The shape and activity of mitochondria are tightly regulated by fusion and fission processes that are essential for maintaining normal cellular function. However, little is known about the involvement of mitochondrial dynamics in the development of the immune system. In this study, we demonstrate that mitochondrial dynamics play a role in the differentiation and migration of immature dendritic cells (imDCs). We show that mitochondrial elongation is induced during GM-CSF-stimulated differentiation of bone marrow progenitors to imDCs accompanied by upregulation of mitochondrial fusion proteins. These processes precede the changes in mitochondrial morphology and connectivity that occur during differentiation. Mfn2 and OPA1, but not Mfn1, are transcriptionally upregulated during differentiation; however, knockdown of Mfn2 and OPA1 does not induce any change in expression of CD11c, CDC80, or CD86. Notably, knockdown of Mfn2 or OPA1 by siRNA in imDCs significantly reduces CCR7 expression and CCL19-mediated migration. These results suggest that the mitochondrial fusion-related proteins Mfn2 and OPA1 are upregulated during bone marrow progenitor differentiation and promote the migration of imDCs by regulating the expression of CCR7.
Fission and fusion of mitochondrial tubules are the main processes determining mitochondrial shape and size in cells. As more evidence is found for the involvement of mitochondrial morphology in human pathology, it is important to elucidate the mechanisms of mitochondrial fission and fusion. Mitochondrial morphology is highly sensitive to changing environmental conditions, indicating the involvement of cellular signaling pathways. In addition, the well-established structural connection between the endoplasmic reticulum (ER) and mitochondria has recently been found to play a role in mitochondrial fission. This minireview describes the latest advancements in understanding the regulatory mechanisms controlling mitochondrial morphology, as well as the ER-mediated structural maintenance of mitochondria, with a specific emphasis on mitochondrial fission.
Mitochondrial integrity is critical for maintaining proper cellular functions. A key aspect of regulating mitochondrial homeostasis is removing damaged mitochondria through autophagy, a process called mitophagy. Autophagy dysfunction in various disease states can inactivate mitophagy and cause cell death, and defects in mitophagy are becoming increasingly recognized in a wide range of diseases from liver injuries to neurodegenerative diseases. Here we highlight our current knowledge on the mechanisms of mitophagy, and discuss how alterations in mitophagy contribute to disease pathogenesis. We also discuss mitochondrial dynamics and potential interactions between mitochondrial fusion, fission and mitophagy.
Cardiomyopathy is an inherited or acquired disease of the myocardium, which can result in severe ventricular dysfunction. Mitochondrial dysfunction is involved in the pathological process of cardiomyopathy. Many dysfunctions in cardiac mitochondria are consequences of mutations in nuclear or mitochondrial DNA followed by alterations in transcriptional regulation, mitochondrial protein function, and mitochondrial dynamics and energetics, presenting with associated multisystem mitochondrial disorders. To ensure correct diagnosis and optimal management of mitochondrial dysfunction in cardiomyopathy caused by multiple pathogenesis, multidisciplinary approaches are required, and to integrate between clinical and basic sciences, ideal translational models are needed. In this review, we will focus on experimental models to provide insights into basic mitochondrial physiology and detailed underlying mechanisms of cardiomyopathy and current mitochondria-targeted therapies for cardiomyopathy.
Mitochondrial injury in renal tubule has been recognized as a major contributor in acute kidney injury (AKI) pathogenesis. Ischemic insult, nephrotoxin, endotoxin and contrast medium destroy mitochondrial structure and function as well as their biogenesis and dynamics, especially in renal proximal tubule, to elicit ATP depletion. Mitochondrial fatty acid ${\beta}$-oxidation (FAO) is the preferred source of ATP in the kidney, and its impairment is a critical factor in AKI pathogenesis. This review explores current knowledge of mitochondrial dysfunction and energy depletion in AKI and prospective views on developing therapeutic strategies targeting mitochondrial dysfunction in AKI.
Choi, He Yun;Park, Ji Hye;Jang, Woong Bi;Ji, Seung Taek;Jung, Seok Yun;Kim, Da Yeon;Kang, Songhwa;Kim, Yeon Ju;Yun, Jisoo;Kim, Jae Ho;Baek, Sang Hong;Kwon, Sang-Mo
Biomolecules & Therapeutics
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v.24
no.4
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pp.363-370
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2016
Cardiovascular disease is the most common cause of death in diabetic patients. Hyperglycemia is the primary characteristic of diabetes and is associated with many complications. The role of hyperglycemia in the dysfunction of human cardiac progenitor cells that can regenerate damaged cardiac tissue has been investigated, but the exact mechanism underlying this association is not clear. Thus, we examined whether hyperglycemia could regulate mitochondrial dynamics and lead to cardiac progenitor cell dysfunction, and whether blocking glucose uptake could rescue this dysfunction. High glucose in cardiac progenitor cells results in reduced cell viability and decreased expression of cell cycle-related molecules, including CDK2 and cyclin E. A tube formation assay revealed that hyperglycemia led to a significant decrease in the tube-forming ability of cardiac progenitor cells. Fluorescent labeling of cardiac progenitor cell mitochondria revealed that hyperglycemia alters mitochondrial dynamics and increases expression of fission-related proteins, including Fis1 and Drp1. Moreover, we showed that specific blockage of GLUT1 improved cell viability, tube formation, and regulation of mitochondrial dynamics in cardiac progenitor cells. To our knowledge, this study is the first to demonstrate that high glucose leads to cardiac progenitor cell dysfunction through an increase in mitochondrial fission, and that a GLUT1 blocker can rescue cardiac progenitor cell dysfunction and downregulation of mitochondrial fission. Combined therapy with cardiac progenitor cells and a GLUT1 blocker may provide a novel strategy for cardiac progenitor cell therapy in cardiovascular disease patients with diabetes.
