In this study, we analyzed the phylogenetic characterization of root-knot nematodes (Meloidogyne spp.) in soils from fruits and vegetables greenhouses in Korea. Soil samples were collected from 12 greenhouse fields in which tomato, cucumber, watermelon, and Oriental melon were being cultivated. Meloidogyne spp. were detected in all the soil samples at an average number of $72{\pm}6$ nematodes/300 g of soil to $2,898{\pm}468$ nematodes/300 g of soil. Phylogenetic analysis using polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism was attempted for the second-stage juveniles (J2) of Meloidogyne spp. collected from the greenhouse soils. Twelve Meloidogyne spp. from the greenhouse soils were classified into two groups by using HinfI digestion of mitochondrial DNA, resulting in 900, 410, 290, and 170 bp fragments (group A) and 900, 700, and 170 bp fragments (group B). Phylogenetic analysis based on mitochondrial DNA sequences (1,483-1,521 bp) showed that nine group A isolates were identified as Meloidogyne incognita (99.73-99.93%) and three group B isolates showed 99.54-99.73% similarity to Meloidogyne arenaria.
The synthesis of a novel series of nickel(II) complexes with new ligands derived from hydrazones of isoniazid have been reported in present work. The complexes have general compositions [$Ni(L)_2X_2$] or $[Ni(L)_3](ClO_4)_2$ {L = N-isonicotinamido-furfuraldimine (INH-FFL), N-isonicotinamido-3',4',5'-trimethoxybenzaldimine (INH-TMB) or N-isonicotinamido-cinnamalidene (INH-CIN) and X = $Cl^-$, ${NO_3}^-$, $ NCS^-$ or $CH_3COO^-$}. The ligands hydrazones behave as neutral bidentates (N and O donor) through the carbonyl oxygen and azomethine nitrogen. The new complexes with octahedral geometry have been characterized by elemental analysis, molecular weight determinations, magnetic susceptibility/moment, thermogravimetric, electrochemical and spectroscopic studies viz. infrared and electronic spectra. On the basis of conductivity measurements in nitrobenzene ($PhNO_2$) solution the [$Ni(L)_2X_2$] and $[Ni(L)_3](ClO_4)_2$ complexes have been found to be non-electrolytes and 1:2 electrolytes, respectively. Thermal properties have also been investigated, which support the geometry of the complexes. Antibacterial and antifungal properties of nickel(II) complexes and few standard drugs have also been examined and it has been observed that the complexes have moderate antibacterial activities.
5,10-Methenyltetrahydrofolate synthetase from chicken liver was purified through 30-70% ammonium sulfate fractionation, Q Sepharose Fast Flow anion exchange and Source 15Phe hydrophobic interaction chromatography. Specific activities of cell extract, ammonium sulfate, Q Sepharose Fast Flow and Source 15Phe were 0.0085, 0.031, 0.80 and 1.27 U/mg, respectively. Purification fold activities of cell extract, ammonium sulfate, Q Sepharose Fast Flow and Source 15Phe were 1, 3.7, 94.1 and 149.4, respectively. HPLC gel permeation chromatography and SDS-polyacrylamide electrophoresis experiments indicated that the enzyme is a monomeric protein with a molecular weight of 22.8 kDa. Km for 5-methyl THF and Mg-ATP were $7.1\;{\mu}M$ and $63\;{\mu}M$, respectively. Optimum temperature and pH were $30^{\circ}C$ and 6.0, respectively. The data for metal ion specificity and stoichiometry showed that the maximum activity was obtained with a 1:l. ratio of $Mg^{2+}$. The ATP and Km values increased in the order of MgATP, MgCTP, MgUTP and MgGTP, and the maximum activities also decreased in the same order, indicating MgATP as the most efficient substrate. The enzyme was chemically modified only by tetranitrometane and 1-ethyl-3-(3-dimethyl aminopropyl)-carbodiimide, indicating that tyrosine and carboxylate are present in the active site.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1987.07a
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pp.133-148
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1987
