The aims of this study were to encapsulate arbutin (AR) in liposome to enhance the skin-whitening activity, and to investigate the effect of liposome formulation on the entrapment efficiency (EE%), skin permeation rate and skin deposition. The liposomes were prepared by a film dispersion method with several different formulations and were separated from the solution by using the gel-filtration method. The physical (size distribution, morphology) and chemical (drug entrapment efficiency, hairless mouse skin permeation and deposition) properties of liposomes were characterized. The entrapment efficiency in all liposome formulations varied between 4.35% and 17.63%, and was dependent on the lipid content. The particle sizes of liposomes were in the range of $179.9{\sim}212.8\;nm$ in all liposome formulations. Although the permeation rate of AR in the liposome formulations decreased compared with AR solution, the deposition amount of AR in the epidermis/dermis layers increased in AR liposomal formulation. These results suggest that liposomal formulation could enhance the skin deposition of hydrophilic skin-whitening agents, thereby enhancing their activities.
Epidermal Growth Factor (EGF), discovered by Stanley Cohen in 1960, has a potential healing effect for wounds and bums. Considering wound care, in order to avoid physical stress at the wound surface and efficiently apply EGF, the need for viscous spraying solutions was essential. Viscous spraying solutions containing EGF were prepared by utilizing viscosity-building polymer, poloxamer 407, and by introducing liposome systems. On the other hand, EGF is purified on reverse HPLC gradient program with the mobile solvent of acetonitrile. It is necessary to observe liposomal EGF changes as the acetonitrile contents varied in order to introduce liposome systems at the step of EGF solution (at the time of EGF purifying). By evaluating the size distribution and entrapment efficiency of EGF liposome, it was possible to detemine the limit contents of acetonitrile and establish the optimal conditions for solution formulations. It has been revealed that, as the acetonitrile content increases, mean diameter of EGF liposomes increased and the width of size distribution tends to decrease. The limit contents of acetonitrile were 10%, since there was little difference to the acetonitrile free liposomes.
Binding properties of the degraded 59kD phytochrome from etiolated Avena sativa seedlings to liposomes and Cibacron Blue dye were examined. In contrast with the native 124kD and partially degraded 118kD phytochromes, the farred light absorbing(Pfr) forms of the 59kD phytochrome binds to liposomes and Cibacron Blue dye via electrostatic interactions. Results indicate that the 59kD Pfr does not hold a hydrophobic surface which is exposed upon Pr to Pfr phototransformation of the 124 and 118kD phytochromes. Since a relatively extensive hydrophobic region is located in the chromophore bearing domain(59kD) of phytochrome(Hershey et al., Nuc. Acids Res., 13, 8543, 1986), the 55kD tryptic domain from the C-terminus plays an important role on the exposure of the hydrophobic area in the 118 and 124 Pfr to occur.
Kim, Na-Hyung;Park, Hyo-Min;Chung, Soo-Yeon;Go, Eun-Jung;Lee , Hwa-Jeong
Archives of Pharmacal Research
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v.27
no.12
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pp.1263-1269
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2004
The objective of this study was to characterize immunoliposomes carrying plasmid DNA with optimal encapsulation efficiency and antibody density. Plasmid DNA was encapsulated by the freezing/thawing method into liposomes composed of POPC (1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycerol- 3-phosphocholine), DDAB (didodecyl dimethyl ammonium bromide), DSPE-PEG 2000 (distearoyl phosphatidyl ethanolamine polyethylene glycol 2000) and DSPE-PEG 2000-maleimide. The liposomes carrying plasmid DNA were extruded through two stacked polycarbonate filters, of different pore size, to control the liposome size. Then, rat IgG molecules were conjugated to the liposomes. The immunoliposomes containing plasmid DNA were separated from the free plasmid DNA and unconjugated IgG by Sepharose CL-4B column chromatography. The DNA amount encapsulated was affected by DDAB (cationic lipid) concentration, the initial amount of plasmid DNA between 10 ${\mu}g$ and 200 ${\mu}g$, the total lipid amount and plasmid DNA size, but not significantly by liposome size. By varying the ratio of DSPE-PEG 2000-maleimide to IgG, the number of IgG molecules per liposome was changed significantly.
By using the former equation (8), we modified the equation which can show the dissimilar osmotic behavior of liposome with composition change. The slope of the new equation was presented as the ratio of osmotically active volume (V$_{act}$= ) to the total volume (V$_{totel}$= $_{acl}$+ V$_{dead}$ ; V$_{dead}$ is osmotically inactive volume) of loposomes, we defined is as a Z-value, which can elucidate the dissimilarity of the osmotic activity of multilamellar liposomes with the change of phospholipid composition and the differences of physicochemical properties of liposomes. Z-value was applied for studying the physico-chemical properties of liposomal membrane. The factor that affects on the Z-value was not the lipid concentration of liposome stock dispersion but the lipid composition of liposomal membrane. As the content of dicetylphosphate, the negative charged phospholipid, was increased, the osmotic activity, represented by Z-value, of multilamellar liposome was decreased. Using the hypertonic conditions (shrinking region), Z-value steadily increased and reached a maximum at 10 mole percent cholesterol with increasing the cholesterol content.
