The objective of this study was to determine a simple and reliable ploidy identification protocol for the rainbow trout (RT), Oncorhynchus mykiss, in the field condition. To evaluate the ploidy level and compare different detection protocols, triploid RT and gynogenesis were induced by UV irradiation and/or heat shock. The hatching rate at day 30 was 85.2% and the survival rate at day 90 was 69.4% (fingerling). The sex ratio of female RT was 93.75% in the gynogenesis group, illustrating that the UV irradiation inactivated the sperm DNA. The hatching rate and survival rate were 82.0 and 74.7%, respectively, in the triploid-induced group. The triploid induction rate by heat shock procedure was 73.9%. Cytogenetic protocols for ploidy identification such as chromosome counting, erythrocyte nuclear size comparison, and analysis of nucleolar organizing regions (NORs) by silver staining were compared. Silver nitrate staining showed the greatest success rate (22/23 and 32/32 for the triploid-induced group and gynogenesis group, respectively), followed by erythrocyte nuclear size comparison (16/23 and 19/32 for the triploid-induced group and gynogenesis group, respectively) and, lastly, chromosome preparation (2/23 and 6/32 for the triploid-induced group and gynogenesis group, respectively) with the lowest success rate. Based on our findings, silver staining for RT ploidy identification is speculated to be highly applicable in a wide range of research conditions, due to its cost-effectiveness and simplicity compared to other numerous ploidy detection protocols.
Blocking the 1st mitotic cleavage was performed in mud loach (Misgurmus mizolepis) using UV-irradiated cyprinid loach (M. anguillicaudatus) sperm and ternal shocks Optimum UV range for inactivation of cyprinid loach sperm and thermal shocks. Optimum UV range for inactivation of cyprinid loach sperm was between 3,150 to 4,050 ergs/m$m^2$. Heat shock treatment ($41^{\circ}C$ for 3mins) with various treatment initiation times ranged from 22 to 50 min post insemination resulted wide range of success for induced gynogenesis. Best result was obtained when haploid egges were shocked at 28 min after insemination (corresponding to metaphase division of the 1st cleavage); 26% of total eggs inseminated were viable diploid gynogens. The hatching success and early survival of the both meiotic and mitotic gynogenetic groups were significantly lower than those of control crosses (P<0.05). Maternal origin of induced gynogenetic mud loach was verified by multi-locus DNA fingerprinting.
To examine the effect of copy number-dependent transgenic genotype on the expression of foreign gene, stable hemizygous and homozygous transgenic breeding line was established using artificial parthenogenesis. For this purpose, induced diploid gynogenetic transgenesis was optimized in mud loach (Misgurnus mizolepis) using UV-irradiated cyprinid loach (M. anguillicaudatus) sperm and thermal shocks. Optimum UV range for inactivation of cyprinid loach sperm was between 3,150 to $4,050\;ergs/mm^2$ The UV-irradiated sperm were inseminated into eggs from recessive color strain (yellow) or heterozygous transgenic mud loach containing CAT gene. Cold shock at $2^{\circ}C$ for 60 min, 5 min post fertilization successfully restored the diploidy of eggs inseminated with UV-irradiated sperm. Restoration to diploidy was confirmed by flow cytometry and gynogenetic status was verified by examining maternal exclusive inheritance of multi-locus DNA fingerprints, body color and transgenic marker. Putative isogenic transgenic fish clearly showed homozygous status at trans gene locus based on Southern blot hybridization and progeny testing. Further, such homozygous gynogenetic diploids revealed the increased levels of transgene expression, when compared to those of heterozygous (hemizygous) transgenic fish.
Park, Sang-Yong;Lee, Yoon-A;Nam, Yoon-Kwon;Bang, In-Chul
Journal of Aquaculture
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v.20
no.3
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pp.184-189
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2007
Treatment conditions for the induced diploid gynogenesis, a maternal-exclusive form of artificial parthenogenetic reproduction, were optimized in bagrid catfish (Leiocassis ussuriensis, Siluriformes). Optimal amounts of ultraviolet (UV) irradiation for the genetic inactivation of spermatozoa in bagrid catfish and Pseudobagrus fulvidraco were proven to be ranged from 3,600 to 4,800 $ergs/mm^2$ based on the examination of viability of embryos and haploid incidence. Haploid embryos were restored to diploidy by preventing the extrusion of the second polar body using cold shock treatment. Thermal treatments (4 or $6^{\circ}C$ for 30, 40 or 50 min) were carried out 3, 5 or 7 min post insemination. Best scores for embryo viability (38.6% of total eggs taken) and incidence of normal diploidy (87.9% of hatched larvae) were observed at the embryo group treated at $4^{\circ}C$ for 40 min, 5 min after insemination. Restoration of gynogenetic diploidy was confirmed based on the absence of haploid syndrome, cell size and/or nucleolar organizing region (NOR) counts.