Gibberellin(GA) 3-$\beta$ hydroxylation is very important for the shoot elogation in the higher plants, since only 3$\beta$-hydryoxylated GAs promote shoot elogation in several plants. Fluctuation of 3$\beta$-hydryoxylase activity was examined during seed maturation using two cultivars of , P. vulgaris, Kentucky Wonder (normal) and Masterpiece (dwarf). Very immature seeds of both cultivars contain high level of 3$\beta$-hydroxylase activity (per mg protein). Both cultivars showed maximum of enzyme activity (per seed) in the middle of their maturation process. Gibberellin 3$\beta$-hydroxylase catalyzing the hydroxylation of GA20 to GA1 was purified 313-fold from very early immature seeds of P. vulgaris. Crude soluble enzyme extracts were purified by 15% methanol precipitation, hydrophobic interaction chromatogrphy, DEAE ion exchange column chromatography and gel filtration HPLC. The 3$\beta$-hydroxylase activity was unstable and lost much of its activity duting the purification. The molecular weight of purified enzyme was extimated to be 42, 000 by gel filtration HPLC and SDS-PAGE. The enzyme exhibited maximum activity at pH 7.7. The Km values for [2.3-3H] GA20 and [2.3-3H]GA9 were 0.29 $\mu$M and 0.33 $\mu$M, respectively. The enzyme requires 2-oxoglutarate as a cosubstrate; the Km value for 2-oxoglutarate was 250 $\mu$M using 3H GA20 as a substrate. Fe2+ and ascorbate significantly activated the enzyme at all purification steps, while catalase and BSA activated the purified enzyme only. The enzyme was inhibited by divalent cations Mn2+, Co2+, Ni2+, Cu2+, Zn2+, Cd2+ and Hg2+. Effects of several GAs and GA anaogues on the putrified 3$\beta$-hydroxylase were examined using [3H]GA9 and GA20 as a substrates. Among them, GA5, GA9, GA15, GA20 and GA44 inhibited the enzyme activity. [13C, 3H] GA20 was converted by the partially purified enzyme preparation to [13C, 3H]GA1, GA5 and GA6, which were identified by GC-MS, GA9 was converted only GA4, GA15 and GA44 were converted to GA37 and GA38, respectively. GA5 was epoxidized to GA6 by the preparation. This suggests that 3$\beta$-hydroxylation of GA20 and epoxidation of GA5 are catalyzed by the same enzyme in P, vulgaris.
The D-xylulokinase from Candida sp. L-16 was purified through a sequence of ammonium sulfate fractionation, DEAE-cellulose chromatography, Sephadex G-100 and Sephadex G-200 gel filtration. The specific activity of the purified Dxylulokinase was increased to 23.2 fold and the yield was 11.2%. The enzyme was showed to be a single protein band by SDS-PAGE. The molecular weight of the enzyme was 150,000 dalton, this enzyme was identified to be a dimer with two subunits. The optimum conditions of the enzyme were pH 8.0 and 40$\^{C}$, respectively. The enzyme was relatively stable between pH 7.0 to pH 9.0, but it was unstable over 30$\^{C}$. The enzyme showed substrate specificity on D-xylulose, D-arabinose and D-ribose, Km value and Vmax for D-xylulose were 0.042 mM and 117 units/ml, respectively. The activation energy of the enzyme was 4.75 Kcal/mol. The one was inhibited by metabolic intermediates such as 6-phosphogluconic acid, 2-keto-gluconic acid. The enzyme was activated by EDTA and thiol compounds such as cysteine-HCI, DTT and glutathione.
The prcx.iuction of extracellular 1,4-${\beta}$-glucanase by Cellulomonas sp. CS1-1 on microcrystalline cellulose, sigmacell was maximal after 5-day cultivation as 280 units/mL, which was three times higher than the level produced on carboxymethyl cellulose. A carboxymethyl cellulase containing the carbohydrate of 8.2% was purified from the culture filtrate by successive procedures of column chromatographies. Purification factor was calculated as 22-folds with the specific carboxymethyl cellulase activity of 31.9 units/mg. The molecular weight and isoelectric point of the purified enzyme were 54,000 and pI 5.4, respectively. The optimal pH and temperature were 6.0 and $45^{\circ}C$, and the enzyme was stable between pH 6.5 and 7.5 and below $50^{\circ}C$. The estimated Km and Vmax were 10 mg/mL and $6.25{\mu}mol/min$ for carboxymethyl cellulose and 30.3 mg/mL and $2.85{\mu}mol/min$ for sigmacell, respectively. The enzyme was partially inhibited by $Ag^+$, $Zn^{+{+}}$, $Fe^{+{+}}$ and EDTA, while completely inhibited by $Cd^{+{+}}$ and $Hg^{+{+}}$ at 1 mM concentration.
