Proteins must fold into their correct three-dimensional conformation in order to attain their biological function. Conversely, protein aggregation and misfolding are primary contributors to many devastating human diseases, such as prion-mediated infections, Alzheimer's disease, type II diabetes and cystic fibrosis. While the native conformation of a polypeptide is encoded within its primary amino acid sequence and is sufficient for protein folding in vitro, the situation in vivo is more complex. Inside the cell, proteins are synthesized or folded continuously; a process that is greatly assisted by molecular chaperones. Molecular chaperones re a group of structurally diverse and mechanistically distinct proteins that either promote folding or prevent the aggregation of other proteins. With our increasing understanding of the proteome, it is becoming clear that the number of proteins that can be classified as molecular chaperones is increasing steadily. Many of these proteins have novel but essential cellular functions that differ from that of more 'conventional' chaperones, such as Hsp70 and the GroE system. This review focuses on the emerging role of molecular chaperones in protein quality control, i.e. the mechanism that rids the cell of misfolded or incompletely synthesized polypeptides that otherwise would interfere with normal cellular function.
${\alpha}B$-crystallin (${\alpha}BC$) is a member of a small heat-shock protein (sHSP) superfamily and plays a predominant role in cellular protein homeostasis network by rescuing misfolded proteins from irreversible aggregation. ${\alpha}BC$ assembles into dynamic and polydisperse high molecular weight complexes containing 12 to 48 monomers; this variable stereochemistry of ${\alpha}BC$ has been linked to quaternary subunit exchange and its chaperone activity. The chaperone activity of ${\alpha}BC$ poses great potential as therapeutic agents for various neurodegenerative diseases. In this mini-review, we briefly outline the recent advancement in structural characterization of ${\alpha}BCs$ and its potential role to inhibit protein misfolding and aggregation in various human diseases. In particular, nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy and its complimentary techniques have contributed much to elucidate highly-dynamic nature of ${\alpha}BCs$, among which notable advancements are discussed in detail. We highlight the importance of resolving the structural details of various ${\alpha}BC$ oligomers, their quaternary dynamics, and structural heterogeneity.
Parkinson's disease (PD) is a progressive neurodegenerative disorder that affects millions of people worldwide. The conventional treatment model for PD have harmful side effects, such as dyskinesia, hallucinations, nausea, and fatigue, and are expensive. As a result, natural products derived from medicinal herbs, fruits, and vegetables have emerged as potential therapeutic strategies for PD. These natural products have been traditionally used to treat various diseases and have been shown to possess anti-oxidative and anti-inflammatory properties, as well as inhibitory roles in protein misfolding, mitochondrial homeostasis, neuroinflammation and other neuroprotective processes. In addition, they have fewer side effects and are generally less expensive than conventional drugs. It also discusses the limitations of current treatments and the potential of natural remedies derived from plants to treat PD in new ways or as supplements to existing treatments. The multifunctional mechanisms of medicinal plants that may be utilized to treat PD are also discussed, including the modulation of neurotransmitter systems, the enhancement of neurotrophic factors, and the inhibition of apoptosis. While more research is needed to fully understand their mechanisms of action and efficacy, natural products have the potential to provide safer and more effective treatment options for patients with PD.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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2005.04a
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pp.53-60
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2005
Parkinson's disease (PD) is a progressive neurodegenerative disorder affecting $1\%$ of the population above the age of 65 and is characterized by a selective loss of dopaminergic neurons in the substantia nigra pars compacta. Although the underlying cause of dopaminergic cell death or the mechanism by which these cells degenerate is still not clearly understood, oxidative stress, mitochondrial dysfunction, and protein misfolding are thought to play important roles in the dopaminergic degeneration in PD. Tetrahydrobiopterin (BH4) is synthesized exclusively in the monoaminergic, including dopaminergic, cells and serves as an endogenous and obligatory cofactor for syntheses of the potential oxidative stressors dopamine and nitric oxide. In addition to its contribution toward the syntheses of these two potentially toxic molecules, BH4 itself can directly generate oxidative stress. BH4 undergoes oxidation during the hydroxylation reaction as well as nonenzymatic autooxidation to produce hydrogen peroxide and superoxide radical. We have previously suggested BH4 as an endogenous molecule responsible for the dopaminergic neurodegeneration. BH4 exerts selective toxicity to dopamine-producing cells via generation of oxidative stress, mitochondrial dysfunction, and apoptosis. BH4 also induces morphological, biochemical, and behavioral characteristics associated with PD in vivo. BH4 as well as enzyme activity and gene expression of GTP cyclohydrolase I, the rate-limiting enzyme in BH4 synthesis pathway, are readily upregulated by cellular changes such as calcium influx and by various stimuli including stress situations. This points to the possibility that cellular availability of BH4 might be increased in aberrant conditions, leading to increased extracellular BH4 subsequent degeneration. The fact that BH4 is specifically and endogenously synthesized in dopaminergic cells, Is readily upregulated, and generates oxidative stress-related cell death provides physical relevance of this molecule as an attractive candidate with which to explain the mechanism of pathogenesis of PD.
