The objective of this study was to establish a quantitative count method of Vibrio vulnificus cells. Plate count method is often used to count the number of V. vulnificus cells using thiosulfate citrate bile salts sucrose (TCBS) agar plate. However, this method is unsuitable for counting V. vulnificus cells due to growth inhibition and cell injuries in TCBS medium. In this study, we suggested a most probable number-polymerase chain reaction (MPN-PCR) method using alkaline peptone water medium for the quantification of V. vulnificus. This MPN-PCR method showed 2 log higher cell number than TCBS agar plate method. Similar results were also found in the control using, Luria-Bertani agar containing 2% NaCl. Thus, this MPN-PCR method can be used a sensitive method for quantitative count of viable V. vulnificus cells in fish and shellfish samples.
We applied a combination of most probable number-polymerase chain reaction (MPN-PCR) methods using a PCR procedure targeting the H-NS (VP1133) gene to detect Vibrio parahaemolyticus presence and density in seawater as well as within short-necked clam Ruditapes philippinarum tissues collected from Gomso Bay, Korea. In 30 seawater samples, V. parahaemolyticus levels ranged from less than 1.8 to $1.1{\times}10^3MPN/100mL$, and samples from August showed higher than those from other months. Furthermore, the levels of V. parahaemolyticus in six short-necked clam samples ranged from $7.8{\times}10^2$ to $2.1{\times}10^3MPN/100g$, approximately 2.5 times higher than in seawater samples from the corresponding month. Our results provide data on V. parahaemolyticus contamination in seawater and short-necked clam tissues, and help to improve quantitative methods of assessing V. parahaemolytcius levels.
The pathogenic Vibrio genus denotes halophilic bacteria that are distributed in aquatic environments, including both sea and freshwater. V. cholerae, V. vulnificus, and V. parahaemolyticus are the main species that can be potent human pathogens and the leading cause of septicemia, wound infections, and seafood borne gastroenteritis. The aim of this study was to investigate the presence of pathogenic Vibrios in seawater. We obtained a total of 80 seawater samples from the Geum River estuary area in the west coast of Korea from April to December 2021. Pathogenic Vibrios was determined using a combination of the most probable number-polymerase chain reaction (MPN-PCR) methods. The detection levels of V. cholerae, V. parahaemolyticus, and V. vulnificus in the seawater samples were 7.5%, 68.8%, and 30.0%, respectively. The quantitative results were as follows: 3.6-3.6 MPN/100 mL in V. cholerae, 3.6-3,400 MPN/100 mL in V. parahaemolyticus, and 3.6-4,300 MPN/100 mL in V. vulnificus. Overall, these results provide novel insight into the necessity for seawater sanitation in the Geum River estuary area, and could help reduce the risk of seafood-borne outbreaks caused by pathogenic Vibrios.
In this study, the competitive polymerase chain reaction (cPCR) was used to develop a direct enumeration method of Salmonella spp. in pork meat. After comparing three DNA extraction methods, the modified guanidine thiocyanate-phenol-chloroform method was chosen for Salmonella DNA extraction in artificially inoculated pork meat. The previously reported 284-bp invA gene (Rahn et al. Mol. Cell. Probes 1992) was tested for specificity, and 57 Salmonella strains and 24 non-Salmonella strains were evaluated. All Salmonella strains tested were invA positive, and all non-Salmonella strains produced no false positive amplification products. The detection limit achieved was as low as 1,460 colony-forming units (cfu) per 0.1g of pork meat. For cPCR, the invA gene, which features a 82 bp-deletion, was cloned in the pGEM-4Z vector. A known amount of competitor DNA, which has the same primer binding sites, was co-amplified with Salmonella chromosomal DNA from the artificially inoculated pork meat. The cell-number determined by cPCR was approximately equal to the cfu from the most probable number (MPN) method. Finally, the whole procedure took only 5 hr.
The pathogenic Vibrio genus contains halophilic bacteria that are distributed in marine and freshwater environments. Vibrio cholerae, Vibrio vulnificus, and Vibrio parahaemolyticus are potent human pathogens and leading causes of septicemia, wound infection, and seafood-borne gastroenteritis. The aim of this study was to investigate the presence of pathogenic Vibrio species in seawater off the west coast of Korea. Sixty-four seawater samples were obtained from different sites in Gomso Bay and Byeonsan from April 2018 to November 2018. Pathogenic Vibrio species were detected using a combination of most probable number (MPN)-polymerase chain reaction methods. V. cholerae, V. vulnificus, and V. parahaemolyticus were found in 0.0%, 20.3%, and 65.6% of seawater samples, respectively. Quantitative results revealed 3.6-23 MPN/100 mL of V. vulnificus, and 3.6-930 MPN/100 mL of V. parahaemolyticus in the samples. Overall, these results provide new insight into the necessity for seawater sanitation in Gomso Bay and Byunsan; they also provide evidence that will help reduce outbreaks of seafood-borne illness caused by pathogenic Vibrio species.
Competitive polymerase chain reaction (cPCR) was used to develop a direct enumeration method of Listeria monocytogenes in pork meat. Pork meat was artificially inoculated with L. monocytogenes and DNA was extracted using guanidine thiocyanate-phenol-chloroform and subjected to PCR amplification. Sixteen primer sets for L. monocytogenes hlyA gene were tested for sensitive detection and the DG69/DG74 primer set was selected. The detection limit achieved with this primer set was as low as 860 colony-forming units (cfu) per 0.1 g of pork meat. When the samples were cultured at $30^{\circ}C$ for 16 hr in Brain Heart Infusion (BHI) medium, even a single bacterium could be detected with this primer set by PCR. For cPCR, the hlyA gene, which features a 148 bp-deletion, was cloned in the pGEM-4Z vector. A known amount of competitor DNA which has the same primer binding sites was co-amplified with L. monocytogenes total DNA from the artificially inoculated pork meat. The cell-number determined by cPCR was approximately equal to cfu from the Most Probable Number (MPN) method. The whole procedure took only 5 hr.
