Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.31
no.1
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pp.39-45
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2005
Stem cell therapy using mesenchymal stem cells(MSCs) transplantation have been paid attention because of their powerful proliferation and pluripotent differentiating ability. Although umbilical cord blood (UCB) is well known to be a rich source of hematopoietic stem cells with practical and ethical advantages, the presence of mesenchymal stem cells (MSCs) in UCB has been controversial and it remains to be validated. In this study, we examine the presence of MSCs in UCB harvests and the prevalence of them is compared to that of endothelial progenitor cells. For this, CD34+ and CD34- cells were isolated and cultured under the endothelial cell growth medium and mesenchymal stem cell growth medium respectively. The present study showed that ESC-like cells could be isolated and expanded from preterm UCBs but were not acquired efficiently from full-terms. They expressed CD14-, CD34-, CD45-, CD29+, CD44+, CD105+ cell surface marker and could differentiate into adipogenic and osteogenic lineages. Our results suggest that MSCs are fewer in full-term UCB compared to endothelial progenitor cells.
Background: Human umbilical cord bloods, which could be taken during the delivery are utilized as a source of hematopoietic stem cells. Also in cord blood, there are several kinds of stem cells such as endothelial and mesenchymal stem cells. Methods: We isolated the mesenchymal stem cells from human umbilical cord bloods and confirmed the differentiation of these cells into osteoblast progenitor cells. The mesenchymal stem cells derived from umbilical cord blood have the ability to differentiate into specific tissue cells, which is one of characteristics of stem cells. These cells were originated from the multipolar shaped cells out of adherent cells of the umbilical cord blood mononuclear cell culture. Results: The mesenchymal stem cells expressed cell surface antigen CD13, CD90, CD102, CD105, ${\alpha}$-smooth muscle actin and cytoplasmic antigen vimentine. Having cultrued these cells in bone formation media, we observed the formation of extracellular matrix and the expression of alkaline phosphatase and of mRNA of cbfa-1, ostoecalcin and type I collagen. Conclusion: From these results we concluded that the cells isolated from the umbilical cord blood were mesenchymal stem cells, which we could differentiate into osteoblast when cultured in bone formation media. In short, it is suggested that these cells could be used as a new source of stem cells, which has the probability to alternate the embryonic stem cells.
Eun, Seok Chan;Kim, Jin Hee;Heo, Chan Yeong;Baek, Rong Min;Chang, Hak;Minn, Kyung Won
Archives of Plastic Surgery
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v.35
no.3
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pp.229-234
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2008
Purpose: There are some reports presenting that peripheral blood contain circulating hematopoietic cells as well as, in significantly smaller quantities, mesenchymal stem cells. The purposes of this study is to isolate and characterize circulating mesenchymal progenitor cells with osteogenic potential from human peripheral blood. Methods: Human buffycoat containing mononuclear cells was harvested from peripheral blood of normal persons and isolated using a density gradient centrifugation and serially subcultured in osteogenic media for 1-4 weeks. The proliferation capability, phase-contrast microscopy, transmission electron microscopy, immunophenotype FACS analysis, Alizarin red staining and RT-PCR assays for osteogenic differentiation potential were performed. Results: The phenotype of cultured cells changed from small round or cuboidal cells at passage 1 into large spindle-shaped fibroblastic morphology cells at passage 4. Surface marker expressed CD14, but did not express CD34, CD80, CD83. Strong positive staining was observed for Alizarin reds in osteogenic medium on day 14, Using RT-PCR, the mRNA levels of bone- specific genes, such as ALP, c-bfa-1 and osteocalcin were detected. Conclusion: A new subset of peripheral blood derived progenitor cells described here has the ability to proliferate and differentiate into osteogenic cell lineages in vitro, and to be candidate for regenerative therapy.
Mesenchymal stem/progenitor cells (MPCs) were isolated from porcine umbilical cord blood (UCB) and their morphology, proliferation, cell cycle status, cell-surface antigen profile and expression of hematopoietic cytokines were characterized. Their capacity to differentiate in vitro into osteocytes, adipocytes and chondrocytes was also evaluated. Primary cultures of adherent porcine MPCs (pMPCs) exhibited a typical fibroblast-like morphology with significant renewal capacity and proliferative ability. Subsequent robust cell growth was indicated by the high percentage of quiescent (G0/G1) cells. The cells expressed the mesenchymal surface markers, CD29, CD49b and CD105, but not the hematopoietic markers, CD45 and CD133 and synthesized hematopoietic cytokines. Over 21 days of induction, the cells differentiated into osteocytes adipocytes and chondrocytes. The expression of lineage specific genes was gradually upregulated during osteogenesis, adipogenesis and chondrogenesis. We conclude that porcine umbilical cord blood contains a population of MPCs capable of self-renewal and of differentiating in vitro into three classical mesenchymal lineages.
Mesenchymal stem cells (MSCs) have shown great potential in treating bone deficiency. Human adipose-derived stem cells (HASCs) are multipotent progenitor cells with multi-lineage differentiation potential. Human amnion-derived mesenchymal stem cells (HAMSCs) are capable of promoting osteogenic differentiation of MSCs. In this study, we investigated the effect of HAMSCs on HASCs by a transwell co-culture system. HAMSCs promoted proliferation, osteogenic differentiation, angiogenic potential and adiponectin (APN) secretion of HASCs. Moreover, the positive effect of HAMSCs was significantly inhibited by U0126, a highly selective inhibitor of extracellular signaling-regulated kinase 1/2 (ERK1/2) mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling pathway. These observations suggested that HAMSCs induced bone regeneration in HASCs via ERK1/2 MAPK signaling pathway.
