Objective: Leukemia inhibitory factor (LIF) binds to a heterodimeric receptor composed of LIF receptor (LIFR) and glycoprotein 130 (GP130) to transmit signals into the cell. LIF plays an important role in reproduction by regulating immune response, decidualization, and implantation in several species. However, the expression of LIF and LIFR in the endometrium throughout the estrous cycle and pregnancy in pigs is not fully understood. Methods: We analyzed the expression of LIF and LIFR in the endometrium on days 0 (estrus), 3, 6, 9, 12, 15, and 18 of the estrous cycle, and days 12, 15, 30, 60, 90, and 114 of pregnancy, in conceptuses on days 12 and 15, and in chorioallantoic tissues on days 30, 60, 90, and 114 of pregnancy in pigs. We also determined the effects of estrogen and progesterone on the expression of LIF and LIFR in endometrial tissues. Results: The expression of LIF increased in the endometrium during the late diestrus phase of the estrous cycle and during mid- to late- pregnancy, while the expression of LIFR increased during early pregnancy. The expression of LIF was induced by increasing doses of estrogen, whereas the expression of LIFR was induced by increasing doses of progesterone. Conclusion: These results indicate that the expression of LIF and its receptor LIFR in the endometrium is regulated in a stage-specific manner during the estrous cycle and pregnancy, suggesting that LIF and its receptor signaling system may play critical roles in regulating endometrial function in pigs.
Skin-derived precursor cells (SKPs) are multipotent, sphere-forming and embryonic neural crest-related precursor cells that can be isolated from dermis. It is known that the properties of porcine SKPs can be enhanced by leukemia inhibitory factor (LIF) which is an essential factor for the generation of embryonic stem cells in mice. In our present study, to enhance or maintain the properties of murine SKPs, LIF was added to the culture medium. SKPs were treated with 1,000 IU LIF for 72 hours after passage 3. Quantitative real time RT-PCR was then performed to quantify the expression of the pluripotent stem cell specific genes Oct4, Nanog, Klf4 and c-Myc, and the neural crest specific genes Snai2 and Ngfr. The results show that the expression of Oct4 is increased in murine SKPs by LIF treatment whereas the level of Ngfr is decreased under these conditions. Interestingly, LIF treatment reduced Nanog expression which is also important for cell proliferation in adult stem cells and for osteogenic induction in mesenchymal stem cells. These findings implicate LIF in the maintenance of stemness in SKPs through the suppression of lineage differentiation and in part through the control of cell proliferation.
Kim, Eun-Yeong;Choi, Hee-Jung;Chung, Tae-Wook;Jang, Se Bok;Kim, Kibong;Ha, Ki-Tae
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권8호
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pp.1307-1314
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2015
Leukemia inhibitory factor (LIF) is a member of the IL-6 cytokine family, having pleiotropic actions such as maintaining stem cell pluripotency and enabling blastocyst implantation. Because the action of LIF is mediated by a ligand-receptor interaction with the LIF receptor (LIF-R), an antagonist for LIF-R has been developed to inhibit LIF-induced signaling. In this study, we present a novel method for the production and purification of an antagonist to human LIF-R (hLA). His-tagged hLA was expressed in E. coli, and simple purification methods without any endopeptidase cleavage were designed. In addition, we determined the optimal temperature conditions for enhancing the production of soluble hLA. Finally, the bioactivity of His-tagged hLA was examined using STAT3 phosphorylation and receptivity of human endometrial ECC-1 cells. Our strategy provides a rapid and efficient method to produce biologically active recombinant hLA.
Objective: To determine the effects of leukemia inhibitory factor (LIF) on embryonal development in in vitro culture. Methods: This is designed in vitro model using eggs from mouse. The eggs from mouse were assigned 29 for control group, 53 for 20 ng/ml of LIF, 88 for 40 ng/ml of LIF, 68 for 80 ng/ml of LIF respectively for in vitro fertilization. And 26 fertilized eggs at 2 cell stage from mouse also were assigned. The mouse embryos of all groups were cultured in medium supplemented with LIF in different concentrations, whereas the eggs in control group was cultured in medium without supplement of LIF. Results: At 72 hours culture of eggs from in vitro fertilization, there was a slight increas in rate of embryonal development to morula in both LIF-20 and LIF-40 as results of 64.15% and 75% respectively, while 42.65% in inferior rate of LIF-80, compare with 51.72% in control group. But the difference between these each groups were not significant in statistically ($p{\le}0.05$). And after 96 hours culture of eggs, the rates blastocyst formation was significantly higher in both LIF-20 and LIF-40 as 56.6% and 63.63% than those in control and LIF-80 as 44.83% and 35.29% respectively. On culturing eggs from in vivo fertilization, the rates of blastocyst formation was significantly not only higher as 85% and 81.81% respectively in medium supplemented with LIF-40 and LIF-80 than 42.3% in LIF-20 but also embryonal cell viability were remakedly improved at 96 hours after culture. Conclusion: The LIF in low dose is embryotrophic, but LIF in high dose is embryotoxic on eggs from in vitro fertilization. Whereas on culturing eggs from in vivo fertilization, LIF is more beneficial with dose dependent in high concentration.
