Triphenylmethane was decolorized rapidly by enterbacter cloacae MG 82 at initial reaction time. The spheroplast showed higher activity of triphenylmentane decolorization than that of intact cell suspension. The outer part of the bacterial cell envelope and the peptidoglycan are important for the function of transport barrier of triphenylmethane. In intact cell, decolorization activity was higher at 37$\circ $C than at $\circ $C, indicating that triphenylmethane decolorization is due to the enzyme reaction. Culture filtrate showed no decolorization activity, while cell-free extract appeared high activity of 1.45 units, clearly showing that decolorization activity was due to the cell-free extract. Comparing decolorization activities of cell fractions, it was found that decolorization activity was located at the compartment of cytoplasmic membrane. The enzyme activity was also shown to be Mg$^{++}$-dependent. The optimum pH and temperature of enzyme activity were 7.0 and 50$\circ $C, respectively. The thermostability of this enzyme at 35$\circ $C was kept to 58% for 3 hours.
Kim, Dae-Ki;Kim, Jong-Hyun;Song, Eun-Kyung;Han, Myung-Kwan;Kim, Jong-Suk
Archives of Pharmacal Research
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v.26
no.10
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pp.826-831
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2003
ADP-ribose pyrophosphatase (ADPRase) hydrolyzes ADP-ribose (ADPR) into AMP and ribose-5'-phosphate. It is classified into two groups, $Mg^{2+}$-dependent and $Mg^{2+}$-independent ADPRase, depending on its $Mg^{2+}$requirement. Here, we purified $Mg^{2+}$-dependent ADPRase from rabbit liver and examined what factors affect $Mg^{2+}$ requirement. The purified enzyme showed a single band with the molecular weight of 34 kDa on SDS-PAGE both in the presence and absence of 2-mercaptoethanol. The molecular weight of the native enzyme calculated by gel filtration was 68 kDa, indicating that ADPRase is a dimer made up of two identical subunits. $Mg^{2+}$-dependent ADPRase with the highest ADPR affinity had a $K_m$ of 160$\pm$10 $\mu$M and a pH optimum of around pH 9.5. Treatment of the purified ADPRase with heated cytosol fractions at 37$^{\circ}C$ for 3 h caused some changes in the chemical properties of the enzyme, including an increase in molecular weight, a decrease in solubility, and a loss of $Mg^{2+}$-dependency. The molecular weight of the cytosol-treated ADPRase measured by gel filtration was over 420 kDa, suggesting, for the first time, that ADPRase could be polymerized by undefined cytoplasmic factors, and that polymerization is accompanied by changes in the solubility and metal ion dependency of the enzyme.
Quantitative analysis of the activities of transport ATPases as well as alkaline phosphatase of the mouse uterus was carried out during the estrous cycle. Even though the proportional patterns of the enzyme activities were similar each another between the stages of estrous cycle, the absolute activities of the enzymes except $K^+$-dependent and $Na^+$, $K^+$-activated ATPases at the time of estrus were significantly (p<0.025) higher than that at any other time of the estrous cycle. That is, the activities of $K^+$-dependent and $Na^+$, $K^+$-activated ATPases were negligible during the period of time from diestrus to estrus while the little activities (0.04 $\\sim$ 0.05$\\mu$M/mg protein/hr in average, $6\\sim7$% of the total enzyme activity) of these enzymes appeared at the time of metaestrus. On the other hand, at the time of estrus, the activities of $Mg^++$-dependent phosphatase, transport ATPase and alkaline phosphatase were rapidly and tremendously increased to be 0.69 (35%), 0.42 (21%) and 1.58 (79%), respectively. The activity of alkaline phosphatase was in the range of 0.60 $\\sim$ 1.58 (79 $\\sim$ 90%) and predominant throughout the estrous cycle. The activity of $Mg^++$-dependent alkaline phosphatase was estimated as 12 $\\sim$ 16% of the total enzyme activity. Therefore, it is assumed likely that $K^+$-dependent and $Na^+$, $K^+$-activated ATPases are not the main factors to control the fluid accumulation at the time of estrus, but may be the factors to reabsorb the luminal fluid into the uterine epithelium at the time of metaestrus, and that $Mg^++$-dependent phosphatase, transport ATPase and alkaline phosphatase must be closely involved in the secretion of luminal fluid from the epithelial cells of the mouse uterus.
