The early steps of neural development in the vertebrate embryo are regulated by sets of transcription factors that control the induction of proliferative, pluripotent neural precursors, the expansion of neural plate stem cells, and their transition to differentiating neural progenitors. These early events are critical for producing a pool of multipotent cells capable of giving rise to the multitude of neurons and glia that form the central nervous system. In this review we summarize findings from gain- and loss-of-function studies in embryos that detail the gene regulatory network responsible for these early events. We discuss whether this information is likely to be similar in mammalian embryonic and induced pluripotent stem cells that are cultured according to protocols designed to produce neurons. The similarities and differences between the embryo and stem cells may provide important guidance to stem cell protocols designed to create immature neural cells for therapeutic uses.
Stem cells are the foundational cells for every organ and tissue in our body. Cell-based therapeutics using stem cells in regenerative medicine have received attracting attention as a possible treatment for various diseases caused by congenital defects. Stem cells such as induced pluripotent stem cells (iPSCs) as well as embryonic stem cells (ESCs), mesenchymal stem cells (MSCs), and neuroprogenitors stem cells (NSCs) have recently been studied in various ways as a cell-based therapeutic agent. When various stem cells are transplanted into a living body, they can differentiate and perform complex functions. For stem cell transplantation, it is essential to determine the suitability of the stem cell-based treatment by evaluating the origin of stem, the route of administration, in vivo bio-distribution, transplanted cell survival, function, and mobility. Currently, these various stem cells are being imaged in vivo through various molecular imaging methods. Various imaging modalities such as optical imaging, magnetic resonance imaging (MRI), ultrasound (US), positron emission tomography (PET), and single-photon emission computed tomography (SPECT) have been introduced for the application of various stem cell imaging. In this review, we discuss the principles and recent advances of in vivo molecular imaging for application of stem cell research.
최근에 체세포 리프로그래밍 기법을 사용하여 체세포에 몇 가지 전사인자(리프로그래밍 인자)를 넣어줌으로써 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cell, iPS)를 만드는데 성공하였다. 유도만능줄기세포는 배아줄기세포와 유사하게 자가재생 할 수 있는 능력이 있으며, 신체의 모든 타입의 세포로 분화할 수 있는 특징을 가지고 있다. 배아줄기세포와는 달리 면역거부반응이 없다는 점과 윤리적인 문제로부터 자유롭다는 장점이 있어 2006년 Yamanaka 팀이 유도만능줄기세포에 관해 처음 보고한 이후로 이 분야 연구의 급속한 발전이 이루어지고 있다. 하지만 안전성의 문제점 때문에 세포치료제로 사용되기 위해서는 리프로그래밍 인자의 도입 방법 및 새로운 리프로그래밍 인자의 발굴 등 몇 가지 해결해야 할 점들이 남아 있다. 본 종설에서는 유도만능줄기세포를 만드는데 사용된 몇 가지 리프로그래밍 인자에 대해 보고된 연구 내용을 리프로그래밍 인자가 존재하는 세포인 배아줄기세포 및 난자와 배아에서 정리하고자 하며, 리프로그래밍 인자의 연구에 관한 방향에 대해 논의하고자 한다.
Kwon, Seong Gyu;Kwon, Yang Woo;Lee, Tae Wook;Park, Gyu Tae;Kim, Jae Ho
생체재료학회지
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제22권4호
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pp.311-318
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2018
Background: Tissue regeneration includes delivering specific types of cells or cell products to injured tissues or organs for restoration of tissue and organ function. Stem cell therapy has drawn considerable attention since transplantation of stem cells can overcome the limitations of autologous transplantation of patient's tissues; however, it is not perfect for treating diseases. To overcome the hurdles associated with stem cell therapy, tissue engineering techniques have been developed. Development of stem cell technology in combination with tissue engineering has opened new ways of producing engineered tissue substitutes. Several studies have shown that this combination of tissue engineering and stem cell technologies enhances cell viability, differentiation, and therapeutic efficacy of transplanted stem cells. Main body: Stem cells that can be used for tissue regeneration include mesenchymal stem cells, embryonic stem cells, and induced pluripotent stem cells. Transplantation of stem cells alone into injured tissues exhibited low therapeutic efficacy due to poor viability and diminished regenerative activity of transplanted cells. In this review, we will discuss the progress of biomedical engineering, including scaffolds, biomaterials, and tissue engineering techniques to overcome the low therapeutic efficacy of stem cells and to treat human diseases. Conclusion: The combination of stem cell and tissue engineering techniques overcomes the limitations of stem cells in therapy of human diseases, and presents a new path toward regeneration of injured tissues.
Myunghyun Kim;Junmyeong Park;Sujin Kim;Dong Wook Han;Borami Shin;Hans Robert Scholer;Johnny Kim;Kee-Pyo Kim
International Journal of Stem Cells
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제16권1호
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pp.36-43
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2023
Background and Objectives: Lymphoblastoid cell lines (LCLs) deposited from disease-affected individuals could be a valuable donor cell source for generating disease-specific induced pluripotent stem cells (iPSCs). However, generation of iPSCs from the LCLs is still challenging, as yet no effective gene delivery strategy has been developed. Methods and Results: Here, we reveal an effective gene delivery method specifically for LCLs. We found that LCLs appear to be refractory toward retroviral and lentiviral transduction. Consequently, lentiviral and retroviral transduction of OCT4, SOX2, KFL4 and c-MYC into LCLs does not elicit iPSC colony formation. Interestingly, however we found that transfection of oriP/EBNA-1-based episomal vectors by electroporation is an efficient gene delivery system into LCLs, enabling iPSC generation from LCLs. These iPSCs expressed pluripotency makers (OCT4, NANOG, SSEA4, SALL4) and could form embryoid bodies. Conclusions: Our data show that electroporation is an effective gene delivery method with which LCLs can be efficiently reprogrammed into iPSCs.