Mitotic gynogenesis was induced in the far eastern catfish, Silurus asotus using UV-irradiated heterospecific sperm and cold shock treatment. Eggs were activated with the sperm of mud loach, Misgurnus mizolepis which has been irradiated with UV at dose of 9,000 ergs/$mm^2$. To determine the optimum duration required to prevent the first cleavage, a cold shock at 4$^{\circ}C$ with duration of 20, 30 or 40 min was applied to the eggs 50 min after activation. To induce diploidization of mitogenesis, the most effective protocol was to apply cold shock to 50-min old (after activation) eggs at 4$^{\Circ}C$ for 30min.
Present study was aimed to summary the recent reports of chromosomal technology such like a polyploidv, sex differentiation, gynogenesis, transgenic fish and gene manipulation. Triploid cells for rainbow trout and channel catfish were induced through thermal shocks of varying temperature levels and produced as a industrial use. A monosex fish with homogametic females of 15 species of high valued fish were produced by exposing to irradiation. It seemed that different irradiation was suitable to inactivate the sperm and block the formation in producing the gynogenetic diploids. Since 1985, transgenic fish have been successfully produced by microinjecting or electroporating desired foreign DNA into unfertilized or newly fertilized eggs using about 40 fish species. More recently, transgenic fish have also been produced by infecting newly fertilized eggs with pantropic, defective retroviral vectors carrying desired foreign DNA. These transgenic fish can serve as excellent experimental models for basic scientific investigations as well as in marine biotechnological applications.
Kim Dong Soo;Choi Yoon Hee;Noh Choong Hwan;Nam Yoon Kwon
Journal of Aquaculture
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v.8
no.4
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pp.295-306
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1995
The present study was performed to produce supermales and superfemales in Oreochromis niloticus by combination of induced sex reversal and diploid gynogenesis. More than $95\%$ of female was obtained by oral administration of $17\beta-estradiol$ (480 mg/kg diet) to the eutheroembryonic larvae of this species. The result of progeny tests with XY pseudofemales showed that incidences of male progeny were ranged from $71.4\%\;to\;73.7\%$. p.opo.lion of male from XY pseudofemale was not significantly different (P>0.05) from that of $\chi^2$ (1:3), but it was significantly different (P<0.01) from that of $\chi^2$(1:1) Gynogenetic diploids were produced by applying cold shocks 3 min after insemination to the eggs of XY pseudofemale sperms were genetically inactivated by ultraviolet rays of 4,050 $erg/mm^2$. Fertilization rates of gynogenetic diploids were not different from that of their controls, however, hatching rates and early survival rates were silghtly lower than those of controls. In the cytogenetic studies, there was no difference in the size of cell and nucleus between the gynogenetic diploids and the controls. At 80 days after hatching, frequencies of gynogenetic male were higher than those of gynogenetic female (P<0.01) in their population.
This study was conducted to increase the efficiency of farming practice in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, by sex reversal and chromosome-set manipulation techniques. To obtain phenotypic males, hormonal sex reversal was carried out using an exogenous hormone treatment method. 5 mg of 17 alpha-methyltestosterone per kg diet was supplied for 82 days after first feeding at $10^{\circ}C$ and $13^{\circ}C$. More than 93% of the male population was produced by this method and growth of hormone-treated fish at $13^{\circ}C$ was faster than that of untreated bi-sexual groups. Induced diploid gynogenesis was carried out using artificial insemination of UV-irradiated sperm into haploid eggs. Based on the appearance of the rate of haploid syndrome and survival of embryo, a UV ray dose of at least $3,600\;erg/cm^2$ was required to inactivate rainbow trout sperm genetically. Haploid embryos were restored to diploid by blocking the extrusion of the second polar body using heat shock treatment at $28^{\circ}C$ for 20 min, 10 min post insemination. Gynogenetic diploid sex ratios were confirmed after maturation of the fish erythrocyte measurements and chromosome counts.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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