Eight monoclonal antibodies(MAbs) against the transmissible gastroenteritis virus (TGEV) were produced and characterized. Four of the MAbs were produced against a reference TGEV, Purdue strain(P115) and the others were produced against the Korean vaccine virus, Pyungtaek strain. Only one MAb(5C8) produced against P115 had neutralizing activity and was found to be E2 protein-specific. The other seven MAbs(4E2, 4G8, 5H6, 1F8, 2C6, 5H5, and 3A6) had specificity of nucleocapsid protein and no neutralizing activity. All MAbs reacted with different strains of TGEV, but none of the MAbs was reactive with porcine enteropathogenic viruses such as rotavirus, epidemic diarrhea virus and enterovirus by fluorescence antibody(FA) test.
Lim, Yong Hwan;Phan, Le Van;Mo, In-Pil;Koo, Bon-Sang;Choi, Young-Ki;Lee, Seung-Chul;Kang, Shien-Young
Korean Journal of Veterinary Service
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제40권3호
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pp.187-192
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2017
In this report, fifteen monoclonal antibodies (MAbs) against an avian influenza virus (H9N2 subtype) were newly produced and characterized. These MAbs proved to react to the epitopes of nucleocapsid protein (NP), hemagglutinin (HA), neuraminidase (NA) and non-structural protein 1 (NS1) of Korean H9N2 strain, respectively. Two HA-specific MAbs showed the ability to inhibit the hemagglutination activity of H9N2 subtype avian influenza virus when tested by hemagglutination inhibition (HI) assay. All MAbs did not cross-react with other avian-origin viruses (Newcastle disease virus, infectious bursal disease virus, infectious bronchitis virus and avian rotavirus) by immunofluorescence test or enzyme-linked immunosorbent assay. The MAbs produced in this study could be useful as the materials for diagnostics and therapeutics against Korean-lineage H9N2 virus infections.
In this study, the PPS/ABS blend system was investigated in order to identify the relationship between the incorporation of compatabilizing moieties and the mechanical properties. ABS resin was chemically modified by the incorporation of maleic anhydride using reactive extrusion method to yield MABS resin, and PPS/MABS blend was prepared by a twin screw extruder. Single glass transition behavior was observed in the various compositions of PPS/MABS blend by dynamic mechanical analysis study. Upon the examination of the mechanical properties, the PPS/MABS blend exhibited an enhanced tensile, flexural and impact strength, which might be due to the better chemical compatibilization to result in the reduced interfacial tension between each components.
We developed and subsequently characterized mouse monoclonal antibodies (MAbs) against recombinant VP28 structural protein (rVP28) of white spot syndrome virus (WSSV). We established six hybridoma clones secreting MAbs against rVP28: 15A11, 20G6, 31H2, 34H6, 38D1 and 43A1. All six MAbs recognized the 25 kDa of protein in gill homogenates of WSSV-infected shrimp by western blot analysis, while no reactivity was observed in gill homogenates of normal shrimp. Moreover, high enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) optical density (OD) values (0.8-2.68) were observed in the hemolymphs from WSSV-infected shrimp, while low OD values (less than 0.24) were recorded in the hemolymphs from normal shrimp, by using these six MAbs produced in this study. These results suggest that these six MAbs are useful for the detection of WSSV.