Kim, Yu-Min;Yang, Yun Gyeong;Kim, Hye-Lim;Park, Young Shik
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.6
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pp.782-787
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2015
In this study, we developed an assay system for missense mutations in human phenylalanine hydroxylases (hPAHs). To demonstrate the reliability of the system, eight mutant proteins (F39L, K42I, L48S, I65T, R252Q, L255V, S349L, and R408W) were expressed in a mutant strain (pah-) of Dictyostelium discoideum Ax2 disrupted in the indigenous gene encoding PAH. The transformed pah - cells grown in FM minimal medium were measured for growth rate and PAH activity to reveal a positive correlation between them. The protein level of hPAH was also determined by western blotting to show the impact of each mutation on protein stability and catalytic activity. The result was highly compatible with the previous ones obtained from other expression systems, suggesting that Dictyostelium is a dependable alternative to other expression systems. Furthermore, we found that both the protein level and activity of S349L and R408W, which were impaired severely in protein stability, were rescued in HL5 nutrient medium. Although the responsible component(s) remains unidentified, this unexpected finding showed an important advantage of our expression system for studying unstable proteins. As an economic and stable cell-based expression system, our development will contribute to mass-screening of pharmacological chaperones for missense PAH mutations as well as to the in-depth characterization of individual mutations.
Antimicrobial actions of reactive oxygen/nitrogen species (ROS/RNS) derived from products of NADPH oxidase and inducible nitric oxide (NO) synthase in host phagocytes inactivate various bacterial macromolecules. To cope with these cytotoxic radicals, pathogenic bacteria have evolved to conserve systems necessary for detoxifying ROS/RNS and repairing damages caused by their actions. In response to these stresses, bacteria also induce expression of molecular chaperones to aid in ameliorating protein misfolding. In this study, we explored the function of a newly identified chaperone Spy, that is localized exclusively in the periplasm when bacteria exposed to conditions causing spheroplast formation, in the resistance of Salmonella Typhimurium to ROS/RNS. A spy deletion mutant was constructed in S. Typhimurium by a PCR-mediated method of one-step gene inactivation with ${\lambda}$ Red recombinase, and subjected to ROS/RNS stresses. The spy mutant Salmonella showed a modest decrease in growth rate in NO-producing cultures, and no detectable difference of growth rate in $H_2O_2$ containing cultures, compared with that of wild type Salmonella. Quantitative RT-PCR analysis showed that spy mRNA levels were similar regardless of both stresses, but were increased considerably in Salmonella mutants lacking the flavohemoglobin Hmp, which are incapable of NO detoxification, and lacking an alternative sigma factor RpoS, conferring hypersusceptibility to $H_2O_2$. Results demonstrate that Spy expression can be induced under extreme conditions of both stresses, and suggest that the protein may have supportive roles in maintaining proteostasis in the periplasm where various chaperones may act in concert with Spy, thereby protecting bacteria against toxicities of ROS/RNS.
Bacterial programmed cell death is regulated by the toxin-antitoxin (TA) system. YhaV (toxin) and Pr1F (antitoxin) have been recently identified as a type II TA system in Escherichia coli. YhaV homologs have conserved active residues within the C-terminus, and to characterize the function of this region, we purified native YhaV protein (without denaturing) and constructed YhaV proteins of varying lengths. Here, we report a new low-temperature method of purifying native YhaV, which is notable given the existing challenges of purifying this highly toxic protein. The secondary structures and thermostability of the purified native protein were characterized and no significant structural destruction was observed, suggesting that the observed inhibition of cell growth in vivo was not the result of structural protein damage. However, it has been reported that excessive levels of protein expression may result in protein misfolding and changes in cell growth and mRNA stability. To exclude this possibility, we used an [$^{35}S$]-methionine prokaryotic cell-free protein synthesis system in vitro in the presence of purified YhaV, and two C-terminal truncated forms of this protein (YhaV-L and YhaV-S). Our results suggest that the YhaV C-terminal region is essential for mRNA interferase activity, and the W143 or H154 residues may play an analogous role to Y87 of RelE.
