Lysozyme is a protein found in egg white, tears, saliva, and other secretions. As a marketable natural alternative to preservatives, lysozyme can act as a natural antibiotic. In this study, we have isolated Bacillus licheniformis TIB320 from soil, which contains a lysozyme gene with various features. We have cloned and expressed the lysozyme in E. coli. The antimicrobial activity of the lysozyme showed that it had a broad antimicrobial spectrum against several standard strains. The lysozyme could maintain efficient activities in a pH range between 3 and 9 and from $20^{\circ}C$ to $60^{\circ}C$, respectively. The lysozyme was resistant to pepsin and trypsin to some extent at $40^{\circ}C$. Production of the lysozyme was optimized by using various expression strategies in B. subtilis WB800. The lysozyme from B. licheniformis TIB320 will be promising as a food or feed additive.
The lysozyme II gene of cabbage butterfly Artogeia rapae was cloned from fat body of the larvae injected with E. coli and its nucleotide sequence was determined by the RACE-PCR. It has an open reading frame of 414 bp nucleotides corresponding to 138 amino acids including a signal sequence of 18 amino acids. The estimated molecular weight and the isoelectric point of the lysozyme II without the signal peptide were 13,649.38 Da and 9.11, respectively. The A. rapae lysozyme II (ARL II) showed the highest identity (81%) in the amino acid sequence to Manduca sexta lysozyme among other lepidopteran species. The two catalytic residues ($Glu^{32}$ and $Asp^{50}$) and the eight Cys residue motifs, which are highly conserved among other c-type lysozymes in invertebrates and vertebrates, are also completely conserved. A phylogenetic analysis based on amino acid sequences indicated that the ARL II was more closely related to M. sexta, Hyphantria cunea, Heliothis virescens, and Trichoplusia ni lysozymes. The ARL II gene was expressed in Spodoptera frugiperda 21 insect cells and the recombinant ARL II (rARL II) was purified from cell-conditioned media by cation exchange column chromatography and reverse phase FPLC. The purified rARL II was able to form a clear zone in lysoplate assay against Micrococcus luteus. The lytic activity was estimated to be 511.41 U/mg, 1.53 times higher than that of the chicken lysozyme. The optimum temperature for the lytic activity of the rARL II was $50^{\circ}C$, the temperature dependency of the absolute lytic activity of rARL II was higher than that of the chicken lysozyme at low temperatures under $65^{\circ}C$.
박테리오 파아지 T7 RNA 중합효소는 어떤 전사인자도 관여하지 않는 간단한 시스템으로 파아지 RNA 중합효소와 전사촉진제만의 단백질-DNA 상호작용에 의해 전사가 진행된다. T7 파아지의 숙주 세포의 파괴에 관여하는 T7 파아지 lysozyme은 전사를 억제하고, 전사종결에 영향을 미친다. 따라서 T7 파아지 lysozyme 유전자를 대장균 발현 벡터에 삽입하여 pT7lys를 얻었고, 발현시켜 Ni-NTA column chromatography로 순수 분리하였다. T7 파아지 lysozyme은 SDS-gel에서 단일 밴드로 확인하였으며, amidase 활성 역시 확인하였다. 염기서열 특이적 전사 종결에 미치는 T7 파아지 lysozyme의 역할을 알아보기 위하여, rrnB T1 전사종결 인자 부근에서의 전사연장 복합체 제조에 미치는 T7 파아지 lysozyme의 영향력을 조사하였다. 이 결과 T7 파아지 lysozyme 존재 하에 형성되는 전사연장 복합체는 불안정함을 알 수 있었다.
A lysozyme gene from breast of Tibetan sheep was successfully expressed by secretion using a-factor signal sequence in the methylotrophic yeast, Pichia pastoris GS115. An expression yield and specific activity greater than 500 mg/L and 4,000 U/mg was obtained. Results at optimal pH and temperature showed recombinant lysozyme has higher lytic activity at pH 6.5 and $45^{\circ}C$. This study demonstrates the successful expression of recombinant lysozyme using the eukaryotic host organism P. pastoris paving the way for protein engineering. Additionally, this study shows the feasibility of subsequent industrial manufacture of the enzyme with this expression system together with a high purity scheme for easy high-yield purification.
