Sixty-one strains representing the main genera of wood-decaying xylariaceous fungi (mainly in Daldinia, Hypoxylon, Kretzschmaria, Rosellinia, Penzigia, and Xylaria) were tested for their ability to produce ligninolytic enzymes. The phenol oxidase activity and fungal growth of the xylariaceous fungi on gallic aicid and tannic acid media showed a variation in their ability to degrade lignocellulose. A number of species showed equal 개 betterligninolytic enzyme activities than Coriolus versicolor, a known basidiomycete wood-degrader. A large variation of the enzyme activity was observed by individual strains as well as a substantial variation between the isolates of the same species. The most frequent ligninolytic enzymes were peroxidase and general oxidase. With 19% of the strains tested, peroxidase showed the strongest ligninolytic enzyme activity, while tyrosinase activity was detected only in 7% of the strains. All strains of Kretzschmaria and Rosellinia tested was positive for laccase. Xylariaceous fungi were able to degrade the macromolecule, lignin, using each specific ligninolytic enzyme in the specfic lignin degradation pathway.
Journal of Korea Technical Association of The Pulp and Paper Industry
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v.31
no.2
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pp.8-14
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1999
A screening has been performed to find hyper-ligninolytic fungi, which degtrade beech and pine lignin extensively in order to broaden the understanding of the ligninolytic enzymes elaborated by various white-rot fungi. One hundred and twenty two ligninolytic strains were selected from decayed woods with a selective medium for screening ligninolytic wood-rotting fungi. Two of them, Phanerochaete sordida YK-624 and YK-472, showed much higher ligninolytic activity and selectivity in beech-wood degradation than typical lignin-degrading fungi, phanerochaete chrysosporium and Coriolus versicolor. They also degraded birch dioxane lignin and residual lignin in unbleached kraft pulp(UKP) much more extensively than P. chrysosporium and C. versicolor. During fungal treatment of beech wood-powder, the fungus strain P. sordida YK-624 showed higher activity of extracellular manganese peroxidase (MnP) in the medium than P. chrysosporium. It also showed MnP activity, which would not be lignin peroxidast during treatment of oxygen-bleached kraft pulp(OKP) and under enzyme-inducing conditin.
To evaluate effects of ligninolytic enzyme type on the mycelial response and ligninolytic enzyme production during interspecific interactions among wood-rotting fungi, 4 fungal strains, Trichophyton rubrum LKY-7, Trichophyton rubrum LSK-27, Pycnoporus cinnabarinus, and Trichoderma viride, were selected. Regarding ligninolytic enzyme production, LKY-7 secreted laccase and manganese peroxidase (MnP), P. cinnabarinus secreted only laccase, and LSK-27 secreted only MnP in glucose-peptone medium, while T. viride did not produce any ligninolytic enzymes. In the co-culture of LKY-7 with P. cinnabarinus, the formation of aerial mycelium was observed and the enhancement of laccase activity owing to interspecific interaction appeared to be very low. In the co-culture of LKY-7 and P. cinnabarinus with LSK-27, a hypha-free clear zone was observed, which resulted in deadlock, and increased laccase or MnP activity was detected at the interaction zone. The interaction responses of LKY-7, P. cinnabarinus, and LSK-27 with T. viride were characterized by the formation of mycelial barrages along the interface. As mycelial barrages were observed at the T. viride territory and no brownish pigment was observed in the mycelial barrages, it is suggested that laccase and MnP are released as part of an offensive response, not as a defensive response. The co-culture of P. cinnabarinus with T. viride lead to the highest enhancement in laccase activity, yielding more than 14-fold increase in laccase activity with respect to the mono-culture of P. cinnabarinus. MnP activities secreted by LKY-7 or LSK-27 was generally low in interspecific interactions.