Park, Kyu-Sang;Wiederkehr, Andreas;Wollheim, Claes B.
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.16
no.1
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pp.71-77
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2012
Mitochondrial dynamics and distribution is critical for their role in bioenergetics and cell survival. We investigated the consequence of altered fission/fusion on mitochondrial function and motility in INS-1E rat clonal ${\beta}$-cells. Adenoviruses were used to induce doxycycline-dependent expression of wild type (WT-Mfn1) or a dominant negative mitofusin 1 mutant (DN-Mfn1). Mitochondrial morphology and motility were analyzed by monitoring mitochondrially-targeted red fluorescent protein. Adenovirus-driven overexpression of WT-Mfn1 elicited severe aggregation of mitochondria, preventing them from reaching peripheral near plasma membrane areas of the cell. Overexpression of DN-Mfn1 resulted in fragmented mitochondria with widespread cytosolic distribution. WT-Mfn1 overexpression impaired mitochondrial function as glucose- and oligomycin-induced mitochondrial hyperpolarization were markedly reduced. Viability of the INS-1E cells, however, was not affected. Mitochondrial motility was significantly reduced in WT-Mfn1 overexpressing cells. Conversely, fragmented mitochondria in DN-Mfn1 overexpressing cells showed more vigorous movement than mitochondria in control cells. Movement of these mitochondria was also less microtubule-dependent. These results suggest that Mfn1-induced hyperfusion leads to mitochondrial dysfunction and hypomotility, which may explain impaired metabolism-secretion coupling in insulin-releasing cells overexpressing Mfn1.
Apoptosis (programmed cell death) is a cellular self-destruction mechanism that is essential for a variety of biological events, such as developmental sculpturing, tissue homeostasis, and the removal of unwanted cells. Mitochondria play a crucial role in regulating cell death. $Ca^{2+}$ has long been recognized as a participant in apoptotic pathways. Mitochondria are known to modulate and synchronize $Ca^{2+}$ signaling. Massive accumulation of $Ca^{2+}$ in the mitochondria leads to apoptosis. The $Ca^{2+}$ dynamics of ER and mitochondria appear to be modulated by the Bcl-2 family proteins, key factors involved in apoptosis. The number and morphology of mitochondria are precisely controlled through mitochondrial fusion and fission process by numerous mitochondria-shaping proteins. Mitochondrial fission accompanies apoptotic cell death and appears to be important for progression of the apoptotic pathway. Here, we highlight and discuss the role of mitochondrial calcium handling and mitochondrial fusion and fission machinery in apoptosis.
Mitochondria have evolutionarily, functionally and structurally distinct outer- (OMM) and inner-membranes (IMM). Thus, mitochondrial morphology is controlled by independent but coordinated activity of fission and fusion of the OMM and IMM. Constriction and division of the OMM are mediated by endocytosis-like machineries, which include dynamin-related protein 1 with additional cytosolic vesicle scissoring machineries such as actin filament and Dynamin 2. However, structural alteration of the IMM during mitochondrial division has been poorly understood. Recently, we found that the IMM and the inner compartments undergo transient and reversible constriction prior to the OMM division, which we termed CoMIC, ${\underline{C}}onstriction$${\underline{o}}f$${\underline{M}}itochondrial$${\underline{I}}nner$${\underline{C}}ompartment$. In this short review, we further discuss the evolutionary perspective and the regulatory mechanism of CoMIC during mitochondrial division.
Phospholipase D (PLD), a superfamily of signaling enzymes that most commonly generate the lipid second messenger Phosphatidic Acid (PA), is found in diverse organisms from bacteria to man and functions in multiple cellular pathways. A fascinating member of the family, MitoPLD, is anchored to the mitochondrial surface and has two reported roles. In the first role, MitoPLD-generated PA regulates mitochondrial shape through facilitating mitochondrial fusion. In the second role, MitoPLD performs a critical function in a pathway that creates a specialized form of RNAi required by developing spermatocytes to suppress transposon mobilization during meiosis. This spermatocyte-specific RNAi, known as piRNA, is generated in the nuage, an electron-dense accumulation of RNA templates and processing proteins that localize adjacent to mitochondria in a structure also called intermitochondrial cement. In this review, we summarize recent findings on these roles for MitoPLD functions, highlighting directions that need to be pursued to define the underlying mechanisms.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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