Trichloroethylene (TCE) is an environmental contaminant provoking genetic mutation and damages to liver and central nerve system even at low concentrations. A practical scheme is reported using toluene as a primary substrate to revitalize the biofilter column for an extended period of TCE degradation. The rate of trichloroethylene (TCE) degradation by Pseudomonas putida F1 at $25^{\circ}C$ decreased exponentially with time, without toluene feeding to a biofilter column ($11\;cm\;I.D.{\times}95\;cm$ height). The rate of decrease was 2.5 times faster at a TCE concentration of $970\;{\mu}g/L$ compared to a TCE concentration of $110\;{\mu}g/L$. The TCE itself was not toxic to the cells, but the metabolic intermediates of the TCE degradation were apparently responsible for the decrease in the TCE degradation rate. A short-term (2 h) supply of toluene ($2,200\;{\mu}g/L$) at an empty bed residence time (EBRT) of 6.4 min recovered the relative column activity by $43\%$ when the TCE removal efficiency at the time of toluene feeding was $58\%$. The recovery of the TCE removal efficiency increased at higher incoming toluene concentrations and longer toluene supply durations according to the Monod type of kinetic expressions. A longer duration ($1.4{\sim}2.4$ times) of toluene supply increased the recovery of the TCE removal efficiency by $20\%$ for the same toluene load.
Isopentenyl diphosphate (IPP) is the common, five-carbon building block in the biosynthesis of all carotenoids, IPP in Escherichia coli is synthesized through the non-mevalonate pathway. The first reaction of IPP biosynthesis in E. coli is the formation of 1-deoxy-D-xylulose-5-phosphate (DXP), catalyzed by DXP synthase and encoded by dxs. The second reaction in the pathway is the reduction of DXP to 2-C-methyl-D-erythritol-4-phosphate, catalyzed by DXP reductoisomerase and encoded by dxr. To determine if one or more of the reactions in the non-mevalonate pathway controlled flux to IPP, dxs and dxr were placed on several expression vectors under the control of three different promoters and transformed into three E. coli strains (DH5(, XL1-Blue, and JM101) that had been engineered to produce lycopene. Lycopene production was improved significantly in strains transformed with the dxs expression vectors. When the dxs gene was expressed from the arabinose-inducible araBAD promoter (PBAD) on a medium-copy plasmid, lycopene production was 2-fold higher than when dxs was expressed from the IPTG-inducible trc and lac promoters (Ptrc and Plac, respectively) on medium-copy and high-copy plasmids, Given the low final densities of cells expressing dxs from IPTG-inducible promoters, the low lycopene production was probably due to the metabolic burden of plasmid maintenance and an excessive drain of central metabolic intermediates. At arabinose concentrations between 0 and 1.33 mM, cells expressing both dxs and dxr from PBAD on a medium-copy plasmid produced 1.4 - 2.0 times more lycopene than cells expressing dxs only. However, at higher arabinose concentrations lycopene production in cells expressing both dxs and dxr was lower than in cells expressing dxs only. A comparison of the three E. coli strains transformed with the arabinose-inducible dxs on a medium-copy plamid revealed that lycopene production was highest in XL1-Blue.
In order to use for metabolic studies of tranylcypromine (TCP), TCP-phenyl-$d_{5}$ was synthesized via the intermediates, 3-benzoylpropionic acid-$d_{5}$ and trans-2-phenylcyclopropanecarboxylic acid-$d_{5}$ -TCP(0.22 mmole/kg) and its deuterated analog were administered s. c. to the rats and GC/MS analyses of the urines led to the detection of N-acetyltranylcypromine (ATCP) and glucuronide conjugate of phenyl-hydroxylated ATCP. MAO activities in rat brain were measured using serotonin as the substrate. In vitro $IC_{50}$ of ATCP was determined to be $10^{-3}M$. The inhibitions by ATCP were not dependent on the preincubation time and were reversed by washing sedimented mitochondrial pellets after the preincubation. In vivo MAO inhibitions at various times of 0.5, 1.5, 3, 6, 12, and 23 hr after the administration of 0.4 mmole/kg (i. p. ) of ATCP were found to be 0.13, 73, 90, 89, and 74 %, respectively. Similarly, the inhibition percents by 0.015 mmole/kg (i. p. ) of TCP were 94, 99, 95, 91, 71 and 49%. The results strongly suggest that deacetylated product of ATCP may account for its in vivo MAO inhibition. The relationship between the metabolism via phenyl-hydroxylation and the in vivo potency of TCP was examined by QSAR study and it was found that groupings discriminating between the compounds with p-substituents and those without them only ensure high correlations, suggesting that ring-hydroxylation which occurs at the para position in most of the compounds is a determining factor to the potency of TCP.
