Growing evidence suggests a prominent role for leptin in human cancer progression. The intricate pattern of leptin cross-talk with other associated signaling pathways is a critical area of research that will ultimately contribute to comprehending the role of leptin in cancer progression. This review summarizes a portion of the current understanding of leptin signaling, with a critical focus on its contribution to tumor cell invasion and metastasis. Five topics are addressed in this review: (1) Leptin receptor, (2) Leptin signaling, (3) Leptin and cancer, and (4) Leptin and tumor invasion. Due to the complex cellular effects of leptin, a more precise understanding of leptin signaling pathways must still be elucidated. Leptin is clearly a major factor for stimulating tumor progression through a complex spectrum of interplay and cross-talk among various signaling molecules. An understanding of the role of leptin in invasion and metastasis will provide valuable information for establishing strategies to modulate leptin signaling, which should be a high priority for the development of anti-cancer therapeutics.
Leptin, an adipokine predominantly produced from adipose tissue, is well known to induce tumor growth. However, underlying molecular mechanisms are not established yet. While p53 has long been well recognized as a potent tumor suppressor gene, accumulating evidence has also indicated its potential role in growth and survival of cancer cells depending on experimental environments. In the present study, we examined if p53 signaling is implicated in leptin-induced growth of cancer cells. Herein, we demonstrated that leptin treatment significantly increased p53 protein expression in both hepatic (HepG2) and breast (MCF-7) cancer cells without significant effect on mRNA expression. Enhanced p53 expression by leptin was mediated via modulation of ubiquitination, in particular ubiquitin specific protease 2 (USP2)-dependent manner. Furthermore, gene silencing of p53 by small interfering RNA (siRNA) suppressed leptin-induced growth of hepatic and breast cancer cells, indicating the role of p53 signaling in tumor growth by leptin. In addition, we also showed that knockdown of p53 restored suppression of caspase-3 activity by leptin through modulating Bax expression and prevented leptin-induced cell cycle progression, implying the involvement of p53 signaling in the regulation of both apoptosis and cell cycle progression in cancer cells treated with leptin. Taken together, the results in the present study demonstrated the potential role of p53 signaling in leptin-induced tumor growth.
Leptin, a 16-kDa cytokine, is secreted by adipose tissue in response to the surplus of fat store. Thereby, the brain is informed about the body's energy status. In the hypothalamus, leptin triggers specific neuronal subpopulations (e.g., POMC and NPY neurons) and activates several intracellular signaling events, including the JAK/STAT, MAPK, PI3K, and mTOR pathway, which eventually translates into decreased food intake and increased energy expenditure. Leptin signal is inhibited by a feedback inhibitory pathway mediated by SOCS3. PTP1B involves another inhibitory pathway of leptin. Leptin potently promotes fat mass loss and body weight reduction in lean subjects. However, it is not widely used in the clinical field because of leptin resistance, which is a common feature of obesity characterized by hyperleptinemia and the failure of exogenous leptin administration to provide therapeutic benefit in rodents and humans. The potential mechanisms of leptin resistance include the following: 1) increases in circulating leptin-binding proteins, 2) reduced transport of leptin across the blood-brain barrier, 3) decreased leptin receptor-B (LRB), and/or 4) the provocation of processes that diminish cellular leptin signaling (inflammation, endoplasmic reticulum stress, feedback inhibition, etc.). Thus, interference of the cellular mechanisms that attenuate leptin signaling improves leptin action in cells and animal models, suggesting the potential utility of these processes as points of therapeutic intervention. Various experimental trials and compounds that improve leptin resistance are introduced in this paper.
Kim, Jung-Hyun;Han, Ik-Hwan;Shin, Su-Jin;Park, Sung-Yul;Chung, Hyo-Yeoung;Ryu, Jae-Sook
Parasites, Hosts and Diseases
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v.59
no.3
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pp.235-249
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2021
Leptin is a type of adipokine mainly produced by adipocytes and reported to be overproduced in prostate cancer. However, it is not known whether it stimulates the proliferation of prostate cells. In this study, we investigated whether benign prostatic hyperplasia epithelial cells (BPH-1 cells) infected with Trichomonas vaginalis induced the proliferation of prostate cells via a leptin signaling pathway. To investigate the effect of crosstalk between adipocyte leptin and inflamed epithelial cell in proliferation of prostate cells, adipocytes 3T3-L1 cells were incubated in conditioned medium of BPH-1 cells infected with T. vaginalis (T. vaginalis-conditioned medium, TCM), and then the adipocyte-conditioned medium (ATCM) was identified to cause proliferation of prostate cells. BPH-1 cells incubated with live T. vaginalis released pro-inflammatory cytokines, and conditioned medium of these cells caused migration of adipocytes. When prostate stromal cells and BPH-1 cells were incubated with adipocyte conditioned medium containing leptin, their growth rates increased as did expression of the leptin receptor (known as OBR) and signaling molecules such as JAK2/STAT3, Notch and survivin. Moreover, blocking the OBR reduced this proliferation and the expression of leptin signaling molecules in response to ATCM. In conclusion, our findings show that inflamed BPH-1 cells infected with T. vaginalis induce the proliferation of prostate cells through leptin-OBR signaling. Therefore, it is likely that T. vaginalis contributes to prostate enlargement in BPH via adipocyte leptin released as a result of inflammation of the prostate.