SC092 strain, producing a polysaccharide degrading enzyme, was isolated from the seawater. This strain was identified as Microbulbifer sp. using the comparative sequence analysis against known 16S rRNA sequence. A polysaccharide degrading enzyme from this strain was used to acquire the enzymatic extracts of Sargassum fulvellum. DPPH radical scavenging and SOD activity of the enzyme extracts of S. fulvellum were about 61.9% and 82.9% at 2 mg/mL, respectively. Nitrite scavenging activities was 52.5% at 2 mg/mL on pH 1.2. In addition, ${\alpha}$-glucosidase inhibitory activity was also increased in a dose-dependent manner and was about 52.7% at 2 mg/mL. To determine the influence of enzyme extracts of S. fulvellum on alcohol metabolism, the generating activity of reduced-nicotinamide adenine dinucleotide (NADH) by alcohol dehydrogenase (ADH) and aldehyde dehydrogenase (ALDH) were measured. ADH and ALDH activities were 118.0% and 177% at 2 mg/mL, respectively. ${\alpha}$-glucosidase inhibitory activity of enzyme extracts of S. fulvellum was remarkably increased in a dose-dependent manner and was about 52.7% at 2 mg/mL. These results indicate alcoholizing and ${\alpha}$-glucosidase inhibitory activities can be enhanced by the enzymatic extracts of S. fulvellum.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.19
no.4
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pp.349-355
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1990
Actomyosine prepared from Yellowtail fish(seriola quinqueradiata) were stored at $0^{\circ}C$(ice-cooling) -3.5$^{\circ}C$(partial freeaing) and -2$0^{\circ}C$(freezing) Another actomyosin samples were prepared from the fish previously stored at the temperatures for a week as the maximum .Remaining activity of {{{{ {Ca }^{2+ } }}}}-and {{{{ {Mg }^{2+ } }}}}- dependent adenosine triphosphatase(ATPase) activity was measured fronm the actomyosin preparations. Specific activity of {{{{ {Mg }^{2+ } }}}}-ATPase of actomy-osin before storagew was 0.253$\mu$ mole pi/min/mg of protein and it was 1.5 times higher than that of {{{{ {Ca }^{2+ } }}}} -ATPase. The enzyme activities were markedly decreased during early period of storage. However no significant differences in the enzyme activity were revealed among the samples stored at different temperature. The enzyme of actomyosin prepared from the fish previously stored at the temperatures for a week revealed an acitivity of 2-3 times higher than that of freezing. Apparent denaturation constant of {{{{ {Mg }^{2+ } }}}} -ATPase of actomyosin was between 0.810-1.139 per day and it was about 1.5 times hgiher than that of {{{{ {Ca }^{2+ } }}}} -ATPase. But the constant of {{{{ {Mg }^{2+ } }}}} ATPase of actomyosin extracted from the fist stored for a week at each temperature was between 0.176-0.356 per day. This constant was 4 times higher than that of {{{{ {Ca }^{2+ } }}}}- ATPase in frozen stored fish. It was presumed from these results that denaturation of ATPase is largely accorded to the structural changes of actomyosin.
The effects of ginseng saponins, gypsophila saponin, sodium dodecyl sulfate(SDS), and Triton X-100 on membrane $K^+-dependent$ phosphatase activity which is lipid dependent and represents dephosphorylation step of the complete Na+, $K^+-ATPase$ reaction were investigated in this study to elucidate whether the effects of ginseng saponins are due to the detergent action, using sarcolemma enriched preparation isolated from dog ventricle. $Na^+$, $K^+-ATPase$ and $K^+-dependent$ phosphatase activities of cardiac sarcolemma were about $143\;{\mu}mol$ Pi/mg protein/hr and $34\;{\mu}mol$ p-nitrophenol/mg protein/hr, respectively. While ginseng saponins (triol>total>diol) inhibited $K^+-dependent$ phosphatase activity, gypsophila saponin, and low dose of SDS($0.4\;{\mu}g/{\mu}g$ protein), and Triton X-100 ($0.6\;{\mu}g/{\mu}g$ protein) increased the enzyme activity, indicating disruptive effect of detergents on membrane barriers. The activating effect of low doses of Triton X-100 on membrane $K^+-dependent$ phosphatase appeared at concentration decreasing light scattering. However, the inhibitory effect of ginseng saponin appeared before a decrease in light scattering. These results suggest that low concentrations of ginseng saponins inhibit the membrane $K^+-dependent$ phosphatase by interacting directly with enzyme before membrane disruption.
