Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제30권5호
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pp.406-413
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2004
Progress in medical science and cell biology has resulted in the transplantation of human cells and tissues from on human into another, facilitating reproduction and the restoration of form and function, as well as enhancing the quality of life. For more than 40 years, society has recognized the medical and humanitarian value of donation and transplanting organs and tissues. The standard operating procedures of hard tissues reflect the collective expertise and conscientious efforts of tissue bank professionals to provide a foundation for the guidance of tissue banking activities. Procurement of allograft tissues from surgical bone donors is a part of tissue banking. During the past decades the use of bone allografts has become widely accepted for the filling of skelectal defects in a variety of surgical procedures. In particular in the field of orthopaedic and oral and maxillofacial surgery the demand for allografts obtained from either living or post-mortem donors has increased. Hospital-based tissue banks mainly retrieve allografts from living donors undergoing primary total hip replacement for osteoarthritis or hemi arthroplasty for hip fractures and orthgnatic surgery such as angle reduction. Although bone banks have existed for many years, the elements of organized and maintaining a hospital bone bank have not been well documented. The experience with a tissue bank at Korea Tissue Bank(KTB) between 2001 and 2004 provides a model of procurement, storage, processing, sterilization and documentation associated with such a facility. The following report describes the standard operating procedures of hard tissues such as femoral head obtained from living donors.
Proteases are one of the most abundant classes of enzymes in living organisms and have been considered major targets for drug development. However, despite the ability to specifically cleave their substrates, many attempts to assay protease activity have generally relied upon the use of gel zymography or fluorophore-labeled peptide substrates, which is limited in rapid and multiplex analysis. Here we review the recent advances in nanoparticle (NP)-utilized assays of protease activity focused on in vitro and cell imaging-based approaches. Owing to large surface area and unprecedented physical properties of NPs, these approaches are anticipated to facilitate many applications related to protease activity-based disease diagnosis and drug discovery.
Cho Young-Hak;Kang Beom-Joon;Hong Seok-Kwan;Kang Jeong-Jin
Journal of Mechanical Science and Technology
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제20권3호
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pp.297-309
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2006
This paper deals with a novel structure for single-cell characterization which makes use of bimorph micro thermal actuators combined with electrical sensor device and integrated microfluidic channel. The goal for this device is to capture and characterize individual biocell. Quantitative and qualitative characteristics of bimorph thermal actuator were analyzed with finite element analysis methods. Furthermore, optimization for the dimension of cantilevers and integrated parallel probe systems with microfluidic channels is able to be realized through the virtual simulation for actuation and the practical fabrication of prototype of probes. The experimental value of probe deflection was in accordance with the simulated one.
Ferritin is an iron storage protein found in most living organisms. For expression and industrial use, human light chain ferritin (L-ferritin) was cloned from human liver cDNA library and expressed in Pichia pastoris strain GS115. The recombinant L-ferritin in Pichia pastoris was glycosylated. In a fed-batch culture, the cell mass reached about 57 g/l of dry cell weight, and the L-ferritin in the cell was increased to about 95 mg/l after 150 h. In an atomic absorption spectrometry analysis, the intracellular content of iron in the L-ferritin transformant was measured as $1,694{\pm}85\;\mu\textrm{g}g/g$, which is 5.4-fold more than that of the control strain. This L-ferritin transformant could serve as iron-fortified nutrients in animal feed stock.
Two quite different types of plant cells are analysed with regard to transduction of the gravity stimulus: (i) Unicellular rhizoids and protonemata of characean green algae; these are tube-like, tip-growing cells which respond to the direction of gravity. (ii) Columella cells located in the center of the root cap of higher plants; these cells (statocytes) perceive gravity. The two cell types contain heavy particles or organelles (sataoliths) which sediment in the field of gravity, thereby inducing the graviresponse. Both cell types were studied under microgravity conditions ($10^{-4}$/ g) in sounding rockets or spacelabs. From video microscopy of living Chara cells and different experiments with both cell types it was concluded that the position of statoliths depends on the balance of two forces, i.e. the gravitational force and the counteracting force mediated by actin microfilaments. The actomyosin system may be the missing link between the gravity-dependent movement of statoliths and the gravity receptor(s); it may also function as an amplifier.