In our previous study, we have shown that berberine has both anti-adipogenic and anti-inflammatory effects on 3T3-L1 adipocytes, and the anti-adipogenic effect is due to the down-regulation of adipogenic enzymes and transcription factors. Here we focused more on anti-inflammatory effect of berberine using real time RT-PCR and found it changes expressions of adipokines. We hypothesized that anti-adipogenicity of berberine mediates anti-inflammtory effect and explored leptin as a candidate mediator of this signaling. We studied this hypothesis by western blot analysis, but our results showed that berberine has no effect on the phosphorylations of STAT-3 and ERK which have important roles on leptin signaling. These results led us to conclude that the anti-inflammatory effect of berberine is not mediated by the inhibition of leptin signal transduction. Moreover, we have found that berberine down-regulates NF-${\kappa}B$ signaling, one of the inflammation-related signaling pathway, through western blot analysis. Taken together, the anti-inflammatory effect of berberine is not mediated by leptin, and berberine induces anti-inflammatory effect independent of leptin signaling.
A primary cilium, a hair-like protrusion of the plasma membrane, is a pivotal organelle for sensing external environmental signals and transducing intracellular signaling. An interesting linkage between cilia and obesity has been revealed by studies of the human genetic ciliopathies Bardet-Biedl syndrome and Alström syndrome, in which obesity is a principal manifestation. Mouse models of cell type-specific cilia dysgenesis have subsequently demonstrated that ciliary defects restricted to specific hypothalamic neurons are sufficient to induce obesity and hyperphagia. A potential mechanism underlying hypothalamic neuron cilia-related obesity is impaired ciliary localization of G protein-coupled receptors involved in the regulation of appetite and energy metabolism. A well-studied example of this is melanocortin 4 receptor (MC4R), mutations in which are the most common cause of human monogenic obesity. In the paraventricular hypothalamus neurons, a blockade of ciliary trafficking of MC4R as well as its downstream ciliary signaling leads to hyperphagia and weight gain. Another potential mechanism is reduced leptin signaling in hypothalamic neurons with defective cilia. Leptin receptors traffic to the periciliary area upon leptin stimulation. Moreover, defects in cilia formation hamper leptin signaling and actions in both developing and differentiated hypothalamic neurons. The list of obesity-linked ciliary proteins is expending and this supports a tight association between cilia and obesity. This article provides a brief review on the mechanism of how ciliary defects in hypothalamic neurons facilitate obesity.
A close association between the obesity hormone leptin and breast cancer progression has been suggested. The present study investigated the molecular mechanism for enhanced leptin expression in breast cancer cells and its functional significance in breast cancer aggressiveness. We examined whether leptin expression level is affected by the oncoprotein human epidermal growth factor receptor2 (HER2), which is overexpressed in ~30% of breast tumors. Here, we report, for the first time, that HER2 induces transcriptional activation of leptin in MCF10A human breast epithelial cells. We also showed that p38 mitogen-activated protein kinase signaling was involved in leptin expression induced by HER2. We showed a crucial role of leptin in the invasiveness of HER2-MCF10A cells using an siRNA molecule targeting leptin. Taken together, the results indicate a molecular link between HER2 and leptin, providing supporting evidence that leptin represents a target for breast cancer therapy.