Arabidopsis AHL gene contains 4 exons encoding a putative protein highly homologous to the yeast salt-sensitive enzyme HAL2, a 3'(2'),5'-bisphosphate nucleotidase involving in reductive sulfate assimilation. AHL cDNA complemented yeast met22 (hal2) mutant. AHL fusion protein expressed in E. coli exhibited $Mg^{2+}$-dependent, 3'-phosphoadenosine 5'-phosphate (PAP)-specific phosphatase activity. $Li^+,\;Na^+,\;K^+$ and $Ca^{2+}$ ions inhibit the enzyme activity by competing with $Mg^{2+}$ for the active site of the enzyme. The enzyme activity was also sensitive to ${\mu}M$ concentrations of toxic heavy metal ions such as $Cd^{2+},\;Cu^{2+}$ and $Zn^{2+}$, but was not recovered by addition of more $Mg^{2+}$ ions, suggesting that these ions inactivate the enzyme with a mechanism other than competition with $Mg^{2+}$ ions. Inhibition of the AHL enzyme activity may result in accumulation of PAP, which is highly toxic to the cell. Thus, the AHL enzyme could be one of the intial targets of heavy metal toxicity in plants.
In this study, we investigated the antioxidant activities, alcohol metabolizing activities, nitrite scavenging ability, angiotensin converting enzyme (ACE), and elastase inhibitory effects of hot water extract from Makgeoly (HWM). Antioxidant activities were measured by using 2,2.diphenyl.1.picryl.hydrazyl (DPPH) free radical scavenging activity and SOD (superoxide dismutase).like activity. The DPPH radical scavenging activity and SOD.like activity of HWM were remarkably increased in a dose.dependent manner and were 48.0% and 98.7% at 10 mg/ml, respectively. To determine the influence of HWM on alcohol metabolizing activity, the generating activities of reduced.nicotinamide adenine dinucleotide (NADH) by alcohol dehydrogenase (ADH) and aldehyde dehydrogenase (ALDH) were measured. The facilitating rates of ADH and ALDH activity by HWM were remarkably increased in a dose.dependent manner and were 70.2% and 64.1% at 10 mg/ml, respectively. The inhibitory activity against angiotensin converting enzyme (ACE) of HWM was increased in a dose.dependent manner and was 74.2% at 10 mg/ml. The nitrite scavenging ability of HWM showed the most remarkable effect at pH 1.2 and 2 mg/ml. These results indicated that HWM may have valuable biological properties owing to their antioxidant activities, ADH and ALDH activity, nitrite scavenging ability, and ACE inhibitory activity.
The gene ADH encoding NAD-dependent alcohol dehydrogenase from Bacillus stearothennophilus was cloned and overexpressed as a GST fusion protein at a high level in Escherichia coli. The expressed fusion protein was purified simply by glutathione affinity chromatography. GST fusion protein was then cleaved by thrombin, while soluble enzyme was further purified by glutathione affinity chromatography. The recombinant enzyme had the same elctrophoretic mobility as the native enzyme from Bacillus stearothennophilus. The recombinant enzyme catalyzed the oxidation of a number of alcohols and exhibited high activities towards secondary alcohols. The $K_m\;and\;V_{max}$ values of the recombinant enzyme for ethanol were 5.11 mM and 61.35 U/mg, respectively. Pyridine and imidazole notably inhibited the enzymatic activity. The activity of the recombinant enzyme optimally proceeded at pH 9.0 and $70^{\circ}C$. The midpoint of the temperature-stability curve for the recombinant enzyme was approximately $68^{\circ}C$, and the enzyme was not completely inactivated even at $85^{\circ}C$. The recombinant enzyme showed a high resistance towards denaturing agents (0.05% SDS, 0.1 M urea). Therefore, due to its stability and relatively broad substrate specificity, the recombinant enzyme could be utilized in bio-industrial processes and biosensors.
An enzymatic reaction system was developed and optimized for bioconversion of resveratrol from glucose. Liquid enzyme extracts were prepared from Alternaria sp. MG1, an endophytic fungus from grape, and used directly or after immobilization with sodium alginate. When the enzyme solution was used, efficient production of resveratrol was found within 120 min in a manner that was pH-, reaction time-, enzyme amount-, substrate type-, and substrate concentration-dependent. After the optimization experiments using the response surface methodology, the highest value of resveratrol production (224.40 μg/l) was found under the conditions of pH 6.84, 0.35 g/l glucose, 0.02 mg/l coenzyme A, and 0.02 mg/l ATP. Immobilized enzyme extracts could keep high production of resveratrol during recycling use for two to five times. The developed system indicated a potential approach to resveratrol biosynthesis independent of plants and fungal cell growth, and provided a possible way to produce resveratrol within 2 h, the shortest period needed for biosynthesis of resveratrol so far.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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