The purpose of this study was to establish a high-throughput assay method capable of estimating specific lipase activity at oil-water interface. The method is based on the fact that fluorescence intensity of fluorescein is affected by pH. The pH-dependence might be used to monitor pH change caused by the release of fatty acid through the action of lipase. Assay was performed by incubating a reaction mixture containing oil emulsion, fluorescein and enzyme and by monitoring fluorescence intensity periodically. Fluorescence intensity decreased linearly with a rate proportional to the enzyme amount. Linear relationship was observed between enzyme amount and reaction rate which was calculated from a graph of fluorescence change against time. The assay was possible at different pH conditions in the range of pH 6.0-8.0.
Lipase-producing fungi have been isolated from environments containing lipids. The non-dairy creamer industrial waste has a high amount of lipids so it is a potential source for the isolation of lipase-producing fungi. However, the study of fungi that secrete lipase from this industrial waste has not been reported. The purpose of this study was to obtain lipase-producing filamentous fungi from non-dairy creamer industrial waste. Mineral salt and potato dextrose agar were used as media for the isolation process. The qualitative screening was conducted using phenol red agar medium and the quantitative screening using broth medium containing glucose and olive oil. Isolates producing the highest amounts of lipase were identified with molecular methods. We found that 5 out of 19 isolated filamentous fungi are lipase producers. Further analysis showed that isolate Ms.11 produced the highest amount of lipase compared to others. Based on ITS sequence Ms.11 was identified as Aspergillus aculeatus. The lipase activity in medium containing 1% glucose + 1% olive oil at pH 7.0 and 30℃ after 96 and 120 h of incubation was 5.13 ± 0.30 U/ml and 5.22 ± 0.59 U/ml, respectively. The optimum lipase activity was found at pH 7.0, 30℃ and using methanol or ethanol in the reaction tube. Lipase was more stable at 20-30℃ and maintained 85% of its activity. It was concluded that isolate Ms.11 is a potential source of lipase that catalyzes transesterification reactions. Further studies are required to optimize lipase production to make the strain suitable for industry purposes.
Diglyceride (DG) was prepared by reaction of soybean oil and glycerol in the presence of lipase. The initial rate of DG production was greatly affected by the amount of lipase. However the DG content at equilibrium was hardly affected by the amount of lipase added to the reaction mixture. The initial rate of FFA formation was highly affected by the moisture content between 0.5 and 2.3%, but at higher water content (3.3-5.2%), there was a small increase in the rate. And DG content at equilibrium slowly increased with the increase of the water content in glycerol up to 4.4%. However, there was a sharp decrease in DG content at higher water content (5.2-6.4%) due to higher free fatty acid production. The highest yield of DC was obtained at the temperature ranges of 30-5$0^{\circ}C$. The final yield of DG was not dependent on the glycerol (GL) to triglyceride (TG) molar ratio. However, at the molar ratio of 0.75:1 (GL/TG), the enzyme-catalyzed reaction was highly efficient and utilized all the glycerol. In optimized conditions for glycerolysis a yield of approximately 45% DG was obtained. 66% of total DG was 1,3-DG.
Lipase from Candida rugosa was immobilized on $MgO{\cdot}SiO_2$ hybrid grafted with amine, thiol, cyano, phenyl, epoxy and carbonyl groups. The products were analyzed using Fourier transform infrared spectroscopy, nuclear magnetic resonance, low-temperature $N_2$ sorption and elemental analysis. Additionally, the degree of coverage of the oxide material surface with different functional groups and the number of surface functional groups were estimated. The Bradford method was used to determine the quantity of immobilized enzyme. The largest quantity of enzyme (25-28 mg/g) was immobilized on the hybrid functionalized with amine and carbonyl groups. On the basis of hydrolysis reaction of p-nitrophenyl palmitate to p-nitrophenol, it was determined how the catalytic activity of the obtained biocatalysts is affected by pH, temperature, storage time, and repeated reaction cycles. The best results for catalytic activity were obtained for the lipase immobilized on $MgO{\cdot}SiO_2$ hybrids with amine and carbonyl groups. The biocatalytic system demonstrated activity above 40% in the pH range 4-10 and in the temperature range $30-70^{\circ}C$. Lipase immobilized on the $MgO{\cdot}SiO_2$ systems with amine and epoxy groups retains, respectively, around 80% and 60% of its initial activity after 30 days of storage, and approximately 60-70% after 10 reaction cycles.