An, Eun-Jung;Shim, Jong-Won;Choi, Jang-Won;Kim, Jin-Woong;Park, Won-Seok;Kim, Han-Kon;Park, Ki-Dong;Han, Sung-Sik
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.36
no.2
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pp.105-113
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2010
This study introduces a flexible approach to enhance skin permeation by using ethosomes with deformable lipid membranes as well as controllable sizes. To demonstrate this, a set of ethosomes encapsulating an anti-hair loss ingredient, Triaminodil$^{TM}$, as a model drug, were fabricated with varying their size, which was achieved by solely applying the different level of mechanical energy, while maintaining their chemical composition. After characterization of the ethosomes with dynamic light scattering, transmission electron microscopy, and deformability measurements, it was found that their membrane deformability depended on the particle size. Moreover, studies on in vitro skin permeation and murine anagen induction allowed us to figure out that the membrane deformability of ethosomes essentially affects delivery efficiency of Triaminodil$^{TM}$ through the skin. It was noticeable in our study that there existed an optimum particle size that can not only maximize the delivery of the drug through the skin, but also increase its actual dermatological activity. These findings offer a useful basis for understanding how ethosomes should be designed to improve delivery efficiency of encapsulated drugs therein in the aspects of changing their length scales and membrane properties.
Background: Endophytic fungi play an important role in balancing the ecosystem and boosting host growth. In the present study, we investigated the endophytic fungal diversity of healthy Panax notoginseng and evaluated its potential antimicrobial activity against five major phytopathogens causing root-rot of P. notoginseng. Methods: A culture-dependent technique, combining morphological and molecular methods, was used to analyze endophytic fungal diversity. A double-layer agar technique was used to challenge the phytopathogens of P. notoginseng. Results: A total of 89 fungi were obtained from the roots, stems, leaves, and seeds of P. notoginseng, and 41 isolates representing different morphotypes were selected for taxonomic characterization. The fungal isolates belonged to Ascomycota (96.6%) and Zygomycota (3.4%). All isolates were classified to 23 genera and an unknown taxon belonging to Sordariomycetes. The number of isolates obtained from different tissues ranged from 12 to 42 for leaves and roots, respectively. The selected endophytic fungal isolates were challenged by the root-rot pathogens Alternaria panax, Fusarium oxysporum, Fusarium solani, Phoma herbarum, and Mycocentrospora acerina. Twenty-six of the 41 isolates (63.4%) exhibited activity against at least one of the pathogens tested. Conclusion: Our results suggested that P. notoginseng harbors diversified endophytic fungi that would provide a basis for the identification of new bioactive compounds, and for effective biocontrol of notoginseng root rot.
The $(Ca^{2+}+Mg^{2+})$-ATPase has been purified homogeneously from sarcoplasmic reticulum of rat skeletal muscle by sucrose density gradient centrifugation. The purified enzyme has a molecular weight of 115,000 as judged by polyacrylamide gel electrophoresis in the presence of sodium dedecyl sulfate, and therefore has the same size of the enzyme in rabbit and chick skeletal muscle. $Ca^{2+}, Mg^{2+}, Fe^{2+}, Co^{2+}, and Mn^{2+}$ at 50 $\\muM$ show stimulatory effect on the ATP-ase, while $Zn^{2+}, Cu^{2+}, and Hg^{2+}$ inhibit it at the same concentration. The ATPase activity is insensitive to antimalarial drugs such as quinine and quinacrine, but is sensitive to inhibition by p-hydroxymecurie benzoate and phenylmethylsulfonylfluoride. The enzyme has optimum pH of 6 to 7 and Km value for ATP is estimated to be 98 $\\muM$. Thus, a number of biochemical properties of this enzyme appear to be different from those of the enzyme that have been isolated from rabbit skeletal muscle. The $(Ca^{2+}+Mg^{2+})$-ATPase appears to be selectively degraded in microsomal fraction. The activity of metalloendoprotease is evident in the microsomal preparation when assayed by radioactively labeled protein substrate, such as $^{3}H-casein and $^{125}I$-insulin. However, it is presently unclear whether the metalloendoprotease is responsible for the degradation of the $(Ca^{2+}+Mg^{2+})$-ATPase.
Pretense produced by Bacillus subtilis PANH765 was purified from culture supernatant by using ammonium sulfate fractionation DEAE-cellulose ion exchange chromatography, and gel filtration with Sephacryl S 200 HR and Sepharose CL-6B. DEAE-cellulose ion exchange column chromatography, separated the pretense into one fraction. This fraction was further purified using Sephacryl S 200 HR and Sepharose CL-6B gel titration. The molecular mass of pretense was estimated to be 35.0 kDa by the SDS-PAGE and gel filtration using Sepharose CL-6B. The results indicated that the purified pretense are monomeric proteins. Specific activity and purification folds of pretense were 657 U/mg and 4.35, respectively. The optimum temperature, optimum pit stable at a temperature range and pH ranges for the purified protease were 65$^{\circ}C$, 7.05, 50 ∼ 75$^{\circ}C$ and 6.0 ∼ 7.5, respectively. The pretense activity was decreased by the presence of PMSF and DFP, which the protease activity was increased by the presence of Na$\^$+/, K$\^$+/, Mg$\^$2+/ and NH$_4$$\^$+/ ions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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