Using phytoplasma universal primer pair Pl and P7, a fragment of about 1.8 kb nucleotide sequences of 16S rRNA gene and 16S-23S rRNA intergenic spacer region, and a portion of 23S rRNA gene of jujube witches'broom (JWB) and mulberry dwarf(MD) phytoplasmas were determined. The nucleotide sequences of JWB and MD were 1,850 bp and 1,831 bp long, respectively. The JWB phytoplasma sequence was aligned with the homologous sequence of MD phytoplasma. Twenty-eight base insertions and nine base deletions were found in the JWB phytoplasma sequence compared with that of MD phytoplasma. The similarity of the aligned sequences of JWB and MD was 84.8%. The near-complete 16S rRNA gene DNA sequences of JWB and MD were 1,529 bp and 1,530 bp in length, respectively, and revealed 89.0% homology. The 16S-23S rRNA intergenic spacer region DNA sequences were 263 bp and 243 bp in lengths respectively, while homology was only 70% and the conserved tRNA-lle gene of JWB and MD was located into the intergenic space region between 16S-23S rRNA gene. The nucleotide sequences were 77 bp long in both JWB and MD, and showed 97.4% sequence homology. Based on the phylogenetic analysis of the two phytoplasmas, the JWB phytoplasma belongs to the Elm yellow phytoplasma group (16S rV), whereas, the MD phytoplasma belongs to the Aster yellow group (16S rI).
Periwinkle seedlings (Cantharanthus roseus) were inoculated with jujube witches'- broom (JWB) phytoplasma via grafting to analyze the migration of JWB phytoplasmas within the host plant. The phytoplasmas were detected using nested polymerase chain reaction (PCR) and fluorescence microscopy. Fluorescence microscopy was a simple and easy method of detecting phytoplasmas; however, it was not sufficiently sensitive to detect very low phytoplasma concentrations. Therefore, the migration of JWB phytoplasma was investigated through PCR. The first migration of JWB phytoplasma from an infected tissue to healthy tissues occurred late. After grafting, the phytoplasmas moved from the inoculated twig (or scion) to the main stem, which took 28 days. Afterward, the phytoplasma migrated faster and took less than 4 days to spread into the roots from the main stem. All twigs were then successively colonized by the JWB phytoplasmas from the bottom to the top. JWB phytoplasma was detected via nested PCR in all parts of the periwinkle seedling 82 days after inoculation. Based on these results, the inoculated JWB phytoplasma appeared to migrate downward to the roots along the main stem during the early stages, and then continued to move upward, colonizing twigs along the way until they reached the apex.
Sangsub Han;Lee, Sanghun;Mengjun Liu;Byeongjin Cha
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.136.2-137
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2003
In order to diagnose and differentiate jujube witches' broom (JWB) phytoplasma rapidly, oligonucleotide primer pair, 16Sr(V) F/R, for polymerase chain reactions (PCRs) was designed on the basis of 165 rRNA sequences of JWB phytoplasma. The PCR employing phytoplasma universal primer pair P1/P7 consistently amplified DNA in all tested phytoplasma isolates. But no phytoplasma DNA was detected in healthy jujube seedlings. The nested PCR, the primer pair 16S(V) F/R, about 460 bp fragment, amplified DNA in all tested JWB and related phytoplasmas including LiWB phytoplasma of the 165 rRNA group V, but no DNA amplification was detected from other phytoplasma strains such as group 16SrI (Aster yellows) and group 16SrⅩII (Stolbur group) phytoplasmas in which mulberry dwarf phytoplasma and chrysanthemum witches broom phytoplasma are belonged to, respectively The same results were obtained from both Korean- and Chinese-isolates of JWB. Nested-PCR using phytoplasma universal primer pair P1/P7 and 16S rRNA group V specific primer pair 16S(V) F/R could detect group V phytoplasma rapidly and easily, in particular JWB phytoplasma.
In order to diagnose and differentiate jujube witches' broom (JWB) phytoplasma rapidly, oligonucleotide primer pair, 16Sr(V) F/R, for polymerase chain reactions (PCRs) was designed on the basis of 16S rRNA sequences of JWB phytoplasma. The PCR employing phytoplasma universal primer pair P1/P7 consistently amplified DNA in all tested phytoplasma isolates. But no phytoplasma DNA was detected from healthy jujube seedlings. The nested PCR, the primer pair 16S(V) F/R, about 460 bp fragment, amplified DNA in all tested JWB and related phytoplasmas including ligustrum witches' broom phytoplasma of the 16S rRNA group V, but no DNA amplification was detected from other phytoplasma strains such as groups 16SrI (Aster yellows) and 16SrXII (Stolbur group) in which mulberry dwarf phytoplasma and chrysanthemum witches' broom phytoplasma belong to, respectively. The same results were obtained from both Korean and Chinese isolates of JWB phytoplasma. Nested-PCR using phytoplasma universal primer pair P1/P7 and 16SrV group-specific primer pair 16S(V) F/R could detect group V phytoplasmas rapidly and easily, in particular JWB phytoplasma.
