Objective: In order to improve fermentation quality of natural grasses, their silage preparation and fermentation quality in meadow steppe (MS) and typical steppe (TS) were studied. Methods: The small-scale silages and round bale silages of mixed natural grasses in both steppes were prepared using the commercial lactic acid bacteria (LAB) inoculants Chikuso-1 (CH, Lactobacillus plantarum) and cellulase enzyme (AC, Acremonium cellulase) as additives. Results: MS and TS contained 33 and 9 species of natural grasses, respectively. Stipa baicalensis in MS and Stipa grandi in TS were the dominant grasses with the highest dry matter (DM) yield. The crude protein (CP), neutral detergent fiber and water-soluble carbohydrate of the mixed natural grasses in both steppes were 8.02% to 9.03%, 66.75% to 69.47%, and 2.02% to 2.20% on a DM basis, respectively. All silages treated with LAB and cellulase were well preserved with lower pH, butyric acid and ammonia-N content, and higher lactic acid and CP content than those of control in four kinds of silages. Compared with CH- or AC-treated silages, the CH+ AC-treated silages had higher lactic acid content. Conclusion: The results confirmed that combination with LAB and cellulase may result in beneficial effects by improving the natural grass silage fermentation in both grasslands.
Lactic acid bacteria were isolated from piglets and chicken and characterized. Lactic acid bacteria showing resistance to low pH and bile, adhesion to intestinal epithelium cells, and the inhibition of Escherichia coli and Salmonella spp. were identified as Lactobacillus acidophilus. L. acidophilus PF01 survived for 2 h in MRS broth adjusted to pH 2. L. acidophilus CF07 was less resistant than L. acidophilus PF01 to pH 2, but survived at pH 2.5 for 2 h. Both of isolates were able to grow in MRS broth containing 0.3% (w/v) bile, with L. acidophilus CF07 being more tolerant to bile than L. acidophilus PF01. L. acidophilus PF01 and CF07 adhered specifically to the duodenal and jejunal epithelium cells of piglet, and the cecal and duodenal epithelium cells of chicken, respectively. Both of isolates did not adhere to the epithelium cells of the various animal intestines from which they were isolated. When L. acidophilus was cultured with E. coli and Salmonella spp. in MRS broth, MRS broth containing 2% skim milk powder or modified tryptic soy broth at $37^{\circ}C$, L. acidophilus PF01 and CF07 inhibited the growths of E. coli K88 and K99, and S. enteritidis and S. typhimurium, respectively. Both of isolates were found to possess the essential characteristics of probiotic lactic acid bacteria for piglet and chicken.
The aim of this study was to investigate the efficacy of enhanced physiological activities in cultures isolated from Korean fermented watery Kimchi, Dongchimi, of single lactic acid bacteria (LAB), and when these three are mixed LAB as probiotics. Using the BIOLOG system and 16S rRNA sequencing, the isolates were characterized, and identified and assigned to Leuconostoc mesenteroides DK-3, Leuconostoc dextranicum DK-6, and Lactobacillus curvatus DK-13, respectively. Growth rate and pH changes, production of organic acids as metabolites, and physiological activities of the single and mixed LAB cultures, were monitored and compared. In mixed LAB cultures after 72 h of incubation, the maximum concentrations of lactic acid and acetic acid were approximately 340.5 mM and 191.9 mM, respectively, and pH changed from 7.00 to 3.62. Mixed LAB cultures were able to eliminate 96.3% of nitrite. Activities of antioxidant and ${\beta}$-galactosidase were 60.3% and 16.8 units/mg, respectively. Significant antibacterial activity of the concentrated supernatants was demonstrated against several food-poisoning bacteria. Physiological activities obtained from the mixed LAB cultures have been shown to be considerably higher than those of single LAB cultures. In conclusion, these studies demonstrate that compared to the single cultures, all physiological activities in mixed LAB cultures are significantly enhanced.
