2003
Normal human skin, constantly challenged by environmental micro-organisms, has an innate ability to fight invading microbes through antimicrobial peptides. These peptides, described in both plant and animal kingdoms are able to inactivate a broad spectrum of micro-organisms. Mammalian defensins constitute one of the most common antimicrobial peptide family. Among the three human beta-defensins hBD1, hBD2 and hBD3 produced in epithelia, only hBD2 and hBD3 are inducible and additionally have been described as expressed by differentiated keratinocytes at site of inflammation and infection. The aims of these studies were to define a cell culture model in which the basal production of hBD could be detected and up-regulated in order to enhance skin auto-protection against micro-organisms. A specific Polymerase Chain Reaction method have been developed for hBD2 and hBD3 mRNA detection in non-differentiated monolayer keratinocytes cell culture. We have been able to demonstrate that in vitro, hBD2 and hBD3 expression in normal human keratinocytes could be detected and enhanced by TNF-alpha and IFN-gamma, in hypercalcic culture conditions. This research opened the possibility of the development of cosmetic active compounds, able to induce the expression of skin natural antibiotic peptides responsible about microflora ecology of the skin.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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