The purpose of this study was to investigate the effect of Bee Venom on the lipopolysaccharide(LPS), sodium nitroprusside(SNP), hydrogen peroxide($H_2O_2$)-induced expressions of cyclooxygenase-2(COX-2), p38, jun N-terminal Kinase(JNK) and extra-signal response kinase(ERK) in RAW 264.7 cells, a murine macrophage cell line. Method : The expressions of COX-2, p38, JNK and ERK were determined by western blotting with corresponding antibodies. Results : 1. The 0.5, 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited significantly LPS and SNP-induced expression of COX-2 compared with control, respectively. The 0.5, 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited insignificantly $H_2O_2$-induced expression of COX-2 compared with control, respectively. 2. The 0.5, 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited significantly LPS, SNP and $H_2O_2$-induced expression of p38 compared with control, respectively. 3. The 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited significantly SNP-induced expression of JNK compared with control, respectively. All of bee venom inhibited insignificantly LPS and $H_2O_2$-induced expression of JNK compared with control, respectively. 4. The $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited significantly SNP-induced expression of ERK, the $0.5\;{\mu}g/ml$ of bee venom increased significantly $H_2O_2$-induced expression of ERK compared with control. The 0.5, 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited insignificantly LPS-induced expression of ERK compared with control, respectively.
Rutin is a well-known flavonoid found in buckwheat. Recent studies have demonstrated that the biological actions of rutin include anti-inflammatory and anti-cancer effects, but the underlying molecular mechanisms of these actions are not yet fully understood. Neoplastic cell transformation is considered a major event that contributes to carcinogenesis, and the present study aimed to determine whether rutin would exert anti-tumor effects via the results suggest that rutin exerted a potent inhibitory influence on the molecular activity of the MEK/ERK and MKK4/JNK pathways and strongly attenuated EGF-induced neoplastic cell transformation. These findings provide insight into the biological actions of rutin and the molecular basis for the development of new chemoprotective agents.
${\alpha}$-Methyl-n-butylshikonin (MBS), one of the active components in the root extracts of Lithospermum erythrorhizon, posses antitumor activity. In this study, we assess the molecular mechanisms of MBS in causing apoptosis of SW620 cells. MBS reduced the cell viability of SW620 cells in a dose-and time-dependent manner and induced cell apoptosis. Treatment of SW620 cells with MBS down-regulated the expression of Bcl-2 and up-regulated the expression of Bak and caused the loss of mitochondrial membrane potential. Additionally, MBS treatment led to activation of caspase-9, caspase-8 and caspase-3, and cleavage of PARP, which was abolished by pretreatment with the pan-caspase inhibitor Z-VAD-FMK. MBS also induced significant elevation in the phosphorylation of JNK and p38. Pretreatment of SW620 cells with specific inhibitors of JNK (SP600125) and p38 (SB203580) abrogated MBS-induced apoptosis. Our results demonstrated that MBS inhibited growth of colorectal cancer SW620 cells by inducing JNK and p38 signaling pathway, and provided a clue for preclinical and clinical evaluation of MBS for colorectal cancer therapy.
Efonidipine, a calcium channel blocker, is widely used for the treatment of hypertension and cardiovascular diseases. In our preliminary study using structure-based virtual screening, efonidipine was identified as a potential inhibitor of c-Jun N-terminal kinase 3 (JNK3). Although its antihypertensive effect is widely known, the role of efonidipine in the central nervous system has remained elusive. The present study investigated the effects of efonidipine on the inflammation and cell migration induced by lipopolysaccharide (LPS) using murine BV2 and human HMC3 microglial cell lines and elucidated signaling molecules mediating its effects. We found that the phosphorylations of JNK and its downstream molecule c-Jun in LPS-treated BV2 cells were declined by efonidipine, confirming the finding from virtual screening. In addition, efonidipine inhibited the LPS-induced production of pro-inflammatory factors, including interleukin-1β (IL-1β) and nitric oxide. Similarly, the IL-1β production in LPS-treated HMC3 cells was also inhibited by efonidipine. Efonidipine markedly impeded cell migration stimulated by LPS in both cells. Furthermore, it inhibited the phosphorylation of inhibitor kappa B, thereby suppressing nuclear translocation of nuclear factor-κB (NF-κB) in LPS-treated BV2 cells. Taken together, efonidipine exerts anti-inflammatory and anti-migratory effects in LPS-treated microglial cells through inhibition of the JNK/NF-κB pathway. These findings imply that efonidipine may be a potential candidate for drug repositioning, with beneficial impacts on brain disorders associated with neuroinflammation.
