DNA microarray analysis of gene expression in toxicogenomics typically requires relatively large amounts of total RNA. This limits the use of DNA microarray when the sample available is small. To confront this limitation, different methods of linear RNA amplification that generate antisense RNA (aRNA) have been optimized for microarray use. The target preparation strategy using amplified RNA in DNA microarray protocol can be divided into direct-incorporation labeling which resulted in cDNA targets (Cy-dye labeled cDNA from aRNA) and indirect-labeling which resulted in cRNA targets (i.e. Cy-dye labeled aRNA), respectively. However, despite the common use of amplified targets (cDNA or cRNA) from aRNAs, no systemic assessment for the use of amplified targets and bias in terms of hybridization performance has been reported. In this investigation, we have compared the hybridization performance of cRNA targets with cDNA targets from aRNA on a 10 K cDNA microarrays. Under optimized hybridization conditions, we found that 43% of outliers from cDNA technique and 86% from the outlier genes were reproducibly detected by both targets hybridization onto cDNA microarray. This suggests that the cRNA labeling method may have a reduced capacity for detecting the differential gene expression when compared to the cDNA target preparation. However, further validation of this discordant result should be pursued to determine which techniques possesses better accuracy in identifying truly differential genes.
Fluorescent nucleic acids were prepared utilizing the polymerase extension (PEX) reaction to incorporate fluorescent molecules. 2'-Deoxyuridine triphosphate (dUTP) derivatives possessing pyrene molecules as fluorophores were synthesized using the aqueous-phase Sonogashira coupling between 5-Iodo-dUTP and acetylene-linked pyrene molecules. The incorporation of the pyrene (Py)-labeled deoxyuridine triphosphates (PyU) into DNA by polymerase was evaluated by polyacrylamide gel electrophoresis, demonstrating that the PyU can work as a good substrate for the PEX reaction. The fluorescent properties of the functionalized DNA prepared by the PEX reaction were characterized by steady-state fluorescence measurements. The Py-conjugated DNA showed typical emission spectra of the pyrene, and the DNA with two pyrene molecules connected to each other by a diethylene glycol linker exhibited a broadened emission attributed to the electronic interaction between the Py molecules.
End-Labeled Free-Solution Electrophoresis (ELFSE) is a new technique that is a promising bioconjugate method for DNA sequencing (or separation) and genotyping by both capillary and microfluidic device electrophoresis. Because ELFSE enables high-resolution electrophoretic separation in aqueous buffer alone (i.e., without a polymer matrix), it eliminates the need to load viscous polymer networks into electrophoresis microchannels. To achieve microchannel DNA separations with high performance, ELFSE requires monodisperse perturbing entities (i.e., drag-tags), which create a large amount of frictional drag when pulled behind DNA during free-solution electrophoresis, and which have other properties suitable for microchannel electrophoresis. In this article, the theoretical concepts of ELFSE and the required characteristics of the drag-tag molecules for the ultimate performance of ELFSE are reviewed. Additionally, the merits and limitations of current drag-tags are also discussed in the context of recent experimental data of ELFSE separation (or sequencing).
번역개시 및 인산화의 조절에 관여하는 RNA와 단백질의 결합 및 인식기작을 연구하기 위해서[$\alpha$^{-32}$P] UMP-labeled HIV Rev-responsive element(RRE) RNA를 이용한 affinity screening에 이해서 Hela ZA-PII cDNA library로부터 이중선RNA결합단백질의 cDNA (RBFII)를 분리하였다. RBFII의 cDNA에 대한 염기서열을 결정하였으며 기존에 연구된 바 있는 RBFII(RBF 또는 TRBP로 보고되었으며 본 연구에서는 RBFII와 구분하기 위해 RBFI으로 명명)과 대부분의 경우 공통적인 ORF를 지니는 것으로 나타났다. 그러나 5’말단에서는 공통적인 ORF 가 RBFI의 경우 21개의 아미노산을 의미하는 63 nt가 Lac-Z의 N-말단에 연결된데 비해서 특이한 46개 아미노기를 의미하는 138nt가 존재함이 밝혀졌다. 5’-말단에 처음 나타나는 ATG 및 부근의 염기서열을 분석해 볼 때 양 cDNA는 5’말단이 완전하지 않은 것으로 사료된다.
The objective of this study was to develop digoxigenin (DIG)-labeled in situ hybridization (ISH) test for diagnosis of Aujeszky's Disease(AD) in infected organs. Specific DNA with well conserved gene sequences encoding gp50 antigen in AD virus (ADV) was obtained by Polymerase Chain Reaction (PCR) method. A pair of oligonucleotide primers used in PCR allowed amplification of a 217 bp sequence from the gp50 ADV gene. The DNA was then labeled with DIG by primer labeling method for use as probe in ISH test to detect ADV nucleic acids in various tissue. Positive hybridization was demonstrated by dark pigmentation in nuclei and cytoplasm of ADV infected cells particularly in brain tonsillar crypt epithelium and pulmonary alveolar cells. This result suggests that ISH is a valuable sensitive and rapid diagnostic test for AD.