Single-strand conformation polymorphism (SSCP) analysis of MD and JWB phytopalsma isolates which amplified PCR products using the R16F2n/R2 phytoplamsa universal primer pair were compared for variations of their nucleotide sequence. The MD and JWB phytoplasmas were clearly distinct each of the band patterns from about 1.2 kb PCR products. To clearly distinct of close SSCP band patterns, the MD and JWB phytoplasma PCR products were mixed and performed to detect their polymorphism. The SSCP band patterns show all of bands of MD and JWB on single lane and easily distinct their each band patterns. The PCR-SSCP analysis was possible to detect of 1.2 kb nucleotide sequence and near close band patterns were easily distinct by mixing two samples.
Heteroduplex mobility assay (HMA) and single-strand conformation polymorphism (SSCP) analyses combined with PCR were developed for genetic differentiation of various phytoplasma isolates. In the HMA and SSCP analyses, differences in the mobility shifts and the SSCP band patterns identified three distinct types of phyto-plasmas: Type Ⅰ, jujube witches'-broom (JWB) and ligustrum witches'-broom (LiWB); Type Ⅱ, mulberry dwarf(MD) and sumac witches'-broom (SuWB); and Type Ⅲ, paulownia witches'-broom (PaWB). Results of the sequence analyses revealed that phytoplasmas of JWB and MD had 100% homology with LiWB and SuWB, respectively. On the other hand, PaWB phyto-plasma had 97.8% homology with MD phytoplasma. The PCR-HMA and SSCP techniques were very useful in determining variations in sequence among several isolates of phytoplasmas. Furthermore, the methods were rapid, economical, highly sensitive, and easy to handle with the gels.
Kang, Hyo-Jung;Choe, Seonghui;Lee, Kyeong Hee;Park, Heesoon;Oh, Ha Kyung;Lee, Seongkyun;Shin, Hyunman
Research in Plant Disease
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v.26
no.1
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pp.19-28
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2020
Jujube witches' broom (JWB) disease is a high-risk plant disease that occurred on and devastated jujube orchards throughout South Korea in the 1950s. Recently, as the jujube cultivation area has been significantly increased nationwide, we investigated the disease in jujube orchards in the Boeun region to obtain basic information for proactively evaluating the risk of JWB outbreaks from 2017 to 2019. A field trial was conducted to evaluate the effect of the trunk injection of Sungbocycline (a. i. oxytetracycline calcium alkyl trimethyl ammonium 17%, OTC). The incidence of JWB disease was very low in Boeun, but it was gradually increased mainly in the area and on the farms where it had occurred previously. The trunk injection with OTC was most effective in the early stages of growth. However, even though the trees were treated with OTC, disease symptoms appeared in other healthy branches in severely affected trees. When the tree was first injected with OTC in June, the control efficacy of second injection was higher one month after the first injection than five months. These results suggest that early diagnosis based on various symptoms and early control based on them can be very effective in preventing JWB disease in advance and increasing control efficacy.
Phytoplasmas were detected consistently in 42 mulberry cultivars showing dwarf disease using DNA analysis by amplification with phytoplasma universal primer pairs P1/P7 (about 1.8 kb and R16F2n/R2 (about 1.2 kb). The point mutation from 42 cultivars of mulberry tree was detected by single-strand conformation polymorphism (SSCP) analysis. The SSCP profiles were clearly observed from all of cultivars in 8% polyacrylamide gel, electrophoresizing for and running 8-15 hrs. at 150V, $10^{\circ}C$. The MD and JWB phytoplasma PCR products was mixed and electrophoresis was performed to detect their polymorphism. In this results, the SSCP profiles of all bands of MD and JWB were analyzed on single lane and were distinct in their each of band patterns. The SSCP analysis was possible to detect of 1.8 kb and 1.2 kb nucleotide size and near close band patterns were distinct by mix of two samples. Previously, it was only possible to detect of point mutation under 600 bp nucleotide sequence by SSCP analysis but this modification of SSCP technique was possible to detect clearly SSCP band patterns of about 1.8 kb and 1.2 kb nucleotides.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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