To improve the yield of genuine aglycones from glycosides, the conditions of alkaline hydrolysis were investigated, and a modified method was established. The modified method empolyed pyridine as an aprotic solvent. To complete the hydrolysis and obtain 20(S)-protopanaxadiol (1) and 20(S)-protopanaxatriol(2), which are the genuine aglycones of ginsenosides, total ginsenosides were refluxed with sodium methoxide in pyridine. Addition of methanol, a protic polar solvent to the reaction miuxture, led partial hydrolysis yielding a mixture of the genuine prosapogenols. Of the prosapogenols compound 3 and 6 characteristically possessed D-glucopyranosyl moiety attached at the sterically hindered C-20 hydroxyl group. 3 and 6 were not obtaijned by other hydrolysisw methods except by the soil bacterial hydrolysis.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.26
no.3
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pp.422-429
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1997
For the complete and accurate amino acid determination of protein and food samples, 3 different hydrolysis procedures have been conducted in parallel for each sample, which include the alkaline hydrolysis for tryptophan determination, performic acid oxidation prior to the acid hydrolysis for the determination of cysteine and cystine, and the 6N HCl hydrolysis for the determination of the rest of amino acids. In the present study, amino acid concentrations obtained from the modified single hydrolysis procedure were compared with the values from the conventional hydrolysis procedures in casein and nine food and composite dish samples. In most of the samples tested, the modified single hydrolysis procedure gave significantly higher values of cysteins and cystein compared to the performic acid oxidation method, but resulted in a considerable destruction of tryptophan in food and composited dish samples. There was no consistent difference in the rest of amino acid concentrations between the two hydrolysis systems. Therefore, for complete amino acid determination of various foods and composite dishes, the single hydrolysis method may replace the 6N HCl hydrolysis and performic acid oxidation methods, and thereby reduces 3 hydrolyses to 2 steps with much higher recoveries of the sulfur containing amino acids.
Dry corn gluten meal of 70% protein content was enzymatically hydrolyzed by alkaline protease in a pH-state reactor. Such process variables as temperature, pH, and enzyme-to-substrate ratio were varied, and at each condition degree of hydrolysis was monitored and calculated. The ultimate degree of hydrolysis, which ranged between 25 and 28% based on gluten protein mass, was not significantly affected by the process variables. However, $50^{\circ}C$ and pH 9-10 appeared optimum. Kinetic analysis indicated enzyme deactivation was negligible during the hydrolysis, and the experimental data were near perfectly fitted to the model kinetic equation which was modified after neglecting enzyme deactivation term. The enzyme reaction was 1$100\times$ scaled up and basically the same hydrolysis performance was resulted. Amino acid analysis showed the hydrolyzate was relatively rich in glutamine/glutamic acid, leucine, and alanine at 19.6, 16.1, and 12.3 mole %, respectively.
The effects of enzymatic modification with pepsin and actinidin was studied on molecular weight distributions and functional properties of hydrolysates from soy protein isolate (SPI) differing in degree of hydrolysis. The hydrolyzed SPI by pepsin showed 41.5% degree of hydrolysis after 5 min, and maximum hydrolysis was obtained after 2 hours. Actinidin hydrolyzed SPI 26.71% degree after 1 hour. On SDS-PAGE, native SPI showed 9 distinguishable bands on SDS-PAGE gel. Pepsin treated SPI showed one broad band in the lower part of gel. This band was shifted further to the bottom of the gel and became faint as hydrolysis time increased. While actinidin treated SPI showed different SDS-PAGE pattern from pepsin. However PAGE patterns were similar with pepsin and actinidin treated groups. With pepsin treatment, solubility of SPI distinctively increased around isoelectric point(pI). Emulsifying activity (EA) and emulsifying stability (ES) showed marked increase over pH range of $3.0{\sim}8.0$. 5 min modified group had most excellent foam expansion (FE). Foam stability (FS) was increased as pepsin treatment time increased at pI. With actinidin treatment, solubility was increased. 60 min modified SPI had the most effective EA at pH 4.5. However ES was not effected by actinidin treatment. 5 min modified group was most effect in FE. FS was higher at alkaline pH.