This study was performed in an effort to create a functional and stable yogurt product containing slander glasswort extract. The extract was added to milk at concentrations of 0.25, 0.5, and 1.0% (w/v), which was then fermented with lactic acid bacteria (Lactobacillus bulgaricus and Streptococcus thermophilus) at $42^{\circ}C$ for 6 hr. During a period of 15 days of storage, the quality characteristics of the yogurt samples were evaluated in terms of acid production (pH and titratable acidity), levels of lactic acid bacteria, color values, viscosity, and sensory characteristics. There were no significant differences in pH during the storage period; however, the control yogurt presented the highest pH value. The 1.0% slander glasswort yogurt had the highest titratable acidity; but again, there were no significant differences among the yogurts. The 1.0% slander glasswort yogurt also had the highest level of lactic acid bacteria, and both the control and slander glasswort-containing yogurts had increasing levels of lactic acid bacteria over the storage period. The 1.0% slander glasswort yogurt had the lowest L-value and highest a- and b-values. And the slander glasswort yogurts presented lower viscosity values than the control. In sensory evaluations, the 0.25% slander glasswort yogurt scored higher than the other groups for color, flavor, viscosity, sweetness, sourness, and overall palatability. The final sensory results indicated that the 0.25% slander glasswort yogurt was superior.
Objective: The objective of this study was to investigate how cellulase or/and lactic acid bacteria (LAB) affected the fermentation characteristic and microbial community in wet brewer's grains (WBG) and corn stover (CS) mixed silage. Methods: The WBG was mixed thoroughly with the CS at 7:3 (w/w). Four treatment groups were studied: i) CON, no additives; ii) CEL, added cellulase (120 U/g fresh matter [FM]), iii) LAB, added LAB (2×106 cfu/g FM), and iv) CLA, added cellulase (120 U/g FM) and LAB (2×106 cfu/g FM). Results: All additive-treated groups showed higher fermentation quality over the 30 d ensiling period. As these groups exhibited higher (p<0.05) LAB counts and lactic acid (LA) content, along with lower pH value and ammonia-nitrogen (NH3-N) content than the control. Specifically, cellulase-treated groups (CEL and CLA) showed lower (p<0.05) neutral detergent fiber and acid detergent fiber contents than other groups. All additives increased the abundance of beneficial bacteria (Firmicutes, Lactiplantibacillus, and Limosilactobacillus) while they decreased abundance of Proteobacteria and microbial diversity as well. Conclusion: The combined application of cellulase and LAB could effectively improve the fermentation quality and microbial community of the WBG and CS mixed silage.
This experiment was carried out to investigate the effect of loquat (Eriobotrya japonica Lindley) extract on the acid production and growth of lactic culture in reconstituted skim milk. The supplementation level of loquat extract to reconstituted skim milk was 10%, 15% and 20%. Reconstitued skim milk containing loquat extract was fermented by single of mixed culture of Streptococcus thermophilus, Lactobacillus acidophilus and Lactobacillus casei. General compositions of loquat extract, changes of viable cell count, pH and titratable acidity during fermentation were determined. Chemical compositions of loquat extract were 91.5% moisture, 0.2% crude ash, 8.6$^{\circ}$ Brix soluble sugar, 0.34% total acid, and 4.11 in pH. Supplementation of loquat extract stimulated acid roduction and growth of lactic acid bacteria. Among supplementation levels, a group that was fermented by a single culture of Str. thermophilus with 10% loquat extract was shown the highest viable cell count (2.10${\times}$10$\^$9/ CFU/mL) at 12 hours after inoculation. When loquat extract was added to reconstituted skim milk at the level of 10%, all mixed cultures of lactic acid bacteria showed higher acid production and the number of viable cell count than 3 kinds of single cultures. Especially, the growth of mixed culture of Str. thermophilus and Lac. acidophilus was promoted by the addition of 10% loquat extract. Therefore, it was suggested to manufacture the yoghurt with the addition of 10% loquat extract and the inoculation of mixed culture of Str. thermophilus and Lac. acidophilus for on the stimulation of growth of the lactic culture.
Lactic acid bacteria were isolated from silage, which produce high level of hydrogen peroxide in cell culture supernatant. The 16S rDNA sequences of the isolate matched perfectly with that of Lactobacillus fermentum (99.9%), examined by a 16S rDNA gene sequence analysis and similarity search using the GenBank database, thus named L. fermentum CS12-1. L. fermentum CS12-1 showed resistance to low pH and bile acid. The production of hydrogen peroxide by L. fermentum CS12-1 was confirmed by catalase treatment and high-performance liquid chromatography. L. fermentum CS12-1 accumulated hydrogen peroxide in culture broth as cells grew, and the highest concentration of hydrogen peroxide reached 3.5 mM at the late stationary growth phase. The cell-free supernatant of L. fermentum CS12-1 both before and after neutralization inhibited the growth of enterotoxigenic Escherichia coli K88 that causes diarrhea in piglets.