The effects of human or mouse leukemia inhibitory factor(hLIF or mLIF) were examined as a means of increasing the development of in vitro matured(IVM) and in vitro fertilized (IVF) oocytes into morulae or blastocysts. Cell numbers of blastocysts were also counted using Hochest dye staining. Two-to 8-cell embryos derived from bovine IVM/IVF oocytes were cultured 5 to 6 days in CRI aa with or without mLIF or hLIF. All culture media were contained 3mg/ml bovine serum albumin. In experiment 1, the proportion of embryos developed to morulae and blastocysts in CRI aa containing 5,000U/ml mLIF(37.8%) was slightly higher than those of CRIaa containing 1,000U/ml mLIF(34.6%) and 0 U/ml mLIF(27.4%; P>0.05). In experiment 2, 0, 1,000 and 5,000U/ml of hLIF added to CR1aa media yielded 27.6%, 43.0% and 35.5% morulae and blastocysts, respectively(p>0.05). These were no significant increases in cell number among treatments(p>0.05). These results were indicating that mLIF or hLF can increase the proportion of embryos that develop into morulae and blastocysts without and increase in the cell number.
본 연구는 돼지 난포란으로부터 생산된 수정란의 체외발달에 미치는 아미노산, 우태아혈청 (FBS)과 Leukemia Inhibitry Factor의 영향을 조사하였다. 돼지난포란은 도살된 돼지의 난소로부터 회수하여 39$^{\circ}C$, 5% CO2 배양조건하에서 1$\mu\textrm{g}$/ml FSH-p, 1$\mu\textrm{g}$/ml Estradiol-17$\beta$와 10%FBS가 첨가된 TCM-199 배양액내에서 42시간동안 성숙시켰다. 사출된 정자의 수정능 획득은 45와 90% Percoll density gradient법을 통한 원심분리에 의해 얻었으며, 이들 수정능획득된 정자를 성숙된 난포란이 함유된 배양액에 3$\times$105/ml의 농도로 주입하여 10$\pm$1시간동안 배양함으로서 체외수정을 유도하였다. 수정된 난포란은 ; 1) 10% FBS가 함유된 TCM-199, DMEM, mKRB 또는 CR1aa 배양액, 2) 아미노산 또는 10% FBS가 첨가된 CR1 배양액, 3) STO 세포 또는 mLIF (1,000 unit/ml) 첨가된 CR1aa(10%FBS) 배양액, 4) mLIF (1,000 unit/ml)를 수정 직후 또는 8-세포기 이후에 첨가된 CR1aa(10%FBS)의 네가지 배양조건에서 각각 분리 배양하였다. 그결과 체외수정란의 배반포까지 발달율은 아미노산과 10%FBS가 포함된 CR1 배양액에서 다른 배양액에서보다 양호하였고, 특히 8-세포기 이후에 mouse LIF를 첨가한 CR1aa(10% FBS) 배양액에서는 다른 배양조건보다 현저히 높은 결과를 보였으며, 부화 배반포까지도 배발달을 유도할 수 있었다. 따라서 돼지수정란의 발달에 있어서 배양액내에 아미노산과 FBS 및 mouse LIF의 첨가는 효과가 있으며, 특히 8-세포기 이후에 있어서 mouse LIF의 첨가는 돼지의 수정란을 배반포 이후의 단계에까지 발달시킬 수 있었다.
In order to provide the basis for developing practical mouse embryonic stem cells (mESCs) culture method, how the endogenous level of self-renewal-stimulating factor genes was altered in the mESCs by different extracellular signaling was investigated in this study. For different extracellular signaling, mESCs were cultured in 2 dimension (D), 3D and integrin-stimulating 3D culture system in the presence or absence of leukemia inhibitory factor (LIF) and transcriptional level of $Lif$, $Bmp4$ and $Wnt3a$ was evaluated in the mESCs cultured in each system. The expression of three genes was significantly increased in 3D system relative to 2D system under LIF-containing condition, while only $Wnt3a$ expression was increased by 3D culture under LIF-free condition. Stimulation of integrin signaling in mESCs within 3D system with exogenous LIF significantly up-regulated transcriptional level of $Bmp4$, but did not induce transcriptional regulation of $Lif$ and $Wnt3a$. In the absence of LIF inside 3D system, the expression of $Lif$ and $Bmp4$ was significantly increased by integrin signaling, while it significantly decreased $Wnt3a$ expression. Finally, the signal from exogenous LIF significantly caused increased expression of $Lif$ in 2D system, decreased expression of $Bmp4$ in both 2D and 3D system, and decreased expression of $Wnt3a$ in integrin-stimulating 3D system. From these results, we identified that endogenous expression level of self-renewal-stimulating factor genes in mESCs could be effectively regulated through artificial and proper manipulation of extracellular signaling. Moreover, synthetic 3D niche stimulating endogenous secretion of self-renewal-stimulating factors will be able to help develop growth factor-free maintenance system of mESCs.