Low-grade pro-inflammatory state and leptin resistance are important underlying mechanisms that contribute to obesity-associated hypertension. We tested the hypothesis that Astragaloside IV (As IV), known to counteract obesity and hypertension, could prevent obesity-associated hypertension by inhibiting pro-inflammatory reaction and leptin resistance. High-fat diet (HFD) induced obese rats were randomly assigned to three groups: the HFD control group (HF con group), As IV group, and the As IV + ${\alpha}$-bungaratoxin (${\alpha}-BGT$) group (As IV+${\alpha}-BGT$ group). As IV ($20mg{\cdot}Kg^{-1}{\cdot}d^{-1}$) was administrated to rats for 6 weeks via daily oral gavage. Body weight and blood pressure were continuously measured, and NE levels in the plasma and renal cortex was evaluated to reflect the sympathetic activity. The expressions of leptin receptor (LepRb) mRNA, phosphorylated signal transducer and activator of transcription-3 (p-STAT3), phosphorylated phosphatidylinositol 3-kinase (p-PI3K), suppressor of cytokine signaling 3 (SOCS3) mRNA, and protein-tyrosine phosphatase 1B (PTP1B) mRNA, pro-opiomelanocortin (POMC) mRNA and neuropeptide Y (NPY) mRNA were measured by Western blot or qRT-PCR to evaluate the hypothalamic leptin sensitivity. Additionally, we measured the protein or mRNA levels of ${\alpha}7nAChR$, inhibitor of nuclear factor ${\kappa}B$ kinase subunit ${\beta}/nuclear$ factor ${\kappa}B$ ($IKK{\beta}/NF-KB$) and pro-inflammatory cytokines ($IL-1{\beta}$ and $TNF-{\alpha}$) in hypothalamus and adipose tissue to reflect the anti-inflammatory effects of As IV through upregulating expression of ${\alpha}7nAChR$. We found that As IV prevented body weight gain and adipose accumulation, and also improved metabolic disorders in HFD rats. Furthermore, As IV decreased BP and HR, as well as NE levels in blood and renal tissue. In the hypothalamus, As IV alleviated leptin resistance as evidenced by the increased p-STAT3, LepRb mRNA and POMC mRNA, and decreased p-PI3K, SOCS3 mRNA, and PTP1B mRNA. The effects of As IV on leptin sensitivity were related in part to the up-regulated ${\alpha}7nAchR$ and suppressed $IKK{\beta}/NF-KB$ signaling and pro-inflammatory cytokines in the hypothalamus and adipose tissue, since co-administration of ${\alpha}7nAChR$ selective antagonist ${\alpha}-BGT$ could weaken the improved effect of As IV on central leptin resistance. Our study suggested that As IV could efficiently prevent obesityassociated hypertension through inhibiting inflammatory reaction and improving leptin resistance; furthermore, these effects of As IV was partly related to the increased ${\alpha}7nAchR$ expression.
Perception of sweet compounds is important for animals to detect external carbohydrate source of calories and plays a crucial role in feeding behavior of animals. Recent progress in molecular genetic studies provides evidence for a candidate receptor (heterodimers with taste receptor type 1 member 2 and 3: T1R2/T1R3), and major downstream transduction molecules required for sweet taste signaling. Several studies demonstrated that the sweet taste signal can be modulated by a satiety hormone, leptin, through its receptors expressed in a subset of sweet-sensitive taste cells. Increase of internal energy storage in the adipose tissue leads to increase in the plasma leptin level which can reduce activities of sweet-sensitive cells. In human, thus, diurnal variation of plasma leptin level parallels variation of taste recognition thresholds for sweet compounds. This leptin modulation of sweet taste sensitivity may influence individuals' preference, ingestive behavior, and absorption of nutrients, thereby plays important roles in regulation of energy homeostasis.
Objective: To verify the expression of leptin receptor (OB-R) in oocytes and preimplantation embryos, the involvement of mitogen activated protein kinase (MAPK or Erk1/2) in the leptin signaling, and effect of leptin on the oocyte maturation in mice. Method: RT-PCR analysis of OB-R was conducted in germinal vesicle (GV)-intact and MII stage oocytes, and 1, 2, 8-cell embryos and blastocysts. Germinal vesicle breakdown (GVB), polar body extrusion, monitored in the presence or absence of leptin ($1{\mu}M$). Following the leptin treatment, temporal changes in MAPK activity were verified by immunoprecipitation and in vitro kinase assay in MII oocytes. Results: The expression of OB-R mRNA was found in GV and MII oocyte but not in the embryos. MAPK activity of the MII oocytes was significantly increased by brief incubation in the HTF supplemented with leptin ($1{\mu}M$). Priming of PD098059, a MEK inhibitor to leptin treatment attenuated the activation of MAPK by leptin in MII oocytes. Following 24 hrs of culture of the GV oocytes, leptin significant increased the GVB and 1 st polar body extrusion. Conclusion: This result suggested that functional interaction between leptin and OB-R resulted in potentiation of MAPK (Erk1/2) activity in MII oocytes through MEK activation and that leptin might be a local regulator of meiotic maturation of the mouse oocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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