Lysozyme is a protein found in egg white, tears, saliva, and other secretions. As a marketable natural alternative to preservatives, lysozyme can act as a natural antibiotic. In this study, we have isolated Bacillus licheniformis TIB320 from soil, which contains a lysozyme gene with various features. We have cloned and expressed the lysozyme in E. coli. The antimicrobial activity of the lysozyme showed that it had a broad antimicrobial spectrum against several standard strains. The lysozyme could maintain efficient activities in a pH range between 3 and 9 and from $20^{\circ}C$ to $60^{\circ}C$, respectively. The lysozyme was resistant to pepsin and trypsin to some extent at $40^{\circ}C$. Production of the lysozyme was optimized by using various expression strategies in B. subtilis WB800. The lysozyme from B. licheniformis TIB320 will be promising as a food or feed additive.
The lysozyme II gene of cabbage butterfly Artogeia rapae was cloned from fat body of the larvae injected with E. coli and its nucleotide sequence was determined by the RACE-PCR. It has an open reading frame of 414 bp nucleotides corresponding to 138 amino acids including a signal sequence of 18 amino acids. The estimated molecular weight and the isoelectric point of the lysozyme II without the signal peptide were 13,649.38 Da and 9.11, respectively. The A. rapae lysozyme II (ARL II) showed the highest identity (81%) in the amino acid sequence to Manduca sexta lysozyme among other lepidopteran species. The two catalytic residues ($Glu^{32}$ and $Asp^{50}$) and the eight Cys residue motifs, which are highly conserved among other c-type lysozymes in invertebrates and vertebrates, are also completely conserved. A phylogenetic analysis based on amino acid sequences indicated that the ARL II was more closely related to M. sexta, Hyphantria cunea, Heliothis virescens, and Trichoplusia ni lysozymes. The ARL II gene was expressed in Spodoptera frugiperda 21 insect cells and the recombinant ARL II (rARL II) was purified from cell-conditioned media by cation exchange column chromatography and reverse phase FPLC. The purified rARL II was able to form a clear zone in lysoplate assay against Micrococcus luteus. The lytic activity was estimated to be 511.41 U/mg, 1.53 times higher than that of the chicken lysozyme. The optimum temperature for the lytic activity of the rARL II was $50^{\circ}C$, the temperature dependency of the absolute lytic activity of rARL II was higher than that of the chicken lysozyme at low temperatures under $65^{\circ}C$.
T7 RNA polymerase is a single subunit RNA polymerase able to accomplish whole transcription process without auxiliary factors. T7 phage lysozyme involcing in destruction of host cell wall repress T7 transcription and affects transcription termination process. Therefore expression vector pT7lys containing T7 phage lysozyme gene was constructed and expressed. T7 phage lysozyme protein was purified to homogeneity by Ni-NTA column chromatography. Also amidase activity of the purified lysozyme was identified. In order to understand the effect of the lysozyme on the sequence specific transcription termination. T7 transcription elongation complexes at the site rrnB T1 transcription termination signal were made in the presence the lysozyme. The results shows that the transcription elongation complexes are unstable in the presence of T7 phage lysozyme.
A lysozyme gene from breast of Tibetan sheep was successfully expressed by secretion using a-factor signal sequence in the methylotrophic yeast, Pichia pastoris GS115. An expression yield and specific activity greater than 500 mg/L and 4,000 U/mg was obtained. Results at optimal pH and temperature showed recombinant lysozyme has higher lytic activity at pH 6.5 and $45^{\circ}C$. This study demonstrates the successful expression of recombinant lysozyme using the eukaryotic host organism P. pastoris paving the way for protein engineering. Additionally, this study shows the feasibility of subsequent industrial manufacture of the enzyme with this expression system together with a high purity scheme for easy high-yield purification.
Single nucleotide polymorphisms (SNPs) in chicken lysozyme (LYZ) gene were investigated in this study. The identification of SNPs in both exon and intron in LYZ gene has led to understanding of evolution for the domestic chicken populations. A total of 24 samples from two Korean native commercial chicken populations (CCPs) were used for the initial identification of SNPs by mixing three DNA samples for sequencing experiments. By comparing with red jungle fowl (RJF), two commercial chicken populations have 18 common polymorphisms. Between two commercial chicken populations, 15 polymorphisms were identified. Of the 33 polymorphisms identified, two indels (21 and 4 bp) were found. Whereas, only one polymorphism in exon 2 at the bp position 1426 was a non-synonymous substitution (p.Ala49Val), indicating the amino acid changes. The identified non-synonymous substitution (p.Ala49Val) is located close to the catalytic sites of the enzyme, which might affect its activity. In our investigation, the polymorphisms in LYZ gene can provide broad ideas for the variation of Korean native chicken populations from the ancestor of chicken breeds as well as the some biological functions of the LYZ gene.
We have already prepared a human lysozyme (HLY) structural gene from chemically synthesized 38 oligomers with high codon usage in Saccharomyces cerevisiae. For directing the synthesis and secretion of HLY in S. cerevisiae, two types of expression vectors, a YCp centromere-based vector, pHK101 and a YEp 2-$\mu\textrm{m}$ circle-based vector, pHK501 were constructed. With the resulting plasmids, we have confirmed that yeast transformant harboring pHK501 has more secreted HLY than pHK101-transformant by using a lysoplate and a turbidimetric assay. In flask cultivation, pHK501-transformant produced active HLY about 8 times (55 units/$m\ell$) higher than pHK101-transformant. From batch cultivation, the HLY productivity was obtained with 1.12 units/$m\ell$/h, corresponding to a 1.8-fold increase compared with flask fermentation. These results indicate that yeast transformant with pHK501 vector overexpressed and secreted HLY than that of YCp type vector.