Since 1993, the White Spot Syndrome Virus (WSSV) disease occurred in China among cultured shrimps resulting in mass mortality. Epizootiological surveys undertaken during the outbreak period of 1993-1994 indicated that all stages of Penaeus chinensis, P. japonicus and P. monodon were infected. Consequent to the transport of contaminated shrimp seedlings and seawater, the disease spread all over the farms of China. The disease was more rapidly transmitted at temperatures above $25^{\circ}C$. Challenge experiments showed the causative agent was highly virulent. White spots appeared on the carapace of both span-taneous and experimentally infected shrimps. Moribund shrimps contained turbid hemolymph, hypertrophied Iymphoid organ and a necrotic mid-gut gland. Electron microscopy showed the presence of viral particles in the gills, stomach, lymphoid organ, and epidermal tissue of the infected shrimp. The visions were slightly ovoid with an envelope and averaged 350 $\times$ 150 nm; nucleocapsids measured 375 $\times$ 157 nm. With discontinuous sucrose gradient of 35, 50 and 60% (w/v), the virus was separated from hemolymph of the infected shrimp. The estimated molecular weight of genomic DNA was 237 Kb with EcoR I, 247 Kb with Hind III and 241kb with Pst I. A total of 9 hybridoma colones secreting monoclonal antibodies (MAbs) were produced from mouse myeloma and spleen cells immunized with WSSV. The immunofluorescence assay of gill tissue showed that the MAbs reacted with diseased but not with healthy shrimp. The MAbs belonged to IgGl, IgG2b subclass and IgM class, all with kappa light Immune-electron-microscopy with colloidal gold marker showed the presence of 5 MAbs epitopes on the envelope and one on the capsid of the virus. Baculoviral mid-gut gland necrosis showed the specificity of the MAbs produced. For diagnosis 5 different methods were selected. Using Kimura primers for PCR, or MAbs for immunoblot, ELISA or FAT method, in situ hybridization was carried out to show the gene. All these methods detected WSSV in the organ samples of the diseased shrimp but not in healthy one.
Kim, Wi-Sik;Kim, Ki-Hong;Kim, Choon-sup;Oh, Myung-Joo
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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제50권2호
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pp.169-174
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2017
Immunoglobulin M (IgM) was purified from olive flounder Paralichthys olivaceus sera using mannan-binding protein (MBP) and protein L affinity columns (designated as MBPIgM and ProLIgM, respectively). A monoclonal antibody (MAb) against olive flounder IgM was produced. The MBPIgM and ProLIgM had apparent molecular weights of 77, 73, and 28 kDa in SDS-PAGE. Nine hybridomas secreting MAbs against olive flounder IgM were established: five MAbs for MBPIgM (1, 2, 3, 4, and 5) and four for ProLIgM (6, 7, 8, and 9). Western blotting indicated that seven MAbs recognized heavy (H; MAbs 1, 2, 3, 4, 5, 6, and 7) chains and one recognized light (L; MAb 9) chains of IgM, while MAb 8 did not recognize IgM. The results of enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) with bovine serum albumin (BSA, antigen) and the nine MAbs revealed that the optical density (OD) values of sera differed significantly between BSA- and non-immunized fish, despite some sera from non-immunized fish with slight high OD values. These results suggest that the MAbs produced in this study reacted specifically with the IgM from olive flounder.
We developed and subsequently characterized mouse antibodies (MAbs) against viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV, genotype IVa), the causative agent of VHS. Five hybridoma clones secreting MAbs against VHSV were established. The MAbs recognized the glycoprotein (MAbs 2C10, 18H4, 23H6, and 30B7) and nucleocapsid protein (15E10) of VHSV by western blot analysis. All five MAbs reacted with VHSV-infected cells and tissue homogenates of VHSV-infected olive flounder (Paralichthys olivaceus) by western blot analysis. Whereas, no reactivity was observed in normal cells and tissue homogenates of normal olive flounder. Moreover, these MAbs reacted with VHSV, but did not react with other fish viruses (infectious hematopoietic necrosis virus, hirame rhabdovirus, spring viraemia of carp virus, infectious pancreatic necrosis virus, marine birnavirus, and nervous necrosis virus) by enzyme linked immunosorbent assay (ELISA). These results indicate that the MAbs are specific to VHSV and can be of value in VHSV detection.