Embryo implantation is the crucial step for a successful pregnancy. Diverse factors, including adhesion molecules, growth factors, and cytokines are important for embryo implantation through improving endometrial receptivity. Benzoic acid (BA), a component of various plants, has been shown to have antifungal and antioxidant effects. However, the effect of BA on embryo implantation remains unknown. Here, we showed the contribution of BA for the enhancement of endometrial receptivity through the leukemia inhibitory factor (LIF)-dependent increase of integrin ${\alpha}V$, ${\beta}3$, and ${\beta}5$ expression. Furthermore, in vivo study using a mifepristone-induced implantation failure model showed that BA definitely improves the numbers of implantation embryos. Taken together, we suggest that BA has a novel function for embryo implantation through the up-regulation of LIF-mediated integrins, and may be a candidate for therapeutic medicine to increase the pregnancy rate.
Park, Young-S.;Lee, Jae-E.;Lee, Seo-H.;Lee, Hyeon-Y.
한국약용작물학회지
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제10권4호
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pp.237-242
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2002
It was found that the purified extract from A. gigas Nakai (polysaccharide, M.W., 25 kD) controled differentiating human ES cells. Its optimal supplementation concentration was decided as 0.8 $({\mu}g/ml)$ to efficiently control the differentiation. It also enhanced the cell growth, compared to the control. However, most widely used and commercially available differentiating agent, Leukemia Inhibitory Factor (LIF) negatively affected on the cell growth even though it controls the differentiation of ES cells, down to 40-50 % based on morphological observation and telomerase activity. It was presumed that the extract first affected on cell membrane and resulted in controlling signal system, then amplify gene expression of telomere, which enhanced the telomerase activity up to three times compared to the control. LIF only increased the enzyme activity up to two times. It was confirmed that the extract from A. gigas Nakai could be used for substituting currently used differentiation controlling agent, LIF from animal resources as a cheap plant resource and not affecting the cell growth. It can broaden the application of the plants not only to functional foods and their substitutes but also to fine chemicals and most cutting-edge biopharmaceutical medicine.
연구목적: 포유류의 착상은 배아가 모체의 자궁벽에 매몰되는 현상으로 부착과 침투 과정을 거쳐 진행되며, 이 과정은 스테로이드 호르몬, 성장인자, 세포점착분자, 그리고 cytokine 등의 상호작용으로 이루어진다. 이 시기에 Interleukin-1 (IL-1)과 leukemia inhibitory factor (LIF) 등이 발현되는 것으로 알려져 있다. 본 실험에서는 이들의 발현이 착상과정에 어떠한 역할을 하는지 그 상관관계를 알아보고자 하였다. 재료 및 방법: 착상 전후의 배아와 자궁내막세포에서 LIF 유전자의 발현양상과 $IL-1{\beta}$와 IL-1 receptor antagonist (IL-1ra)를 처리한 LIF 유전자의 발현양상을 역전사중합효소연쇄반응 (RT-PCR)을 통해 비교하였다. 결과: 배아에서의 LIF 유전자 발현은 in vivo와 in vitro 모두에서 상실기와 포배기에 발현되었고, 자궁내막에서는 임신 1일과 4일째에 발현되었는데, 상실기보다는 포배기에, 그리고 임신 1일보다는 착상시기인 4일째의 자궁내막세포에서 발현양이 많은 것으로 나타났다. 자궁내막세포를 배양한 경우 LIF 유전자는 in vivo에서의 발현양상과 동일하게 임신 1일과 4일에 발현되었으며, 배양액에 $IL-1{\beta}$(500pgml)를 처리하였을 경우 LIF 유전자가 초기 임신 (1~5일) 중 발현되는 것으로 나타났다. 2-세포기 배아의 배양시에 $IL-1{\beta}$를 처리한 경우 8-세포기부터 LIF 유전자가 발현되었으며, 또한 IL-1ea(60 ng/ml)를 배양액에 첨가하였을 경우에는 임신1일째 자궁내막에서는 LIF 유전자가 발현되지 않은 반면, 임신 4일째의 자궁내막세포와 상실기, 포배기 배아 모두에서 LIF 유전자 발현이 감소하는 경향을 보였다. 결론: 이러한 결과는 착상 전후 배아와 자궁내막세포에서 IL-1에 의해 LIF 유전자 발현이 조절되며, 그 결과 착상에 영향을 줄 수 있다는 것을 의미한다. 또한 배아와 자궁내막세포에서 IL-1이 LIF 유전자 발현에 영향을 주는 것으로 보아 착상을 위해 IL-1과 LIF의 상호작용이 중요한 요인이라는 것을 확인할 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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