Chicken-type lysozyme (c-lysozyme) is present in shrimp and is active against some bacteria. To further understand the regulation of c-lysozyme in the fleshy shrimp Fenneropenaeus chinensis, we determined the tissue-specific gene expression of c-lysozyme and the time-course of mRNA expression in response to Vibrio anguillarum and lipopolysaccharide (LPS) injection by quantitative reverse real-time polymerase chain reaction. The results showed that c-lysozyme was expressed in all tissues tested, including gill, eyestalk, eye, hemocytes, hepatopancreas, intestine, heart, and pleopod. It was most highly expressed in the intestine followed by the eyestalk, gill, hemocytes and hepatopancreas. The mRNA expression level began to decline in a short time after V. anguillarum challenge and was then upregulated by two fold or more at 24 h post injection (hpi) compared to that at 0 h. Expression was suppressed shortly after LPS injection and began to increase with higher levels of 5.8-, 5.2- and 8.4-fold at 24, 48, and 72 hpi, respectively. Higher expression was sustained and showed a gradual increasing trend until the end of the experiment (72 hpi). These results increase our understanding of the regulation of defense mechanisms and facilitate an evaluation of the effects of probiotics or immunostimulants in shrimp culture.
The induction of cellular and humoral immunity and cytokine gene expression by synthetic CpG oligodexoynucleotides (CpG-ODNs) has not been investigated systematically in olive flounder Paralichthys olivaceus in vivo. We optimized the proper concentration of CpG-ODNs using an in vitro assay for the superoxide anion $(O_2^-)$. CpG-ODNs induced $O_2^-$ and nitric oxide (NO) production, lysozyme activity, and the proinflammatory cytokine gene expression of $IL-1{\beta}$ and $TNF-{\alpha}$ in olive flounder significantly in vivo, whereas non-CpG-ODNs did not produce these effects or produced them to a lesser extent. This implied that CpG-ODNs could stimulate cellular and humoral immunity and cytokine gene expression in olive flounder. This is the first evidence of NO production and the first study on the mRNA expression of the proinflammatory cytokine genes $IL-1{\beta}$ and $TNF-{\alpha}$ in olive flounder in response to CpG-ODNs. Comparison of the variation in NO production and lysozyme activity to that of other studies led us to postulate that a group-specific difference exists in the immune responses of olive flounder against CpG-ODNs. Furthermore, the detailed immunostimulatory spectrum of CpG-ODNs in olive flounder could be a useful index with which to analyze the effect of CpG-ODNs against the challenge test prior to field applications.
- To investigate the possibility of genetic development for a multi-purpose strain of Bacillus subtilis YBL-7 against Fusat-iurn solani causing root rot of many impotant corps, the plasmid pGU66 inserting urease gene of Bacillus pasteurii had been introduced into Bacillus subtilis YBL-7 by PEG-induced protoplast (PIP) transformation system. Protoplasts of B. subtilis YBL-7 were prepared by treating the cells with lysozyme (200 $\mu g$/ml) in hypertonic buffer (SMMP). The highest transformation frequency was achieved when cells of the strain with lysozyme at $42^{\circ}C$ for 90 minutes. Optimal transformation was obtained using polyethylene glycol (MW 4000) at final concentration of 30% (V/V). The transformation frequency was increased proportionally to 1.2 $\mu g$ of plasmid DNA. At best condition, the transformation frequency (transformants/ regenerants/$\mu g$ of DNA) for pGU66 was appoximately $4 \times 10^{-3}$. Also, the urease gene was strongly expressed in the transformants of B. subtilis YBL-7 and maintained steadily. The antifungal ability of transformant was very similar to that of B. ssubtilis YBL-7.
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.12-12
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2017
Genetic improvement in potato can be carried out through several approaches, as sexual crosses, somatic hybridization, mutation and genetic engineering. Although the approach is different, but the goal is the same, to get a superior cultivar. Mutation and genetic engineering are very interesting methods for genetic improvement of potato plants. Mutation by gamma-ray irradiation have been performed to get some new potato cultivars which are more resistant to disease and have higher productivity. We have carried out a mutation of some potato cultivars and obtained some excellent clones to be potentially released as new superior cultivars. By the mutation method, we have released one potato cultivar for the French fries industry, and we registered one cultivar of potato for chips, and two cultivar for vegetable potatoes. Actually we are doing multi-location trial for three clones to be released as new cultivars. Through genetic engineering, several genes have been introduced into the potato plant, and we obtained several clones of transgenic potato plants. Transgenic potato plants containing FBPase gene encoding for fructose bisphosphatase, have a higher rate of photosynthesis and higher tuber productivity than non-transgenic plants. This result suggests that FBPase plays an important role in increasing the rate of photosynthesis and potato tuber productivity. Some transgenic potatoes containing the Hd3a gene are currently being evaluated for their productivity. Over expression of the Hd3a gene is expected to increase tuber productivity and induce flowering in potatoes. Transgenic potato plants containing MmPMA gene encoding for plasma membrane ATPse are more tolerant to low pH than non-transgenic plants, indicating that plasma membrane ATPase plays an important role in the potato plant tolerance to low pH stress. Transgenic potato plants containing c-lysozyme genes, are highly tolerant of bacterial wilt diseases caused by Ralstonia solanacearum and bacterial soft rot disease caused by Pectobacterium carotovorum. Expression of c-lyzozyme gene plays an important role in increasing the resistance of potato plants to bacterial diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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