This experiment was conducted to screen a superior wood-rotting fungi for lignin degradation and ligninolytic enzyme production by evaluation of red colored zone width on potato-dextrose agar medium and oak woodmeal medium complimented guaiacol. Relationship between the red colored zone width on GU-WA medium and klason lignin loss on woodmeal medium showed the positive correlation. Thus, the potential ligninolytic activity of wood rotting fungi which are not elucidated yet may be estimated to some extent by the evaluation of the red colored zone width on GU-WA medium. Of the isolates screened from fruit bodies and decayed woods. LKY-12, LKY-7 and C. versicolor-13 isolates having preferential lignin degradation and laccase activity were selected. These isolates exhibited characteristics of superior wood-rotting fungi as Klason lignin loss ranged from 30% to 35% and ligninolytic enzyme activity of these isolates on glucose-peptone broth was higher than that of other isolates. And then, these isolates were considered to be able to use in biological pulping and bleaching and ligninolytic enzyme production.
Oh, Youn-Lee;Nam, Youn-Keol;Jang, Kab-Yeul;Kong, Won-Sik;Oh, Min ji;Im, Ji-Hoon
Journal of Mushroom
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v.15
no.3
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pp.134-138
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2017
The white button mushroom, Agaricus bisporus, is commercially the fifth most important edible mushroom, accounting for the production of 9,732 tons of mushrooms in Korea in 2015. The genus Agaricus has been known for its potential to degrade lignocellulosic materials. Chemical analyses carried out during the cultivation of A. bisporus indicated that the cellulose, hemicellulose, and lignin fractions were changed preferentially for both vegetative growth and sexual reproduction. We screened A. bisporus strains for effective biodegradation through extracellular enzyme activity using cellulase, xylanase, and ligninolytic enzymes. The enzyme biodegradations were conducted as follows: mycelia of collected strains were incubated in 0.5% CMC-MMP (malt-mops-peptone), 0.5 Xylan-MMP, and 0.5% lignin-MMP media for 14 days. Incubated mycelia were stained with 0.2% trypan blue. Eighteen strains were divided into 8 groups based on different extracellular enzyme activity in MMP media. These strains were then incubated in sterilized compost and compost media for 20 days to identify correlations between mycelial growth in compost media and extracellular enzyme activity. In this study, the coefficient of determination was the highest between mycelial growth in compost media and ligninolytic enzyme activity. It is suggested that comparison with ligninolytic enzyme activity of the tested strains is a simple method of screening for rapid mycelial growth in compost to select good mother strains for the breeding of A. bisporus.
In this study, outstanding white rot fungi for biodegradation of organosolv lignin were selected on the basis of their ligninolytic enzyme system. Fifteen white rot fungi were evaluated for their ability to decolorize Remazol Brilliant Blue R (RBBR) in SSC and MEB medium, respectively. Six white rot fungi (Ceriporiopsis subvermispora, Ceriporia lacerate, Fomitopsis insularis, Phanerochaete chrysosporium, Polyporus brumalis, and Stereum hirsutum) decolorized RBBR rapidly in SSC medium within 3 days. The protein contents as well as the activities of manganese peroxidase (MnP) and laccase for 6 selected fungi were determined on the SSC medium with and without organosolv lignin. Interestingly, extracellular protein concentrations were determined to relative higher for S. hirsutum and P. chrysosporium in the presence of organosolv lignin than others. On the other hands, each fungus showed a different ligninolytic enzyme pattern. Among them, F. insularis resulted the highest ligninolytic enzyme activities on incubation day 6, indicating of 1,545 U/mg of MnP activity and 1,259 U/mg of laccase activity. In conclusion, $STH^*$ and FOI were considered as outstanding fungi for biodegradation of organosolv lignin, because $STH^*$ showed high extracellular protein contents and ligninolytic enzyme activities over all, and ligninolytic enzyme activities of FOI were the highest among white rot fungi used in this study.