A number of bis-2-oxo amide triacylglycerol analogues, a recently reported potent human gastric lipase inhibitor and its new analogues, have been prepared starting from 1,3-dibromo-2-propanol utilizing acyl cyanophosphorane methodology as a key step in a convergent manner. The key coupling reaction has been accomplished at -$78^{\circ}C$ between 1,3-diamino-2-propanol derivative and the labile diketo nitriles, derived from acyl cyanotriphenylphosphoranes upon oxidizing with $O_3$, under mild condition in moderate yields.
Sin, Yeong Min;Chung, Sook Hyun;Lee, Sang Ok;Shin, Hwa Kyoung;Lee, Tae Ho
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.25
no.4
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pp.420-426
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1997
Pseudomonas sp. lipase (lipase AK) catalyzed transesterification reaction between fructose and vinyl laurate in anhydrous pyridine. The product of this process was identified as monoester of fructose and vinyl laurate. The synthetic product has been found to be an excellent emulsifier. The synthetic bioemulsifier showed a good emulsification activity and stability in comparison with other commercial emulsifiers, and good emulsification activity on various emulsifying substrates.
Enzyme production of calcium stearate was attempted by lipase. Lipase having the highed hydrolyzing activity at $60^{\circ}C$, a melting point of substrate (hydrogenated beef tallow),was selected. 60% of hydrogenated beef tallow was converted into calcium stearate in 48hr. This result showed the possible replacement of conventional waste-producing process into enzymetic reaction.
Enzyme-catalyzed polycondensatlon reaction of aliphatic polyesters with several repeating units was studied using the biocatalytic activities of lipases from different sources. Porcine pancreatic lipase (PPL) was found to be best in utilizing bls(2,2,2-trichloroethyl) glutarate and 1,4-butanediol as substrafes. The reaction was also catalyzed to some extent by the lipases from Humicola lanuginos and Psudomonas sp. In the series of short-chain diols(C2-C4), bis(2,2,2-trichloroethyl) glutarate was iransesterified fastest with 1,4-butanediol and for the long-chain diols (PEG-300-PEG-1000), the reaction was fastest with PEG-400. With PEGs, only monoesterification product was obtained. PPL functioned well in relatively hydrophilic organic solvents such as tetrahydrofuran(THF), ether and acetonitrile. The reaction rate was accelerated as the reaction temperature was raised from $20^{\circ}C$ to $60^{\circ}C$ while Mn values of the reaction products were not affected by the reaction temperature. End group analysis by NMR showed that Mn values of the polymer were in the range of 1500-4000 daltons.
Lipase (triacylglycerol lipase, EC 3.1.1.3) is an enzyme capable of hydrolyzing triacylglycerol, to produce fatty acids and glycerol and reverse the reaction of triacylglycerol synthesis from fatty acids and glycerol through transesterification. Applications of lipase are quite widespread in the industrial sector, including in the detergent, paper, dairy, and food industries, as well as for biodiesel synthesis. Lipases by yeasts have attracted industrial attention because of their fast production times and high stability. In a previous study, a lipase-producing yeast isolate was identified as Zygosaccharomyces mellis SG1.2 and had a productivity of 24.56 U/mg of biomass. This productivity value has the potential to be a new source of lipase, besides Yarrowia lypolitica which has been known as a lipase producer with a productivity of 0.758 U/mg. Lipase production by Z. mellis SG1.2 needs to be increased by optimizing the production medium. The aims of this study were to determine the significant component of the medium for lipase production and methods to increase lipase production using the optimum medium. The two methods used for the statistical optimization of production medium were Taguchi and RSM (Response Surface Methodology). The data obtained were analyzed using Minitab 18 and SPSS 23 software. The most significant factors which affected lipase productivity were olive oil and peptones. The optimum medium composition consisted of 1.02% olive oil, 2.19% peptone, 0.05% MgSO4·7H2O, 0.05% KCl, and 0.2% K2HPO4. The optimum medium was able to increase the lipase productivity of Z. mellis SG1.2 to 1.8-fold times the productivity before optimization.
Glycerolysis of triolein by lipase from Chromobacterium viscosum lipase was studied batchwise in AOT-isooctane reversed micelles. The reaction mixture was extracted with chloroform and the content of triolein, 1, 2-diolein, 1, 3-diolein, 1-monoolein, and free fatty acid in the condensed chloroform solution was determined using high performance liquid chromatography (HPLC). The effect of agitation speed on the initial rate of conversion was examined. As the speed of agitation increased up to 700 rpm, the reaction rate increased. However, above 700 rpm, the rate approached maximum and did not increase that much. The glycerolysis activity and the stability of the enzyme were affected by stirring and addition of histidine or copper. Addition of histidine and copper increased the rates of glycerolysis but they are detrimental to the operational stability in reversed micelles.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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