In order to understand the phenomenon in a living cell correctly, it has been required to obtain intact responses from the cell membrane without disrupting the cytoplasmic circumstances. Gramicidin perforated patch configuration allows the electrical access to the whole cell with a minimal dialysis of cytoplasm and preventing the loss of native intracellular constituents, such as $Cl^-.$ Here, we would like to show the background of this method and the actual application of the gramicidin perforated patch recording mode on the dissociated neurons.
Muhammad Safeer;Muhammad Taj;Mohamed A. Khadimallah;Muzamal Hussain;Saima Akram;Faisal Mehmood Butt;Abdelouahed Tounsi
Advances in nano research
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제15권1호
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pp.15-23
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2023
Dynamics of protein filamentous has been an active area of research since the last few decades as the role of cytoskeletal components, microtubules, intermediate filaments and microfilaments is very important in cell functions. During cell functions, these components undergo the deformations like bending, buckling and vibrations. In the present paper, bending and buckling of microfilaments are studied by using Euler Bernoulli beam theory with nonlocal parametric effects in conjunction. The obtained results show that the nonlocal parametric effects are not ignorable and the applications of nonlocal parameters well agree with the experimental verifications.
Proteoform diversity is greatly increased by glycosylation, the primary post-translational modification of proteins. Glycans, also known as oligosaccharides, are molecules that are essential to almost all living things. They can affect protein folding and functionality, modulate cell-cell interactions, and support the proliferation of numerous diseases when they are found on cell surfaces or bound to proteins. A thorough understanding of their fundamental structure is necessary to gain insight into their characteristics and functions. But a major obstacle is the structural intricacy of glycans by design. The stereochemistry and regiochemistry of carbohydrates vary and are frequently branched. Because of its superior sensitivity and the abundance of fragmentation information it can provide, mass spectrometry is now the method of choice for glycan and glycopeptide analysis. Differentiating between the structures of isomeric and isobaric glycopeptides, however, presents a difficulty for MS-based characterization. Ion mobility plus mass spectrometry (IM-MS) has become a very promising new method for glycan research in recent years. Recent developments in the growing discipline of glycosylation analysis utilizing IM-MS are outlined in this review, with a focus on the MS methodology and its ability to resolve isomeric glycans.
Tumor cell morphology is closely related to its migratory behaviors. An active tumor cell has a highly irregular shape, whereas a spherical cell is inactive. Thus, quantitative analysis of cell features is crucial to determine tumor malignancy or to test the efficacy of anticancer treatment. We use 3D time-lapse phase-contrast microscopy to analyze single cell morphology because it enables to observe long-term activity of living cells without photobleaching and phototoxicity, which is common in other fluorescence-labeled microscopy. Despite this advantage, there are image-level drawbacks to phase-contrast microscopy, such as local light effect and contrast interference ring. Therefore, we first corrected for non-uniform illumination artifacts and then we use intensity distribution information to detect cell boundary. In phase contrast microscopy image, cell is normally appeared as dark region surrounded by bright halo ring. Due to halo artifact is minimal around the cell body and has non-symmetric diffusion pattern, we calculate cross sectional plane which intersects center of each cell and orthogonal to first principal axis. Then, we extract dark cell region by analyzing intensity profile curve considering local bright peak as halo area. Finally, we calculated the Fourier descriptor that morphological characteristics of cell to classify tumor cells into active and inactive groups. We validated classification accuracy by comparing our findings with manually obtained results.
Protein-Protein Interactions (PPIs) play essential roles in diverse biological processes and their misregulations are associated with a wide range of diseases. Especially, the growing attention to PPIs as a new class of therapeutic target is increasing the need for an efficient method of cell-based PPI analysis. Thus, we newly developed a robust PPI assay (SeePPI) based on the co-translocation of interacting proteins to the discrete subcellular compartment 'processing body' (p-body) inside living cells, enabling a facile analysis of PPI by the enriched fluorescent signal. The feasibility and strength of SeePPI (${\underline{S}}ignal$${\underline{e}}nhancement$${\underline{e}}xclusively$ on ${\underline{P}}-body$ for ${\underline{P}}rotein-protein$${\underline{I}}nteraction$) assay was firmly demonstrated with FKBP12/FRB interaction induced by rapamycin within seconds in real-time analysis of living cells, indicating its recapitulation of physiological PPI dynamics. In addition, we applied p53/MDM2 interaction and its dissociation by Nutlin-3 to SeePPI assay and further confirmed that SeePPI was quantitative and well reflected the endogenous PPI. Our SeePPI assay will provide another useful tool to achieve an efficient analysis of PPIs and their modulators in cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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