원유의 고갈, 반복되는 에너지 위기 및 지구온난화 문제에 기인하여 석유 대신 재생가능한 바이오매스를 사용하여 방향족 화학원료를 개발하는 연구가 광범위하게 진행되고 있다. 특히, 바이오테크놀로지를 이용한 포도당으로부터 방향족아미노산 생합성경로 중간대사체 및 그 유도체 합성기술은 벤젠유래 화합물을 포함한 많은 방향족 석유화학원료를 대체할 가능성이 있는 기술들이 개발되고 있다. 본 고는 미생물 대사공학, 생물전환, 화학공정 기술을 이용하여 hydroquinone, catechol, adipic acid, shikimic acid, gallic acid, pyrogallol, vanillin, p-hydroxycinnamic acid, p-hydroxystyrene, p-hydroxybenzoic acid, indigo, indole 3-acetic acid와 같은 방향족화합물을 어떻게 개발하고 있는지를 논하였다. 또한, 경쟁력있는 화이트바이오텍기반 방향족화합물 생산기술을 개발하기 위한 문제점 및 해결방안등을 논했다.
This study were done to know the effects of Dangkiyeumja on the in vivo and in vitro immune responses of mice. The recipes of Dangkiyeumja used in this study enhanced such, cellular functions of immunocytes as phagocytic capacity of macrophages, rossett-eforming abilities of splenocytes and metabolic activities of lymphocytes, However, the same recipes decreased the formation of such reactive oxygen intermediates(ROI) as superoxide and hydrogenperoxide from the macrophages. The effects of the same recipes on the in vim immune responses was suppressive on the cellular immune response(CIR)measured by delayed-type hypersensitivity against dinitrofluorobenzene and mildly enhancing for the humoral immune response measured by antibody production against sheep red blood cells. The results of this study could be summarized as follow: 1. Administration of Dangkiyeumja enhanced the phagocytic activity of the murine macrophage. 2. Administration of Dangkiyeumja decreased the formation of ROI in the murine macrophage 3. Administration of Dangkiyeumja increased the number of the splenic rotte forming cells in the mouse. 4. Administration of DangKiyeumja did not effect the antibody production against sheep red blood cells. 5. Administration of Dangkiyeumja depressed the delayed-type hypersenitivity against dinitrofluoro benzene in the mouse. The result of this study suggest that Dangkiyeumja could ameliorate the hypersensitivity reactions by reducing the formation of ROI and decreasing the CIR without affecting the other functions of immunocytes.
To find the action mechanism of the MeOH extract (LFS) of Ligularia fischeri var. spiciformis herbs (Compositae) and its active component, 3,4-dicaffeoylquinic acid (DCQA) on antihepatotoxicity, the effect was investigated on hepatic lipid perxodation and drug-metabolizing enzyme activities in acetaminophen-treated rat. Pretreatment with 250 mg/kg LFS (p.o.) and 10 mg/kg DCQA (p.o.) significantly decreased hepatic lipid peroxidation caused by acetaminophen injection. Further, LFS and DCQA inhibited hepatic microsomal enzyme activation such as hepatic P-450 cytochrome $b_5$, aniline hydroxylase and aminopyrine N-demethylase, suggesting that the two substances might effectively prevent the metabolic activation or scavenge electrophilic intermediates capable of causing hepatotoxicity. Both LFS and DCQA increased hepatic glutathione content and glutathione reductase activity, indicating that both resultantly prevented hepatotoxicity via antioxidative mechanism. Therefore, it was found that LFS had antihepatotoxicity based on the antioxidative action of DCQA.
