Shin, Seung Yub;Han, Tae Hee;Kwon, Hyuk Joon;Kim, Sun Joong;Ryu, Pan Dong
Journal of Veterinary Science
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v.22
no.3
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pp.33.1-33.6
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2021
Very virulent infectious bursal disease virus (vvIBDV) causes high mortality in chickens but measures to reduce the mortality have not been explored. Chickens (8-9 weeks) were treated with 3 agents before and during vvIBDV inoculation. Dexamethasone treatment reduced the mortality of infected chickens (40.7% vs. 3.7%; p < 0.001), but treatment with aspirin or vitamin E plus selenium did not affect the mortality. The bursa of Fabricius appeared to have shrunk in both dead and surviving chickens (p < 0.01). The results indicate that dexamethasone can reduce mortality in vvIBDV-infected chickens and may provide therapeutic clues for saving individual birds infected by the virus.
The objective of this experiment was to investigate the effect of Newcastle disease virus (NDV) and infectious bursal disease virus (IBDV) vaccination on performance of broiler chicks for five weeks. Two types of poultry houses and three patterns of vaccination ($NDV^-/IBDV^-$, $NDV^+/IBDV^-$ and $NDV^+/IBDV^+$) were factorially assigned to six treatments. NDV, B1 strain and IBDV, Bursin-2 vaccine were orally administered at 5, 14 and 7, 18 days, respectively. Forty eight hundred chicks were grouped into four replications with two hundnyd hybro $\times$ hybro chicks per each treatment. Weight gain, feed conversion ratio (FCR), mortality and product index were surveyed at the end of experiment. Bursa index and IBDV antibody titer of chicks were weekly measured. Weight gain of chicks vaccinated with $NDV^+/IBDV^+$ was significantly increased compared to that of other treatments at both window and windowless poultry houses (p<0.05). Chicks vaccinated with $NDV^+/IBDV^+$ also showed significantly improving the FCR and mortality compared to those of other treatments at both poultry houses (p<0.05). The bursa indecies of both poultry houses were high from one-day- to three-weeks-old, but were low for the rest of two weeks. IBDV antibody of all chicks was detected 100% by agar gel precipitation (AGP) test at one day old, but was not detected in $NDV^-/IBDV^-$ and $NDV^+/IBDV^-$ treatments at four weeks old. However, it showed 100% in $NDV^+/IBDV^+$ treatment. Antibody titer using ELISA showed similar trend to that of AGP test. The results of this experiment confirmed that IBDV and NDV combined vaccine significantly improved the performance of broiler chicks.
Kim, Soon J.;Rhee, Young O.;Kim, Sun J.;Jhun, Woo S.;Park, Keun S.
Korean Journal of Veterinary Research
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v.20
no.1
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pp.59-64
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1980
Incidence of avian infectious diseases in breeder chickens was followed serologically. Serum samples were collected during the period of 1978~1979 from breeders throughout country and tested for the presence of antibodies against Salmonella pullorum(SP), Mycoplasma gallisepticum(MG), Avian Infectious Bronchitis virus(AIBV), Infectious Bursal Disease virus(IBDV) and Egg Drop Syndrome Virus(EDS). The tests used serum plate agglutination for SP and MG, immuno-diffusion for AIBV and IBDV and hemagglutination-inhibition test for EDS virus. The results are summarized as follows: 1. Individuals and Hocks incidence rate of Avian Infectious Bronchitis virus were 16.9% and 55.3%. 2. Individuals and Hocks incidence rate of Infectious Bursal Disease virus were 50.1% and 66.4%. 3. Individuals and Hocks incidence rate of sal. pullorum were 17.2% and 65.9%. 4. Individuals and flocks incidence rate of M. gallisepticum were 36.2% and 63.2%. 5. Individuals and flocks incidence rate of Egg Drop Syndrome (BC 14) virus were 14.1% and 46.3%.