Purpose of the present study was to investigate the factors affecting the production of antibacterial substances and histamine in rennet curd prepared by inoculation of histamine-producing lactic acid bacteria (LAB) and probiotic LAB. Probiotic Lactobacillus sakei PIL52 and Lactobacillus plantarum FIL20 produced strong antimicrobial agents against histamine-producing bacteria Lactobacillus brevis LAS129, Enterococcus faecium SBP12, and Enterococcus faecalis SBP58. The lactic acid and crude bacteriocin produced from the probiotic LAB inhibited histamine-producing bacteria in a concentration-dependent manner. As the number of probiotic LAB inoculated for the production of rennet curd increased, the antibacterial activity against histamine-producing bacteria was elevated due to the increased amount of lactic acid and crude bacteriocin in the sample. The growth of probiotic LAB as well as histamine-producing bacteria was inhibited by addition of 10% NaCl, thus the antibacterial substances and histamine contents in rennet curd were significantly lower than those of the control (P < 0.05). Meanwhile, the histamine content was not significantly increased when the rennet curd prepared by mixing probiotic LAB and histamine-producing bacteria was stored at $25^{\circ}C$ for 5 days. However, the amount of histamine detected in the rennet curd was significantly (P < 0.05) increased because the antibacterial activity of the bacteriocin produced by the probiotic LAB was decreased at $20^{\circ}C$ for 20 days.
To evaluate the effects of lactic acid bacteria (LAB) on Peyer's patch cells, mice were treated with a high dose of kanamycin to disturb the gut microbial environment. The overarching goal was to explore the potential of LAB for use as a dietary probiotic that buffers the negative consequences of antibiotic treatment. In vitro, LAB stimulated the production of immunoglobulin A (IgA) from isolated Peyer's patch cells. Inflammation-related genes (TNF-α, IL-1β, and IL-8) were up-regulated in Caco-2 cells stimulated with lipopolysaccharide (LPS), while tight-junction-related genes (ZO-1 and occludin) were down-regulated; the effects of LPS on inflammatory gene and tight-junction gene expression were reversed by treatment with LAB. Mice treated with a high dose of kanamycin showed increased serum IgE levels and decreases in serum IgA and fecal IgA levels; the number of Peyer's patch cells decreased with kanamycin treatment. However, subsequent LAB treatment was effective in reducing the serum IgE level and recovering the serum IgA and fecal IgA levels, as well as the number of Peyer's patch cells. In addition, ZO-1 and occludin mRNA levels were up-regulated in the ileum tissues of mice receiving LAB treatment. Lactic acid bacteria can enhance the intestinal immune system by improving the integrity of the intestinal barrier and increasing the production of IgA in Peyer's patches. Lactic acid bacteria should be considered a potential probiotic candidate for improving intestinal immunity, particularly in mitigating the negative consequences of antibiotic use.
Lactobacillus brevis BK11 obtained from Baikkimchi was selected to study the effects of culture medium, initial pH, atmosphere composition, incubation temperature and time, and prebiotics on growth and production of antimicrobial substances. Growth and antimicrobial substances production of L. brevis BK11 were significantly higher in MRS broth than in BHI or M17 broth. The production of cell mass, lactic acid, and bacteriocin by BK11 strain was at maximum in MRS broth adjusted to pH 6.0. Aerobic and microaerobic conditions were favored cell growth and antimicrobial substances production than anaerobic condition. Biomass and lactic acid production and antimicrobial substances activity of BK 11 were significantly better at 30 and $37^{\circ}C$ than at $25^{\circ}C$. Growth of the strain BK11 entered the stationary growth stage at 24 h after inoculation, and decreased after 36 h. Antimicrobial activities of cell-free culture supernatant and bacteriocin solution were highest when cultured in MRS broth with an initial pH 6.0 for 24-30 h at $37^{\circ}C$. In addition, the highest cell number and lactic acid and bacteriocin production were recorded in the presence of 1 and 2% (w/v) fructooligosaccharide (FOS), however, inulin and raffinose did not affect biological and physicochemical characteristics and antimicrobial activities of L. brevis BK11 cultures. According to these results, production of antimicrobial substances by L. brevis KB11 was closely associated with cell density. Under optimal conditions for antimicrobial substances production, L. brevis BK11 effectively inhibited the growth of Helicobacter pylori ATCC 43504.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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