Park, Sang-Wook;Moon, Jin-Bok;Ko, Myung-Sook;Kim, Gun-Woo
Applied Chemistry for Engineering
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v.3
no.1
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pp.119-129
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1992
The rates of mass transfer with the alkaline hydrolysis of ethyl acetate and n-butyl acetate were measured by using a modified Lewis cell. The rates of mass transfer with chemical reaction were independent of the speed of agitation, and the reaction enhancement factors were independent of the ionic strength. The second order reaction rate constants of ethyl acetate and n-butyl acetate could be obtained from an approximate solution of a diffusion equation by film theory, and their values were $0.041m^3/kg\;mol{\cdot}s$ and $0.338m^3/kgmol{\cdot}s$, respectively.
Polyacrylonitrile (PAN) fiber was grafted with casein after alkaline hydrolysis and chlorination reactions of the original fiber. The structures and morphologies of the casein grafted fiber were characterized by Fourier transform infrared spectroscopy (FTIR), X-Ray diffraction (XRD), and scanning electron microscope (SEM). Moisture absorption, specific electric resistance, water retention value, and mechanical properties were also investigated. The results showed that casein was grafted onto the surface of the PAN fiber and the grafted PAN fiber presented better hygroscopicity compared with the untreated fiber. With proper tensile strength, the modified fiber could still meet the requirement for wearing. A mechanism was proposed to explain the deposit of casein on the synthetic acrylic fiber.
Glucoamylases catalyze a stepwise hydrolysis of starch with the production of glucose. In order to make an efficient conversion of starch into glucose, glucoamylases prepared from Rhizopus spp. (Sigma Co.) were attached to a porous glass and immobilized by glutaraldehyde-induced crosslinking. The porous glass used in this study was $ZrO_2$ coated, $40{\sim}80$ mesh, 550 A pore diameter. Using the forgoing glass, we could couple as much as 50mg of protein per gram of carrier. Substrate for the glucoamylase was an enzyrne-modified thin-toiling 30% cornstarch solution used where greater solubility and low viscosity are desired. Immobilized glucoamylase had an optimum pH 7.0 to the alkaline side of soluble enzyme. Km values of immobilized and soluble enzyme were 1.04 mM and 1.25mM, respectively. The thermal stability of glucoamylase was increased by immobilization and the immobilized enzyme showed an optimum temperature at $40{\sim}60^{\circ}C$. The continuous conversion of cornstarch to glucose by use of immobilized glucoamylase resulted in the production of a more than 90 DE product.
Whey protein concentrate (WPC) is widely used to increase the nutritional and functional properties of food. In this study, the physiochemical and functionality of WPC-30 hydrolysates were examined to evaluate the possibility of application in the food industry. The WPC-30 was manufactured using ultrafiltration and spray-drying, and then hydrolyzed with proteolytic enzyme including alcalase, flavourzyme, nuetrase and protamex. Enzymatic hydrolysis had a significant influence on the physicochemical properties as evident from the increased foaming capacity, solubility. Alcalase caused highest protein hydrolysis (3.26%) and the bitterness. Foaming capacity was largest in WPC-30 hydrolysate treated with flavourzyme. Protein solubility at various levels of pH was highest in protamex-treated WPC-30 hydrolysate. However, the solubility of WPC-30 hydrolysates was significantly improved in alkaline condition than in acidic and neutral conditions. The study revealed that spray dried enzyme modified WPC can be used in various functional food.
Active lipase-producing bacterium Burkholderia gladioli Bps-1 was rapidly isolated using a modified trypan blue and tetracycline, ampicillin plate. The electro-phoretically pure enzyme was obtained by purification using ethanol precipitation, ion-exchange chromatography, and gel filtration chromatography. The molecular weight was 34.6 kDa and the specific activity was determined to be 443.9 U/mg. The purified lipase showed the highest activity after hydrolysis with $p-NPC_{16}$ at a pH of 8.5 and $50^{\circ}C$, and the $K_m$, $k_{cat}$, and $k_{cat}/K_m$ values were 1.05 mM, $292.95s^{-1}$ and $279s^{-1}mM^{-1}$, respectively. The lipase was highly stable at $7.5{\leq}pH{\leq}10.0$. $K^+$ and $Na^+$ exerted activation effects on the lipase which had favorable tolerance to short-chain alcohols with its residual enzyme activity being 110% after being maintained in 30% ethanol for 1 h. The results demonstrated that the lipase produced by the strain B. gladioli Bps-1 has high enzyme activity and is an alkaline lipase. The lipase has promising chemical properties for a range of applications in the food-processing and detergent industries, and has particularly high potential for use in the manufacture of biodiesel.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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