A newly isolated white rot fungal strain KU-RNW027 was identified as Trametes polyzona, based on an analysis of its morphological characteristics and phylogenetic data. Aeration and fungal morphology were important factors which drove strain KU-RNW027 to secrete two different ligninolytic enzymes as manganese peroxidase (MnP) and laccase. Highest activities of MnP and laccase were obtained in a continuous shaking culture at 8 and 47 times higher, respectively, than under static conditions. Strain KU-RNW027 existed as pellets and free form mycelial clumps in submerged cultivation with the pellet form producing more enzymes. Fungal biomass increased with increasing amounts of pellet inoculum while pellet diameter decreased. Strain KU-RNW027 formed terminal chlamydospore-like structures in cultures inoculated with 0.05 g/L as optimal pellet inoculum which resulted in highest enzyme production. Enzyme production efficiency of T. polyzona KU-RNW027 depended on fungal pellet morphology as size, porosity, and formation of chlamydospore-like structures.
Several white-rot fungi collected from the mountains of Korea were evaluated for their ability to decolorize azo, polymeric, and reactive dyes. Strains CJ-105, CJ-212 and CJ-315, identified as Trametes sp., Pleurotus sp. and Fomes sp., respectively, showed higher potential for decolorization of those dyes in either solid or liquid media. For Trametes sp. CJ-105, 100ppm of Remazol Brilliant blue R and 500ppm of Acid Red 264 were completely decolorized after 2 days under liquid culture. The dominating ligninolytic enzyme existing in the culture broth was laccase (E.C. 1.10.3.2). Also, Pleurotus sp. CJ-212 and Fomes sp. CJ-315 showed similar patterns in decolorization of Remazol Brilliant Blue R and Acid Red 264. The extent of decolorization of the dyes in liquid culture was found to be proportional to the activities of the ligninolytic of decolorization of the dyes in liquid culture was found to be proportional to the activities of the ligninolytic enzymes produced by each strain. In addition to that Trametes sp. CJ-105 was highly effective in degradation of polycyclic aromatic hydrocarbons and pentachlorophenol by the activity of the ligninolytic enzymes produced. In this study, we found that white-rot fungi, Trametes sp. CJ-105(KFCC 10941), Pleurotus sp. CJ-212(KFCC 10943) and Fomes sp. CJ-315(KFCC 10942), were effective in decolorizing a wide range of structurally different synthetic dyes, as well as some chemical compounds which are known to be hardly degradable.
The hazards associated with the polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) are known to be recalcitrant by their structure, but white rot fungi are capable of degrading recalcitrant organic compounds. Phlebia brevispora KUC9045 isolated from Korea was investigated its efficiency of degradation of four PAHs, such as phenanthrene, anthracne, fluoranthene, and pyrene. And the species secreted extracellular laccase and MnP (Manganese dependent peroxidase) during degradation. P. brevispora KUC9045 demonstrated effective degradation rates of phenanthrene (66.3%), anthracene (67.4%), fluoranthene (61.6%), and pyrene (63.3%), respectively. For enhancement of degradation rates of PAHs by the species, Remazol Brilliant Blue R (RBBR) was preferentially supplemented to induce ligninolytic enzymes. The biodegradation rates of the three PAHs including phenanthrene, fluoranthene, and pyrene were improved as higher concentration of Remazol Brilliant Blue R was supplemented. However, anthracene was degraded with the highest rate among four PAHs after two weeks of the incubation without RBBR addition. According to the previous study, RBBR can be clearly decolorized by P. brevispora KUC9045. Hence, the present study demonstrates simultaneous degradation of dye and PAHs by the white rot fungus. And it is considered that the ligninolytic enzymes are closely related with the degradation. In addition, it indicated that dye waste water might be used to induce ligninolytic enzymes for effective degradation of PAHs.
The objectives of this study were to select superior fungus for lignin degradation and to decolor dyes by selected fungus. Ligninolytic fungi were screened and isolated from decayed woods. Ten ligninolytic fungi were selected by ligninolytic enzyme activity on the PDA media containing rhemazol brilliant blue R, guaiacol and gallic acid. Their lignin degradation abilities were tested on the extractive-free wood powder of Quercus acutissima and Pinus densiflora. As a result, 8J-28 was selected as superior fungus for lignin degradation. Also, decolorization abilities of dyes were examined by shaking and static culture. And congo red, crystal violet, poly R-478, methylene blue used to investigate decolorization abilities of dyes. As a result, 8J-28 showed over 90% in decolorization of congo red, crystal violet, poly R-478.
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