The neutralization epitopes of the outer capsid protein VP4 of a porcine rotavirus, Gottfried strain, were studied using neutralizing monocolonal antibodies(N-MAbs). Eight N-MAbs which are specific for the VP4 of Gottfried strain were used for analyzing the antigenic sites of VP4. Three different approaches were used for this analysis; i)testing the serological reactivity of each N-MAb against different G and P types of human and animal rotavirusese ii) analyzing N-MAb-resistant viral escape mutants and iii) performing nucleotide sequence analysis of the VP4 gene of each N-MAb-resistant viral escape mutant. From experimental results, at least four antigenic sites(I, II, III, and IV) were identified. Antigenic site I recognized by N-MAbs 24B9, 23G10, and 26A2 was separated from antigenic site II recognized by N-MAbs 30H5, 32B3, and 29B3. However, these antigenic sites were overlapped with antigenic site III recognized by N-MAb 21A1. The other antigenic site IV recognized by N-MAb 16D2 was separated from antigenic sites I, II, and III.
Proceedings of the Korean Society of Fisheries Technology Conference
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한국어업기술학회 2000년도 춘계수산관련학회 공동학술대회발표요지집
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pp.446-446
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2000
Specific polyclonal and/or monoclonal antibodies (MAbs) to immunoglobulins (Igs) and their subunits have proved to be valuable tools in immunological research and in immunological assays. In this study, we developed and characterized MAbs against flounder serum Igs. To obtain the pure flounder serum Igs, mouse IgG (mIgG) was immunized to flounder. Flounder Igs were purified by using mIgG-agarose affinity column chromatography. The structure of purified flounder Ig was observed, on denatured SDS-PAGE, to be composed of two heavy chains (77 and 72 kd) and two light chains (28 and 26 kd). MAbs were produced by fusion of myeloma cells (SP2/0) with Balb/c mouse spleen cells previously primed with the flounder Igs. Finally, three hybridoma clones, FIM 511, FIM 519 and FIM 562 were established to recognize both 2 heavy chains, 26 kd of light chain and 28 kd of light chain, respectively. On the other hand, the flounder immune sera collected on the weekly basis were tested on ELISA and immunoblot analysis whether boosting effect is present in flounder humoral immune system. As a result, the secondary immune response in flounder was ascertained on ELISA, but not on immunoblot analysis. Further, we observed an alteration of serum protein levels following immunization. Our MAbs and basic information on flounder humoral immune system obtained in this study will be helpful to control and monitor the efficiency of fish vaccines and therapeutic process of flounder diseases.
A rapid and sensitive method has been developed to detect a-fetoprotein (AFP) in human serum by a two-site sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) with monoclonal antibodies (MAbs) for human AFP within 1 h. To obtain the most sensitive and reliable MAbs. 12 kinds of MAbs (HPJ1 to HPJ12) as a capture antibody and 4 kinds of horseradish peroxidase (HRP) conjugated MAbs as a tracer antibody were investigated. Among these, only HPJ 10-HRP conjugated HPJ 1 (HPJ 10-HPJ $1^*$) and HPJ 11-HRP conjugated HPJ 10 (HPJ 11-HPJ $10^*$) were chosen as candidates based on the linearity of the standard curve and the sensitivity of the assay. To further characterize these two pairs. MAbs against human AFP were purified from hybridoma cells. conjugated with HRP. and then characterized to optimize the two-site sandwich ELISA The HPJ 10-HPJ $1^*$ pair showed a sensitivity of 1 ng/ml and a better reproducibility than the HPJ 11-HPJ $10^*$ pair when the human sera were incubated at $37^{\circ}C$ for 30 min. The results obtained for 480 randomly selected human sera showed 0~20 ng/ml of AFP values for the normal human sera. To test the utility of our kit, AFP concentrations were determined for 951 human sera (including 85 normal sera, 480 random blood sera, 213 HBsAg-positives. 50 anti-HCV antibody positives. and 47 malignant diseases) and compared with other commercially available AFP detecting kits. These results show that the present two-site sandwich ELISA method is a rapid, sensitive, and reliable procedure for detecting AFP in human serum.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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