The purpose of this study was to investigate the biosafety of Vibrio parahaemolyticus in raw salad vegetables at wet markets and supermarkets in Malaysia. A combination of the most probable number-polymerase chain reaction (MPN-PCR) method was applied to detect the presence of V. parahaemolyticus and to enumerate their density in the food samples. The study analyzed 276 samples of common vegetables eaten raw in Malaysia (Wild cosmos=8; Japanese parsley=21; Cabbage=30; Lettuce=16; Indian pennywort=17; Carrot=31; Sweet potato=29; Tomato=38; Cucumber=28; Four-winged bean=26; Long bean=32). The samples were purchased from two supermarkets (A and B) and two wet markets (C and D). The occurrence of V. parahaemolyticus detected was 20.65%, with a higher frequency of V. parahaemolyticus in vegetables obtained from wet markets (Wet market C=27.27%; Wet Market D=32.05%) compared with supermarkets (Supermarket A=1.64%; Supermarket B=16.67%). V. parahaemolyticus was most prevalent in Indian pennywort (41.18%). The density of V. parahaemolyticus in all the samples ranged from <3 up to >2,400 MPN/g, mostly <3 MPN/g concentration. Raw vegetables from wet markets contained higher levels of V. parahaemolyticus compared with supermarkets. Although V. parahaemolyticus was present in raw vegetables, its numbers were low. The results suggest that raw vegetables act as a transmission route for V. parahaemolyticus. This study will be the first biosafety assessment of V. parahaemolyticus in raw vegetables in Malaysia.
Enterovirues may cause gastrointestinal symptoms, cold, and fever, mainly in young children. They are also recognized as important agents in acute infections of the central nervous system such as meningitis and encephalitis, and in subacute and chronic infections of the cardiovascular system such as pericarditis, myocarditis and cardiomyopathy. They also can lead to postviral fatigue syndrome. For the detection of enteroviruses from the environmental samples, the combined cell culture-polymerase chain reaction (CC-PCR) technique was employed. In contrast to EPA standard method which mainly depends on the cell culture, it involved the use of cell culture, followed by PCR to improve the sensitivity and the accuracy of the test. According to the results of survey, from 1999 to 2000, for the presence of enteroviruses in the surface water samples from Nak-dong river, four out of twelve samples were positive for viruses. The titer of viruses in the surface water was ranged from 25 to 250 MPN. All of the viruses isolated were poliovirus type I with 98% nucleotide sequence homology. The result also clearly suggests the seasonal difference in the distribution of the waterborne enteroviruses in surface water because most of the viruses were mainly detected from the summer through the early autumn.
This study aimed to detect Enterococcus spp. strain, a fecal contamination indicator, by PCR assay from short neck clams Venerupis philippinarum in Cheonsu Bay area, Chu Island area and Wonsan Island area, the west coast of Korea, from November 2022 to February 2023 of Enterococcus spp. strain was detected in 19 (79.2%) among 24 samples, and its concentration ranged from <18 to 33,000 MPN (most probable number)/100 g. The 269 isolated Enterococcus spp. strains were identified by PCR assay, and Enterococcus spp. distribution in short neck clams were E. faecium (39.8%), E. faecalis (23.0%), E. hirae (21.9%), E. gallinarum (10.4%), E. casseliflavus (1.5%), E. durans (1.5%) and unidentified strains (1.9%). Thus, E. faecium was the most dominant strain followed by E. faecalis. Overall, these results provide novel insight into the necessity for shellfish sanitation in the sea and could help reduce the fecal contamination risk.
Chromosomal rearrangements are major pathology in hematological malignancies. The detection of minimal residual disease (MRD) for these gene rearrangements helps in monitoring treatment outcomes and predicting prognosis of patients. Recently, quantification of these gene transcripts based on real-time quantitative polymerase chain reaction (RQ-PCR) has been used as MRD detection. The purpose of this study is to ensure the usefulness of the RQ-PCR technique for detecting MRD in hamatological malignancy patients. The patients had been diagnosed to AML1-ETO positive AML, PML-RARa positive AML and BCR-ABL positive MPN at Chonnam National University Hwasun Hospital from Jan. 2006 to Aug. 2008. The fusion transcript was quntified by RQ-PCR and analyzed in comparison to conventional cytogenetics, FISH and RT-PCR. The fusion gene transcript was quantified by RQ-PCR in 57 samples from 14 patients with AML1-ETO positive AML, 79 samples from 27 patients with PML-RARa positive AML and 108 samples from 36 patients with CML. At diagnosis, the quantitative fusion transcripts for AM1-ETO, PML-RARa and BCR-ABL showed the range of 0.485552651~10.82233683 (mean 3.782217131, SD 2.998052348), 0.005300395~0.29267494 (mean 0.056901315, SD 0.080131381) and 0.1293929~12.94826849 (mean 1.701935665, SD 2.200913158). The increase of AML1-ETO fusion gene transcripts preceded morphologic relapse in two patients. Quantification of fusion gene transcripts by RQ-PCR could detected MRD in samples which were negative by in cytogenetic analysis or FISH. Our findings indicated that quantitative analysis of AML1-ETO, PML-RARa and BCR-ABL transcripts by RQ-PCR might be a useful tool for the monitoring of minimal residual disease in hematological malignancies.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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