Park, Hye-Min;Lee, Sei-Jin;Kim, Sun-Young;Go, Hyeon-Kyu;Jeon, Seol-Hee;Kim, Shang-Jin;Kang, Hyung-Sub;Kim, Jin-Shang
Journal of Veterinary Clinics
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v.28
no.6
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pp.549-554
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2011
FK506 is a widespread immunosuppressive drug after liver transplantion in patients with advanced-stage hepatocellular carcinoma. Dexamethasone is frequently used as co-treatment in cytotoxic cancer therapy, e.g. to prevent nausea, to protect normal tissue or for other reasons. Our aim was to investigate antitumor effects of FK506 in Hep3B cells, one of differentiated human hepatocellular carcinoma cell lines and inhibitory effects of dexamethsone on FK506- induced antitumor effects. Cell injury was evaluated by biochemical assays as cell viability, lactate dehydrogenase (LDH) and reactive oxygen species (ROS) in Hep3B cells. Intracellular calcium concentration ([$Ca^{2+}$]i) and the level of activation of the c-Jun-N-terminal kinase (JNK) and the Bax protein in cultured Hep3B cells was measured. Exposure of 0.1 ${\mu}M$ FK506 to Hep3B cells led to cell death accompanied by a decrease in cell viability and an increase in LDH, ROS and [$Ca^{2+}$]i. FK506 induced an increase in activity of Bax and JNK protein but inhibited the activity of Bcl-2 protein. Treatment of dexamethsone, per se, had no effects on cell viability, LDH and ROS. However, co-treatment of FK506 and dexamethasone diminished the FK506-induced LDH release, ROS generation and JNK activation. These results demonstrate that FK506 has antitumor effect in Hep3B cells but the combination of FK506 and dexamethasone antagonizes the FK506-induced antitumor effects.
Tumor necrosis factor ($TNF-{\alpha}$), an inflammatory cytokine that plays an important role in the control of cell proliferation, differentiation, and apoptosis, has previously been used in anti-cancer therapy. However, the therapeutic applications of $TNF-{\alpha}$ are largely limited due to its general toxicity and anti-apoptotic influence. To overcome this problem, the present study focused on the effect of active constituents isolated from a medicinal plant on $TNF-{\alpha}$-induced apoptosis in human colon adenocarcinoma (HT-29) cells. Nimbolide from Azadirachta indica was evaluated for cytotoxicity by methyl tetrazolium 3-[4,5-dimethylthiazol-2-yl]-2, 5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) assay and phase contrast microscopy. Effects on apoptotic signaling proteins were investigated using Western blot analysis. Nimbolide showed cytotoxicity against HT-29 cells that was significantly different from the control group (p<0.01), a concentration of $10{\mu}M$ significantly inducing cell death (p<0.01). In combination with $TNF-{\alpha}$, nimbolide significantly enhanced-induced cell death. In apoptotic pathway, nimbolide activated c-Jun N-terminal kinase (JNK) phosphorylation, BH3 interacting-domain death agonist (Bid) and up-regulated the death receptor 5 (DR5) level. In the combination group, nimbolide markedly sensitized $TNF-{\alpha}$-induced JNK, Bid, caspase-3 activation and the up-regulation of DR5. Our findings overall indicate that nimbolide may enhance $TNF-{\alpha}$-mediated cellular proliferation inhibition through increasing cell apoptosis of HT-29 cells by up-reglation of DR5 expression via the JNK pathway.
The sex steroid hormone estradiol-$17{\beta}(E_2)$ mediate their biological effects on development, differentiation and maintenance of reproductive tract and other target tissue through gene regulation by nuclear steroid receptors. Although the importance of $E_2$ in many physiological process has been reported, but little is known about the effects of $E_2$ on primary cultured chicken hepatocyte. therefore, in the present study, we have examined the effect of $E_2$ on cell proliferation and it's related signal cascades. $E_2$ increase $[^3H]$-thymidine incorporation in time-(${\leq}8hr$) and dose-($10^{-10}M$)dependent manner and treatment of $E_2$ increased the phosphorylation of p44/43 MAPKs(p44/42 mitogen-activated protein kinase) and JNK(c-Jun N-terminal kinase) in a time dependent manner. In addition, PD98059(p44/42 blocker, $10^{-5}M$), SP600125(JNK blocker, $10^{-6}M$) blocked the estrogen-induced increase in $[^3H]$-thymidine incorporation. In conclusion, $E_2$ stimulates the proliferation of primary cultured chicken hepatocytes and this action is mediated by p44/42 MAPKs and JNK signal transduction pathway.