Although BMP6 is highly capable of inducing osteogenic differentiation of mesenchymal progenitor cells (MPCs), the molecular mechanism involved remains to be fully elucidated. Using dominant negative (dn) mutant form of type I and type II $TGF{\beta}$ receptors, we demonstrated that three dn-type I receptors (dnALK2, dnALK3, dnALK6), and three dn-type II receptors (dnBMPRII, dnActRII, dnActRIIB), effectively diminished BMP6-induced osteogenic differentiation of MPCs. These findings suggested that ALK2, ALK3, ALK6, BMPRII, ActRII and ActRIIB are essential for BMP6-induced osteogenic differentiation of MPCs. However, MPCs in this study do not express ActRIIB. Moreover, RNA interference of ALK2, ALK3, ALK6, BMPRII and ActRII inhibited BMP6-induced osteogenic differentiation in MPCs. Our results strongly suggested that BMP6-induced osteogenic differentiation of MPCs is mediated by its functional $TGF{\beta}$ receptors including ALK2, ALK3, ALK6, BMPRII, and ActRII.
Two-dimensional cultivation is typically used for cell growth, but the method reduces the characteristics of chondrocytes and stem cells, and limits culture area. Therefore, development of three-dimensional culture method is needed to mimic in vivo environment, improve quality of cells and scale-up efficiently. Improving proliferation and chondrogenesis is available by co-culture of chondrocytes and mesenchymal stem cells (MSCs) that leads to interaction between two kinds of cells. However, the co-culture has problems that permeability of sphere diminishes as aggregate size increased and ratio of two kinds of cells composing each spheres is different. In this work, co-cultivation method using controlled sphere composed of chondrocytes and MSCs was established and enhanced chondrogenesis. Periosteum-derived progenitor cells (PDPCs) that are appropriate for cell therapy source of articular cartilage were used as MSCs. Controlled spheres were formed in the hanging-drop plates and shifted for being induced chondrogenesis in 35-mm non-adhesive culture dishes at a rotation rate of 60 rpm. After inducing chondrogenesis, gene expressions related with chondrogenesis were found to be improved and it was apparent that the utilization of controlled spheres promoted chondrogenesis. As a result, available numbers of cells per unit area were increased and chondrogenic differentiation ability was improved compared to typical two-dimensional culture. This approach shows the potential in cartilage regeneration as it can provide sufficient numbers of chondrocytes.
Background and Objectives: Endothelial progenitor cells (EPCs) and endothelial cells (ECs) have been applied in the clinic to treat pulmonary arterial hypertension (PAH), a disease characterized by disordered pulmonary vasculature. However, the lack of sufficient transplantable cells before the deterioration of disease condition is a current limitation to apply cell therapy in patients. It is necessary to differentiate pluripotent stem cells (PSCs) into EPCs and identify their characteristics. Methods and Results: Comparing previously reported methods of human PSCs-derived ECs, we optimized a highly efficient differentiation protocol to obtain cells that match the phenotype of isolated EPCs from healthy donors. The protocol is compatible with chemically defined medium (CDM), it could produce a large number of clinically applicable cells with low cost. Moreover, we also found PSCs-derived EPCs express CD133, have some characteristics of mesenchymal stem cells and are capable of homing to repair blood vessels in zebrafish xenograft assays. In addition, we further revealed that IPAH PSCs-derived EPCs have higher expression of proliferation-related genes and lower expression of immune-related genes than normal EPCs and PSCs-derived EPCs through microarray analysis. Conclusions: In conclusion, we optimized a highly efficient differentiation protocol to obtain PSCs-derived EPCs with the phenotypic and molecular characteristics of EPCs from healthy donors which distinguished them from EPCs from PAH.
Dental follicle is the mesenchymal tissue which surrounds developing tooth germ. During tooth root development, periodontal components such as cementum, periodontal ligament and alveolar bone are considered to be created by progenitors present in the dental follicle. However, little is known about these progenitors. Previously we observed that cultured bovine dental follicle cells (BDFC) contained putative cementoblast progenitors. To further analyze the biology of these cells, we have attempted to immortalize BDFC by expression of the polycomb group protein Bmi-1 and human telomerase reverse transcriptase (hTERT). The BDFC expressing Bmi-1 and hTERT showed extended life span by 90 population doublings more than normal BDFC, and still contained cells with potential to differentiate into cementoblasts upon implantation into immunodeficiency mice. Among them, we established a clonal cell line designated as BCPb8, which formed cemetum-like mineralized tissue reactive to anti-cementum specific monoclonal antibody, 3G9, and expressed mRNA for bone sialoprotein, osteocalcin, osteopontin and type I collagen upon implantation. Thus with the combination of hTERT and Bmi-1, we succeeded in immortalization of cementoblast progenitor in BDFC without affecting differentiation potential. The BCPb8 progenitor cell line could be a useful tool not only to study cementogenesis but also to develop regeneration therapy for periodontitis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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