Drag-tag으로 사용될 반복단위 단백질을 생물학적인 방법을 통해 생산함으로써 수용액 내에서 DNA 분리가 가능함을 확인하였다. 서로 다른 크기를 갖는 두 종류의 반복단위 단백질을 디자인하였고, 이를 발현시킨 뒤 정제하였다. 정제된 반복단위 단백질에 형광 dye를 포함하고 있는 100 base의 DNA를 연결하였고, 이 연결 물질을 모세관 내부가 수용액으로 충진된 microchip 상에서 전기영동 하였다. 그 결과 생물학적으로 생산된 반복단위 단백질이 SNP 분석과 같은 빠르고 효율적인 DNA 분석에 적합한 후보물질로 사용될 수 있음을 확인하였다.
Kim, Shin-Ae;Kim, Sung-June;Lee, Sang-Hun;Park, Tai-Hyun;Byun, Kyung-Min;Kim, Sung-Guk;Shuler, Michael L.
Journal of the Optical Society of Korea
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제13권3호
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pp.392-397
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2009
We designed a wavelength interrogation-based surface plasmon resonance (SPR) biosensor to detect avian influenza DNA (AI-DNA). Hybridization reactions between target AI-DNA probes and capture probes immobilized on a gold surface were monitored quantitatively by measuring the resonance wavelength in the visible waveband. The experimental results were consistent with numerical calculations. Although the SPR detection technique does not require the DNA to be labeled, we also evaluated fluorescently-labeled targets to verify the hybridization behavior of the AI-DNA. Changes in resonance were found to be linearly proportional to the amount of bound analyte. A wavelength interrogation-type SPR biosensor can be used for rapid measurement and high-throughput detection of highly pathogenic AI viruses.
T4 Endonuclease V (Mw 16,000) acts as a repair enzyme for UV induced pyrimidine dimers in DNA. Many researchers have studied the biochemical characteristics of the enzyme. However the precise action mechanism of T4 endo V has not fully elucidated yet. In our laboratory NMR spectroscopy technique is being used for the structural study of T4 endo V. Because of its low temperature stability and high content of ${\alpha}$-helix, the conventional $^1$H NMR technique was inapplicable. Therefore we utilized stable isotope labeling technique and so far prepared about 10 amino acid specific labeled proteins. The HSQC spectra of amino acid specific labeled proteins will help us to interpret the triple resonance 3D, 4D data which are under processing, We also studied the behaviors of specific amino acid residues whose roles might be critical. When the enzyme labeled by $\^$15/N-Thr was mixed with the substrate oligonucleotide (semispecific -TT- sequence), one crosspeak in its HSQC spectrum was completely desappeared, which means that one of seven Thr residues is in the binding site of the enzyme with DNA, This result is well consistent with previous report that implicated the Thr 2 residue in the activity of the enzyme. Similar studies were carried on the behaviors of Arg and Tyr residues.
To establish a method to evaluate the quality of the printed microarray and DNA fragments' immobilization. The target gene fragments that were made with the restriction display PCR (RD-PCR) technique were printed on a superamine modified glass slide, then immobilized with UV cross-linking and heat. This chip was hybridized with universal primers that were labeled with cy3-dUTP, as well as cDNA that was labeled with cy3-dCTP, as the conventional protocol. Most of the target gene fragments on the chip showed positive signals, but the negative control showed no signal, and vice versa. We established a method that enables an effective evaluation of the quality of the microarrays.
To make the genomic DNA probe of Theileria sergenti, the merozoites were purified from bovine erythrocytes. The infected erythrocytes were lysed by Aeromonas hydrophila(Ah-1) hemolysin, and the parasites were isolated by ultracentrifugation on a Percoll discontinuous density gradient. For construction of a T sergenti genomic DNA library, T sergenti DNA was digested with Pstl and the fragments were ligated into the PstI site of pUC19 before transformation of Escherichia coli JM83. Out of thousands of transformants obtained by transformation of E coli JM83 with the genomic library, three plasmids were chosen. The sizes of the inserted DNAs were 2.9kb(2.4kb and 0.5kb) in pKTS1, 4.3kb in pKTS2 and 1.5kb in pKTS3, respectively. The DNA fragments used as probe KTS1(2.4kb), KTS2(4.3kb) and KTS3(1.5kb) were labeled digoxigenin-11-dUTP for the Southern hybridization. In Southern hybridization, all of the probes(KTS1, KTS2 and KTS3) reacted specifically to T sergenti DNA, but not to bovine leucocyte DNA. In order to find out the sensitivities of the digoxigenin-11-dUTP-labeled KTS1 and KTS3 as the probes, purified merozoite DNA and bovine DNA (control) were checked by dot blot hybridization with the probes. Both of the probes, KTS1 and KTS3, detected as minimum amount of 975pg of the T sergenti DNA, but not bovine DNA even to 500ng.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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