닭의 진화를 이해하기 위하여 변이가 많다고 알려진 LYZ 유전자의 엑손과 인트론에 존재하는 단일염기다형이 본 연구를 통해 확인되었다. 2개의 한국 재래실용계에서 총 24개체의 DNA 샘플이 본 연구에서 이용되었으며 단일염기 다형의 확인을 위하여 3개체의 샘플을 혼합하여 염기서열 분석을 실시하였다. 적색야계와의 비교를 통하여 두 한국 재래실용계는 18개의 염기서열변이를 확인할 수 있었으며 한국 재래실용계 간에는 15개의 염기서열 변이를 확인할 수 있었다. 총 33개의 변이 중 두 개의 삽입변이(21 bp와 4 bp)가 확인되었다. 한편, 2번째 엑손의 1426 bp 위치에 존재하는 단일염기 다형(p.Ala49Val)은 아미노산의 변이를 나타내는 미스센스 돌연변이로 확인되었다. 이 돌연변이는 이 lysozyme 효소의 촉매작용을 하는 위치에 놓여 있어 효소의 활성과 밀접한 관계가 있을 것으로 추정된다. 본 연구에서 밝혀진 LYZ 유전자의 변이는 이 유전자의 기능뿐 아니라 한국 재래실용계 집단의 구조를 이해하는데 기초자료로 이용될 것으로 사료된다.
본 연구에서는 안정성이 보장된 효모를 숙주로 하여 이미 lysozyme 생산능이 확인된 저 copy수의 YCp type인 pHK101의 생산능을 높이기 위해 고발현 벡터인 다 copy 수의 YEp type인 pHK501을 구축하였다. pHK501과 pHK101형질전환체의 M. luteus를 기질로 한 lysoplate assay 비교에서 확실한 생산량의 증가를 생육저지환을 통해 확인하였다. 또한 E. coli에서 peptidoglycan만을 추출하여 기질로 사용한 lysoplate assay에서도 pHK501형질전환체의 배양액 중에는 정상적 인 HLY의 생산을 직접 확인할 수 있었다. 플라스크 배양에서 배양시간에 따른 HLY의 최대 생산량은 81시간만에 pHK501형질전환체가 55 units/$m\ell$에 도달됨으로써 pHK101(7 units/$m\ell$)에 비해 약 8배 증가됐다. 발효조규모에서의 HLY 생산은 24시간만에 26.8 units/$m\ell$(1.12 units/$m\ell$/h)에 도달하였고 전체 생산성은 플라스크배양(0.625 units/$m\ell$/h)에 비해 약 1.8배 정도 증가되었다.
Chicken-type lysozyme (c-lysozyme) is present in shrimp and is active against some bacteria. To further understand the regulation of c-lysozyme in the fleshy shrimp Fenneropenaeus chinensis, we determined the tissue-specific gene expression of c-lysozyme and the time-course of mRNA expression in response to Vibrio anguillarum and lipopolysaccharide (LPS) injection by quantitative reverse real-time polymerase chain reaction. The results showed that c-lysozyme was expressed in all tissues tested, including gill, eyestalk, eye, hemocytes, hepatopancreas, intestine, heart, and pleopod. It was most highly expressed in the intestine followed by the eyestalk, gill, hemocytes and hepatopancreas. The mRNA expression level began to decline in a short time after V. anguillarum challenge and was then upregulated by two fold or more at 24 h post injection (hpi) compared to that at 0 h. Expression was suppressed shortly after LPS injection and began to increase with higher levels of 5.8-, 5.2- and 8.4-fold at 24, 48, and 72 hpi, respectively. Higher expression was sustained and showed a gradual increasing trend until the end of the experiment (72 hpi). These results increase our understanding of the regulation of defense mechanisms and facilitate an evaluation of the effects of probiotics or immunostimulants in shrimp culture.