Zhong, Dong;Ran, Jian-Hua;Tang, Wen-Yuan;Zhang, Xiao-Dong;Tan, Yun;Chen, Gui-Jie;Li, Xiao-Song;Yan, Yi
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.13
no.6
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pp.2897-2901
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2012
Invasion is usually recognized as the main reason for the high recurrence and death rates of glioma and restricts the efficacy of surgery and other therapies. Therefore, we aimed to investigate the mechanism involved in promotion effects of mda-9/syntenin on human glioma cell migration. The wound healing method was used to test the migration ability of human glioma cells CHG-5 and CHG-hS, stably overexpressing mda-9/syntenin. Western blotting was performed to determine the expression and phosphorylation of focal adhesion kinase (FAK) and JNK in CHG-5 and CHG-hS cells. The migration ability of CHG-hS cells was significantly higher than that of CHG-5 cells in fibronectin (FN)-coated culture plates. Phosphorylation of FAK on tyrosine 397, 576, and 925 sites was increased with time elapsed in CHG-hS cells. However, phosphorylated FAK on the tyrosine 861 site was not changed. Phosphorylated Src, JNK and Akt levels in CHG-hS cells were also significantly upregulated. Phosphorylation of JNK and Akt were abolished by the specific inhibitors SP600125 and LY294002, respectively, and the migration ability of CHG-hS cells was decreased, indicating that the JNK and PI3K/Akt pathways play important roles in regulating mda-9/syntenin-induced human brain glioma migration. Our results indicate Mda-9/syntenin overexpression could activate FAK-JNK and FAK-Akt signaling and then enhance the migration capacity of human brain glioma cells.
The anti-inflammatory activity of eriodictyol and its mode of action were investigated. Eriodictyol suppressed tumor necrosis factor (mTNF)-${\alpha}$, inducible nitric oxide synthase (miNOS), interleukin (mIL)-6, macrophage inflammatory protein (mMIP)-1, and mMIP-2 cytokine release in LPS-stimulated macrophages. We found that the anti-inflammatory cascade of eriodictyol is mediated through the Toll-like Receptor (TLR)4/CD14, p38 mitogen-activated protein kinases (MAPK), extracellular-signal-regulated kinase (ERK), Jun-N terminal kinase (JNK), and cyclooxygenase (COX)-2 pathway. Fluorescence quenching and saturation-transfer difference (STD) NMR experiments showed that eriodictyol exhibits good binding affinity to JNK, $8.79{\times}10^5M^{-1}$. Based on a docking study, we propose a model of eriodictyol and JNK binding, in which eriodictyol forms 3 hydrogen bonds with the side chains of Lys55, Met111, and Asp169 in JNK, and in which the hydroxyl groups of the B ring play key roles in binding interactions with JNK. Therefore, eriodictyol may be a potent anti-inflammatory inhibitor of JNK.
N-(p-Coumaryol) tryptamine (CT), a phenolic amide, has been reported to exhibit anti-oxidant and anti-inflammatory activities. However, the underlying mechanism by which CT exerts its pharmacological properties has not been clearly demonstrated. The objective of this study is to elucidate the anti-inflammatory mechanism of CT in lipopolysaccharide (LPS)-challenged RAW264.7 macrophage cells. CT significantly inhibited LPS-induced extracellular secretion of pro-inflammatory mediators such as nitric oxide (NO) and $PGE_2$, and protein expressions of iNOS and COX-2. In addition, CT significantly suppressed LPS-induced secretion of pro-inflammatory cytokines such as TNF-${\alpha}$ and IL-$1{\beta}$. To elucidate the underlying anti-inflammatory mechanism of CT, involvement of MAPK and Akt signaling pathways was examined. CT significantly attenuated LPS-induced activation of JNK/c-Jun, but not ERK and p38, in a concentration-dependent manner. Interestingly, CT appeared to suppress LPS-induced Akt phosphorylation. However, JNK inhibition, but not Akt inhibition, resulted in the suppression of LPS-induced responses, suggesting that JNK/c-Jun signaling pathway significantly contributes to LPS-induced inflammatory responses and that LPS-induced Akt phosphorylation might be a compensatory response to a stress condition. Taken together, the present study clearly demonstrates CT exerts anti-inflammatory activity through the suppression of JNK/c-Jun signaling pathway in LPS-challenged RAW264.7 macrophage cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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