Chickens at 3-weeks of age were inoculated with a highly virulent strain (SH/92) of Infectious Bursal Disease Virus(IBDV) through ocular and cloacal routes. The infected chickens were killed at 6, 12, 24, 48, 72, and 96 hrs post inoculation (PI) and Bursa of Fabricius(BF) were collected. The sizes of bursal follicules in infected chickens decreased at 48 to 96 hrs PI. Histologically the cellular changes were first evident at 12 hrs PI and characterized by condensation of nuclear chromatin of bursal lymphocytes indicating apoptosis. By 24 hrs PI apoptotic lymphocytes dramatically increased. In addition infiltration of heterophils were also seen in the follicles and in the interfollicular connective tissues. At 48 hrs PI, cystic cavities were observed in the follicles. As the infection advanced the bursal follicles showed atrophy accompanied by disappearance of heterophils and reduction in number of lymphocytes in the cystic cavities which was replaced by proteineous materials. The nuclei of most affected lymphocyte stained positively with the in situ end labeling for apoptosis. Electron microscopy showed viral particles with crystalline array in the lymphocytes of BF infected with IBOV. These results indicated that SH/92 IBDV infection in chickens caused increased apoptosis in the BF.
The objective of the present study was to isolate and identify infectious bursal disease viruses (IBDVs) from broiler and layer chickens of outbreaks of infectious bursal disease (IBD) in three districts of Bangladesh. A total of 70 bursal samples were collected from dead broiler (n=40) and layer (n=30) chickens showing specific lesions of IBD from seven commercial poultry farms of three different districts (Mymensingh, Chittagong and Tangail) of Bangladesh during the year 2007. Five representative bursal samples from each farm were used for the isolation of IBDVs using 9-day-old embryonated eggs of seronegative flock of layer birds and for identification the samples were subjected to agar gel immunodiffusion test (AGIDT), immunohistochemistry (IHC) and reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). Out of 35 bursal samples, IBDVs were successfully isolated from 28 (80%) samples. By AGIDT, 32 (91.4%) samples were found positive for IBDV antigen. Results of AGIDT clearly indicated that IBDVs detected in 29 bursal samples of six affected farms were identical to each other but not to IBDVs present in the remaining three samples of another farm. Indirect immunoperoxidase staining of the bursal sections revealed the presence of IBDV antigen in 32 (91.4%) samples and the IBDV antigen was detected mainly in the cortex of the lymphoid follicles of the bursal tissues. In histopathology, cell depletion, atrophy and necrosis were observed in many bursal follicles with severe edema of interfollicular septa. Of the 35 bursal samples, 34 (97.1%) samples generated 254 bp product by RT-PCR. In conclusion, the results of virus isolation and identification by AGIDT, IHC and the analysis of viral genome by RT-PCR confirmed the outbreaks of acute IBD in commercial poultry of Bangladesh. Moreover, histopathological findings and results of AGIDT gave a clear indication that the isolates from six outbreaks were different from classical strain and it seems to be of very virulent strain. On the other hand, the isolates from the other outbreak were similar to the classical strain.
The VP2 full gene of Korean infectious bursal disease virus(IBDV) strain, SH/92, three attenuated vaccine strains, Bur706, Bursine-2 and CEV/AC strains, were amplified by reverse transcriptase-polymerase chain reaction and sequenced and compared with published VP2 gene sequences of IBDVs. The VP2 nucleotide sequence similarity between SH/92 and three vaccine stains was 95.6~96.5% whereas the nucleic acid similarity among three vaccine strains was 97.5~98.5%. The amino acid sequence similarity of VP2 of SH/92 compared with three vaccine strains was between 94.4 and 97.6% while the amino acid similarity among three vaccine strains was between 97.4 and 98.4%. The amino acid similarity between SH/92 and classical virulent strain, 52/70 and STC strain was 96.4 and 96.5%, respectively. The serine-rich heptapeptide was conserved in CEVAC and Bursine-2 as well as SH/92 but not in Bur706. The phylogenetic tree developed from amino acid sequences showed that SH/92 was categorized with vv IBDVs(HK46, OKYM, KKI, UPM94/273, SH95) in one branch while three vaccine strains were catagorized with STC strain in the other branch.