The induction of cellular and humoral immunity and cytokine gene expression by synthetic CpG oligodexoynucleotides (CpG-ODNs) has not been investigated systematically in olive flounder Paralichthys olivaceus in vivo. We optimized the proper concentration of CpG-ODNs using an in vitro assay for the superoxide anion $(O_2^-)$. CpG-ODNs induced $O_2^-$ and nitric oxide (NO) production, lysozyme activity, and the proinflammatory cytokine gene expression of $IL-1{\beta}$ and $TNF-{\alpha}$ in olive flounder significantly in vivo, whereas non-CpG-ODNs did not produce these effects or produced them to a lesser extent. This implied that CpG-ODNs could stimulate cellular and humoral immunity and cytokine gene expression in olive flounder. This is the first evidence of NO production and the first study on the mRNA expression of the proinflammatory cytokine genes $IL-1{\beta}$ and $TNF-{\alpha}$ in olive flounder in response to CpG-ODNs. Comparison of the variation in NO production and lysozyme activity to that of other studies led us to postulate that a group-specific difference exists in the immune responses of olive flounder against CpG-ODNs. Furthermore, the detailed immunostimulatory spectrum of CpG-ODNs in olive flounder could be a useful index with which to analyze the effect of CpG-ODNs against the challenge test prior to field applications.
식물근부병의 방제균으로 선발된 Bacillus subtilis YBL-7의 식물부균 Fusarium solani에 대한 길항력을 유전공학적 조작에 의해 다목적으로 증강시킬 수 있는지를 타진하기 위해 외부유전자인 Bacillus pasteurii의 urease 유전자를 생물방제균 B.subtilis YBL-7내 도입자하고자 시도하였다. 외부 urease 유전자는 B.pasteurii의 urease gene을 shuttle vector인 pGR71의 HindII site에 삽입하여 E.coli내에서 발현시킨 pGU66을 사용하여 형질전환시켰으며 이때의 최적 형질전환조건과 도입된 urease 유전자의 발현을 조사해 보았다.
한국작물학회 2017년도 9th Asian Crop Science Association conference
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pp.12-12
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2017
Genetic improvement in potato can be carried out through several approaches, as sexual crosses, somatic hybridization, mutation and genetic engineering. Although the approach is different, but the goal is the same, to get a superior cultivar. Mutation and genetic engineering are very interesting methods for genetic improvement of potato plants. Mutation by gamma-ray irradiation have been performed to get some new potato cultivars which are more resistant to disease and have higher productivity. We have carried out a mutation of some potato cultivars and obtained some excellent clones to be potentially released as new superior cultivars. By the mutation method, we have released one potato cultivar for the French fries industry, and we registered one cultivar of potato for chips, and two cultivar for vegetable potatoes. Actually we are doing multi-location trial for three clones to be released as new cultivars. Through genetic engineering, several genes have been introduced into the potato plant, and we obtained several clones of transgenic potato plants. Transgenic potato plants containing FBPase gene encoding for fructose bisphosphatase, have a higher rate of photosynthesis and higher tuber productivity than non-transgenic plants. This result suggests that FBPase plays an important role in increasing the rate of photosynthesis and potato tuber productivity. Some transgenic potatoes containing the Hd3a gene are currently being evaluated for their productivity. Over expression of the Hd3a gene is expected to increase tuber productivity and induce flowering in potatoes. Transgenic potato plants containing MmPMA gene encoding for plasma membrane ATPse are more tolerant to low pH than non-transgenic plants, indicating that plasma membrane ATPase plays an important role in the potato plant tolerance to low pH stress. Transgenic potato plants containing c-lysozyme genes, are highly tolerant of bacterial wilt diseases caused by Ralstonia solanacearum and bacterial soft rot disease caused by Pectobacterium carotovorum. Expression of c-lyzozyme gene plays an important role in increasing the resistance of potato plants to bacterial diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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