Kidney disease affects a significant portion of the global population, yet effective therapies are lacking despite advancements in identifying genetic causes. This limitation can be attributed to the absence of adequate in vitro models that accurately mimic human kidney disease, hindering targeted therapeutic development. However, the emergence of human induced pluripotent stem cells (PSCs) and the development of organoids using them have opened up a way to model kidney development and disease in humans, as well as validate the effects of new drugs. To fully leverage their capabilities in these fields, it is crucial for kidney organoids to closely resemble the structure and functionality of adult human kidneys. In this review, we aim to discuss the potential of using human PSCs or adult kidney stem cell-derived kidney organoids to model genetic kidney disease and renal cancer.
Jin Saem Lee;Jeoung Eun Lee;Shin-Hye Yu;Taehoon Chun;Mi-Yoon Chang;Dong Ryul Lee;Chang-Hwan Park
International Journal of Stem Cells
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제17권1호
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pp.59-69
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2024
Human pluripotent stem cells (hPSCs) such as human embryonic stem cells (hESCs), induced pluripotent stem cells, and somatic cell nuclear transfer (SCNT)-hESCs can permanently self-renew while maintaining their capacity to differentiate into any type of somatic cells, thereby serving as an important cell source for cell therapy. However, there are persistent challenges in the application of hPSCs in clinical trials, where one of the most significant is graft rejection by the patient immune system in response to human leukocyte antigen (HLA) mismatch when transplants are obtained from an allogeneic (non-self) cell source. Homozygous SCNT-hESCs (homo-SCNT-hESCs) were used to simplify the clinical application and to reduce HLA mismatch. Here, we present a xeno-free protocol that confirms the efficient generation of neural precursor cells in hPSCs and also the differentiation of dopaminergic neurons. Additionally, there was no difference when comparing the HLA expression patterns of hESC, homo-SCNT-hESCs and hetero-SCNT-hESCs. We propose that there are no differences in the differentiation capacity and HLA expression among hPSCs that can be cultured in vitro. Thus, it is expected that homo-SCNT-hESCs will possess a wider range of applications when transplanted with neural precursor cells in the context of clinical trials.
Gangliosides play important roles in the control of several biological processes, including proliferation and transmembrane signaling. In this study, we demonstrate the effect of ganglioside GM1 on the proliferation of mouse induced pluripotent stem cells (miPSCs). The proliferation rate of miPSCs was lower than in mouse embryonic stem cells (mESCs). Fluorescence activated cell sorting analysis showed that the percentage of cells in the G2/M phase in miPSCs was lower than that in mESCs. GM1 was expressed in mESCs, but not miPSCs. To confirm the role of GM1 in miPSC proliferation, miPSCs were treated with GM1. GM1-treated miPSCs exhibited increased cell proliferation and a larger number of cells in the G2/M phase. Furthermore, phosphorylation of mitogen-activated protein kinases was increased in GM1-treated miPSCs.
Kim, Youngkyu;Kim, Tae-Keun;Shin, Yeonhee;Tak, Eunyoung;Song, Gi-Won;Oh, Yeon-Mok;Kim, Jun Ki;Pack, Chan-Gi
Molecules and Cells
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제44권11호
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pp.851-860
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2021
Label-free optical diffraction tomography (ODT), an imaging technology that does not require fluorescent labeling or other pre-processing, can overcome the limitations of conventional cell imaging technologies, such as fluorescence and electron microscopy. In this study, we used ODT to characterize the cellular organelles of three different stem cells-namely, human liver derived stem cell, human umbilical cord matrix derived mesenchymal stem cell, and human induced pluripotent stem cell-based on their refractive index and volume of organelles. The physical property of each stem cell was compared with that of fibroblast. Based on our findings, the characteristic physical properties of specific stem cells can be quantitatively distinguished based on their refractive index and volume of cellular organelles. Altogether, the method employed herein could aid in the distinction of living stem cells from normal cells without the use of fluorescence or specific biomarkers.
Parkinson's disease (PD) is a complicated neurodegenerative disorder although it is oftentimes defined by clinical motor symptoms originated from age dependent and progressive loss of dopaminergic neurons in the midbrain. The pathogenesis of PD involves dopaminergic and nondopaminergic neurons in many brain regions and the molecular mechanisms underlying the death of different cell types still remain to be elucidated. There are indications that PD causing disease processes occur in a global scale ranging from DNA to RNA, and proteins. Several PD-associated genes have been reported to play diverse roles in controlling cellular functions in different levels, such as chromatin structure, transcription, processing of mRNA, translational modulation, and posttranslational modification of proteins. The advent of quantitative high throughput screening (HTS) tools makes it possible to monitor systemic changes in DNA, RNA and proteins in PD models. Combined with dopamine neuron isolation or derivation of dopamine neurons from PD patient specific induced pluripotent stem cells (PD iPSCs), HTS techonologies will provide opportunities to draw PD causing sequences of molecular events in pathologically relevant PD samples. Here I discuss previous studies that identified molecular functions in which PD genes are involved, especially those signaling pathways that can be efficiently studied using HTS methodologies. Brief descriptions of quantitative and systemic tools looking at DNA, RNA and proteins will be followed. Finally, I will emphasize the use and potential benefits of PD iPSCs-derived dopaminergic neurons to screen signaling pathways that are initiated by PD linked gene mutations and thus causative for dopaminergic neurodegneration in PD.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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