The biological removal of 2,4,6-trinitrotoluene (TNT) was studied in a bench-scale bioreactor using a bacterial culture of strain OK-5 originally Isolated from soil samples contaminated with TNT. The TNT was completely removed within 4 days of incubation in a 2.5 L bench-scale bioreactor containing a newly developed medium. The TNT was catabolized in the presence of different supplemented carbons. Only minimal growth was observed in the killed controls and cultures that only received TNT during the incubation period. This catabolism was affected by the concentration ratio of the substrate to the biomass. The addition of various nitrogen sources produced a delayed effect for the TNT degradation. Tween 80 enhanced the degradation of TNT under these conditions. Two metabolic intermediates were detected and identified as 2-amino-4, 6-dinitrotoluene and 4-amino-2, 6-dinitrotoluene based on HPLC and GC-MS analyses, respectively. Strain OK-5 was characterized using the BIOLOG system and fatty acid profile produced by a microbial identification system equipped with a Hewlett Packard HP 5890 II gas chromatograph. As such, the bacterium was identified as a Stenotrophomonas species and designated as Stenotrophomonas sp. OK-5.
Phenol is frequently present as the hazardous pollutant in petrochemical and pesticide industry wastewater. Because of its high toxicity and carcinogenic potential, a proper treatment is needed to reduce the hazards of phenol carrying effluent before being discharged into the environment. Phenol biodegradation with microbial consortium offers a very promising approach now a day's. This study focused on the formulation of phenol degrading bacterial consortium with three bacterial isolates. The bacterial strains Bacillus cereus strain VCRC B540, Bacillus cereus strain BRL02-43 and Oxalobacteraceae strain CC11D were isolated from detergent contaminated soil by soil enrichment technique and was identified by 16s rDNA sequence analysis. Individual cultures were degrade 100 μl phenol in 72 hrs. The formulated bacterial consortium was very effective in degrading 250 μl of phenol at a pH 7 with in 48 hrs. The study further focused on the analysis of the products of biodegradation with Fourier Transform Infrared Spectroscopy (FT/IR) and Gas Chromatography-Mass Spectroscopy (GC-MS). The analysis showed the complete degradation of phenol and the production of Benzene di-carboxylic acid mono (2-ethylhexyl) ester and Ethane 1,2- Diethoxy- as metabolic intermediates. Biodegradation with the aid of microorganisms is a potential approach in terms of cost-effectiveness and elimination of secondary pollutions. The present study established the efficiency of bacterial consortium to degrade phenol. Optimization of biodegradation conditions and construction of a bioreactor can be further exploited for large scale industrial applications.
In this study, we aimed to enhance the accumulation of chorismate (CHR) and anthranilate (ANT), key intermediates in the shikimate pathway, by modifying a shikimate over-producing recombinant strain of Corynebacterium glutamicum [19]. To achieve this, we utilized a CRISPR-driven genome engineering approach to compensate for the deletion of shikimate kinase (AroK) as well as ANT synthases (TrpEG) and ANT phosphoribosyltransferase (TrpD). In addition, we inhibited the CHR metabolic pathway to induce CHR accumulation. Further, to optimize the shikimate pathway, we overexpressed feedback inhibition-resistant Escherichia coli AroG and AroH genes, as well as C. glutamicum AroF and AroB genes. We also overexpressed QsuC and substituted shikimate dehydrogenase (AroE). In parallel, we optimized the carbon metabolism pathway by deleting the gntR family transcriptional regulator (IolR) and overexpressing polyphosphate/ATP-dependent glucokinase (PpgK) and glucose kinase (Glk). Moreover, acetate kinase (Ack) and phosphotransacetylase (Pta) were eliminated. Through our CRISPR-driven genome re-design approach, we successfully generated C. glutamicum cell factories capable of producing up to 0.48 g/l and 0.9 g/l of CHR and ANT in 1.3 ml miniature culture systems, respectively. These findings highlight the efficacy of our rational cell factory design strategy in C. glutamicum, which provides a robust platform technology for developing high-producing strains that synthesize valuable aromatic compounds, particularly those derived from the shikimate pathway metabolites.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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