This is a case report on the occurrence of inclusion body hepatitis (IBH) and infectious bursal disease (IBD) among the broilers in a local farm located in Wanju, Jeollabukdo. Mostly IBH could be caused by adenovirus if the bird's immune system was first weakened by exposure to immunosupressive agents such as infectious bursal disease virus (IBDV) and chicken anemia virus (CIAV). However IBH primary occurred before IBD in this case. And recent work has demonstrated that virulent adenovirus alone can produce the disease.
An immunochromatograhy (IC) based infectious bursal disease virus (IBDV) detection kit, which employed two anti-IBDV VP2 monoclonal antibodies, was evaluated for rapid diagnosis of infectious bursal disease virus (IBD). The detection limit of the IC kit for IBDV was $10^{3.1}$ to $10^{3.9}$$EID_{50}$/mL, indicating that the IC kit detected IBDV sensitively as same as double antigen capture ELISA but less than a RT-PCR assay. The IC kit did not detect other viral pathogens such as Newcastle disease virus, infectious bronchitis, avian influenza virus, and infectious larynotracheitis virus. When applied to tissue samples of experimental chickens died 3 or 4 days post infection after very virulent IBDV (strain Kr/D62) infection, the IC kit detected IBDV in all samples of the bursa of Fabricius, spleen, kidney, cecal tonsil and in 87.5%, 37.5% and 0% of liver, thymus and proventriculus samples. In particular, BF tissue samples showed stronger signal bands than other tissues. Positive signal was observed. All except for one thymus sample of samples having negative results by the IC kit showed the same result with DAS-ELISA but RT-PCR assay detected IBDV in some of IC kit negative samples of thymus and proventriculus. When swab samples from the bursa of Fabricius of dead chickens (n=231) on field farms were tested, the sensitivity and specificity of the IC assay relative to RT-PCR was 100% (109/109) and 97.5% (119/122), respectively and kappa value between both assay was 0.97. The kit can provide a useful aid for rapid detection of IBDV in chickens under field circumstances.
Sanaullah Sajid;Sajjad ur Rahman;Mashkoor Mohsin;Zia ud Din Sindhu
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.50
no.3
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pp.430-435
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2022
The infectious bursal disease (IBD) is a highly contagious and acute poultry disease caused by Birnavirus. However, the vaccination is the only disease prevention, but several factors impeded vaccine development. Thus, a need for time to develop a novel technique for managing and treating respiratory diseases in poultry birds. Passive immunization is a hope and a possible alternative used in birds to meet this need. The current research attempted to produce egg yolk-based polyclonal antibodies against the IBD virus. The benefits of IgY include ease of extraction, lack of reaction with mammalian Fc receptors, and low production cost. Commercial layers were immunized with inactivated IBD virus subcutaneously according to the treatment regimen. The eggs were gathered daily, and yolk antibodies were extracted with the ammonium sulfate precipitation technique. The use of an indirect hemagglutination test demonstrated that IgY was IBD-specific. Until the end of the experiment, the specific IgY immunoglobulins did not lose activity when stored at 4℃. The specific immunoglobulin (IgY) treated challenged birds were demonstrated 92% recovery in comparison to the control group. The study implies that the IBDV specific IgY is an easily prepared and rich source of antibodies and offers an alternative therapeutic agent to cure IBD-infected birds.
The strategy for infectious bursal disease (IBD) control and its success rate under field conditions depends on hygiene management, IBD field pressure, level, and variation in maternally derived IBD antibodies. This study investigated the level of IBD-specific antibody by ELISA and the prevalence of IBD virus by PCR in broilers, white-semi broilers, and Korean native chickens raised in Jeongeup, Jeonbuk. IBD-specific maternally derived antibodies were measured from 698 chickens and the mean titers of maternal antibodies were $3,572{\pm}1,402$ in broilers, $1,262{\pm}762$ in white-semi broilers, and $1,932{\pm}912$ in Korean native chickens. At 2 weeks after vaccination, the geometric mean antibody titers of broiler, white-semi broiler, and Korean native chicken were $582{\pm}427$, $3255{\pm}1,080$, and $1,023{\pm}499$, respectively. According to sequence analysis of the variable virion protein 2 gene, 4 isolates were found to be very virulent IBDV, 9 isolates classical virulent, and 2 isolates intermediate plus vaccine strain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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