Polyglutamine extension in the coding sequence of mutant huntingtin causes neuronal degeneration associated with the formation of insoluble polyglutamine aggregates in Huntington's disease (HD). Mutant huntingtin can form aggregates within the nucleus and processes of neurons possibly due to misfolding of the proteins. To better understand the mechanism by which an elongated polyglutamine causes aggregates, we have developed an in vitro binding assay system of polyglutamine tract from truncated huntingtin. We made GST-HD exon1 fusion proteins which have expanded polyglutamine epitopes (e.g., 17, 23, 32, 46, 60, 78, 81, and 94 CAG repeats). In the present emergence of new study adjusted nanotechnology on protein chip such as surface plasmon resonance strategy which used to determine the substance which protein binds in drug discovery platform is worth to understand better neurodegenerative diseases (i.e., Alzheimer disease, Parkinson disease and Huntington disease) and its pathogenesis along with development of therapeutic measures. Hence, we used strengths of surface plasmon resonance (SPR) technology which is enabled to examine binding specificity and explore targeted molecular epitope using its electron charged wave pattern in HD pathogenesis utilize conjugated mutant epitope of HD protein and its interaction whether wild type GST-HD interacts with mutant GST-HD with maximum binding affinity at pH 6.85. We found that the maximum binding affinity of GST-HD17 with GST-HD81 was higher than the binding affinities of GST-HD17 with other mutant GST-HD constructs. Furthermore, our finding illustrated that the mutant form of GST-HD60 showed a stronger binding to GST-HD23 or GST-HD17 than GST-HD60 or GST-HD81. These results indicate that the binding affinity of mutant huntingtin does not correlate with the length of polyglutamine. It suggests that the aggregation of an expanded polyglutamine might have easily occurred in the presence of wild type form of huntingtin.
Different neurodegenerative disorders like prion disease, is caused by protein misfolding conformers. Reverse-transfected cytosolic prion protein (PrP) and PrP expressed in the cytosol have been shown to be neurotoxic. To investigate the possible mechanism of neurotoxicity due to accumulation of PrP in cytosol, a PrP mutant lacking the signal and GPI (CytoPrP) was introduced into the SH-SY5Y cell. MTT and trypan blue assays indicated that the viability of cells expressing CytoPrP was remarkably reduced after treatment of MG-132. Obvious apoptosis phenomena were detected in the cells accumulated with CytoPrP, including loss of mitochondrial transmembrane potential, increase of caspase-3 activity, more annexin V/PI-double positive-stained cells and reduced Bcl-2 level. Moreover, DNA fragmentation and TUNEL assays also revealed clear evidences of late apoptosis in the cells accumulated CytoPrP. These data suggest that the accumulation of CytoPrP in cytoplasm may trigger cell apoptosis, in which mitochondrial relative apoptosis pathway seems to play critical role.
Hwang, Hae-Gwang;Kim, Dae-Hwan;Lee, Jeongmin;Mo, Youngwon;Lee, Se-Hoon;Lee, Yongjin;Hyeon, Jae Wook;Lee, Sol Moe;Cheon, Yong-Pil;Choi, Eun-Kyoung;Kim, Su Yeon;Lee, Yeong Seon;Son, Young-Jin;Ryou, Chongsuk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.10
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pp.1749-1759
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2018
Recombinant (rec) prion protein (PrP) is an extremely useful resource for studying protein misfolding and subsequent protein aggregation events. Here, we report mass production of high-purity rec-polypeptide encoding the C-terminal globular domain of PrP; (90-230) for human and (89-231) for murine PrP. These proteins were expressed as His-tagged fusion proteins in E. coli cultured by a high cell-density aerobic fermentation method. RecPrPs recovered from inclusion bodies were slowly refolded under reducing conditions. Purification was performed by a sequence of metal-affinity, cation-exchange, and reverse-phase chromatography. The current procedure yielded several dozens of milligrams of recPrP per liter with >95% purity. The purified recPrPs predominantly adopted an ${\alpha}$-helix-rich conformation and were functionally sufficient as substrates to measure the seeding activity of human and animal prions. Establishment of a procedure for high-level production of high-purity recPrP supports the advancement of in vitro investigations of PrP including diagnosis for prion diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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