Liposomes and proteoliposomes, artificial membranes, can interact with many solutes, such as drugs, peptides and proteins. The immobilization of (prot대)liposomes as supramolecular aggregates on gold surfaces have potential applications in nano and biosensor technology. We demonstrated a quartz crystal analyzer (QCA) based method to monitor the construction of multi-layers of unilamellar liposomes based on avidin-biotin binding on gold surfaces using a quartz crystal microbalance (QCM). Thus, the QCA provides an on line and efficient method of detecting the construction of protein membranes, which has applications in biosensing systems.
The effect of stigmasterol (SS), a phytosterol, in the liposome bilayer on the stability of encapsulated ascorbic acid (ASA) was evaluated. Liposomes, consisting of phosphatidylcholine (PC) and SS, and ASA were encapsulated by the dehydration/rehydration method. The average particle size of the liposome increased with increasing SS content. SS significantly increased the stability of encapsulated ASA. For example, ASA remaining in the liposomes of 100:0, 90:10, and 70:30 (PC:SS, w/w) ratios was 34.12%, 49.88%, and 58.58%, respectively, after storage for 8 days at 4℃, while only 7.66% ASA remained in the buffer under the same conditions. These results indicated that SS in liposomes increased the stability of encapsulated ASA.
LPD vectors are non-viral vehicles for gene delivery comprised of polycation-condensed plasmid DNA and liposomes. Here, we described a novel anionic LPD formulation containing protamine-DNA complexes and pH sensitive liposomes composed of DOPE and cholesteryl hemisuccinate (Chems). Central composite design (CCD) was employed to optimize stable LPD formulation with small particle size. A three factor, five-level CCD design was used for the optimization procedure, with the weight ratio of protamine/DNA ($X_1$), the weight ratio of Chems/DNA ($X_2$) and the molar ratio of Chems/DOPE in the anionic liposomes ($X_3$) as the independent variables. LPD size ($Y_1$) and LPD protection efficiency against nuclease ($Y_2$) were response variables. Zeta potential determination was utilized to define the experimental design region. Based on experimental design, responses for the 15 formulations were obtained. Mathematical equations and response surface plots were used to relate the dependent and independent variables. The mathematical model predicted optimized $X_1-X_3$ levels that achieve the desired particle size and the protection efficiency against nuclease. According to these levels, an optimized LPD formulation was prepared, resulting in a particle size of 185.3 nm and protection efficiency of 80.22%.
Se-Yun Hong;Seong-Min Lee;Pyung-Hwan Kim;Keun-Sik Kim
Biomedical Science Letters
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v.28
no.4
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pp.247-259
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2022
Immunotherapy, which uses an immune mechanism in the body, has received considerable attention for cancer treatment. Suberoylanilide hydroxamic acid (SAHA), also known as a histone deacetylase inhibitor (HDACi), is used as a cancer treatment to induce active immunity by increasing the expression of T cell-induced chemokines. However, this SAHA treatment has the disadvantage of causing PD-L1 overexpression in tumor cells. In this study, we prevented PD-L1 overexpression by blocking the PD-1/PD-L1 pathway using PD-L1 siRNA. We designed two types of liposomes, the neutral lipid 1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-phosphocholin (POPC) for SAHA, and 1,2-dioleoyl-3-trimethylammoniumpropane (DOTAP) for siRNA. To effectively target PD-L1 in cancer cells, we conjugated PD-L1 antibody with liposomes containing SAHA or PD-L1 siRNA. These immunoliposomes were also evaluated for cytotoxicity, gene silencing, and T-cell-induced chemokine expression in human non-small cell lung cancer A549 cells. It was confirmed that the combination of the two immunoliposomes increased the cancer cell suppression efficacy through Jurkat T cell induction more than twice compared to SAHA alone treatment. In conclusion, this combination of immunoliposomes containing a drug and nucleic acid has promising therapeutic potential for non-small-cell lung carcinoma (NSCLC).
Liposomes are one of the most actively studied and promising drug delivery systems for the treatment of various diseases. In this study, an aptamer-conjugated liposome called "aptamosome" was used, in which an anti-PD-L1 aptamer targeting cancer cells was conjugated to the liposome. These aptamosomes showed remarkable cellular uptake and efficient delivery to Lewis lung carcinoma 2 (LL/2) cancer cells. In addition, suberoylanilide hydroxamic acid (SAHA), a histone deacetylase inhibitor (HDACi), was delivered through this aptamer to induce a strong anticancer immunotherapeutic effect. The results of this study showed that when LL/2 cells were treated with SAHA-entrapped aptamosome [SAHA] and liposome [SAHA] and free SAHA, aptamosome [SAHA] improved cell death compared with that of liposomes [SAHA] or free SAHA, and it has demonstrated anticancer efficacy. Moreover, aptamosome [SAHA] induce the secretion of chemokines that promote the migration of activated T cells into tumor tissues. Finally, in vivo experiments showed that aptamosome [SAHA] significantly inhibited the growth rate of LL/2 tumors. Therefore, liposomes combined with an anti-PD-L1 aptamer for efficient SAHA delivery are suggested as an excellent model for drug delivery systems suitable for targeting cancer cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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