A gene(GeneBank AF 135796) coding for a trehalose synthase from Thermus caldophilus GK24 was cloned into Escherichia coli K12 using five vector systems. The constitutive expression system(pHCETS) which shows the highest trehalose synthase activity from flask culture of recombinant E. coli was selected for the production of trehalose from maltose. For the shake flask culture, the final dry cell weight was 0.9 g/L and the trehalose synthase activity was 25 U/mL. Fed-batch culture of recombinant E. coli harboring plasmid pHCETS which uses the glycerolas a carbon source was performed in jar fermentor: the dry cell weight of 20 g/L and the trehalose synthase activity of 13.7 U/mL were attained in 48 h.
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.17
no.1
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pp.21-34
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1982
One hundred and twenty-one strains each of Escherichia coli isolated from stools of 60 patients who received various antimicrobial drugs in hospital for more than one week and apparently healthy 60 students who have no history of taking antimicrobial drugs during recent one month, were tested for their resistance to 13 antimicrobial drugs. The frequency of resistance strains was highest to tetracycline with 69.2%, and followed by streptomycin(Sm), sulfisomidine(Su), chloramphenicol(Cm), ampicillin(Ap), and carbenicillin(Cb) in the decreasing order, ranging from 61.2% to 39.3%. Strains resistant to kanamycin(Km), cephaloridine(Cr), and trimethoprim(Tp) occupied about one-fourth of strains, and only four strains were resistant either one or more of nalidixic acid, gentamicin and amikacin, and no strain was resistant to rifampicin. The frequency of resistant strains to Cm, Ap, Km, Cr, and Cb was much higher among patient isolates than student strains, but strains resistant to the other drugs showed almost the same frequencies between patient and student isolates. There was a marked difference in average minimum inhibitory concentrations of between resistant and susceptible strains, suggesting that the resistance to drugs is the plasmid origin. Seventy-six percent of strains were resistant to one to 10 drugs tested, and no much difference was observed between strains from patients and students. However, strains resistant to four or more drugs were much more frequently found among patient isolates than student strains, with the increasing tendency of multiply resistant strains among patient isolates following the increase in the number of resistant drugs. The transfer of drug resistance by conjugation was tested and 98 strains(67.5%) among 145 which were resistant to two or more drugs were found to transfer their drug resistance to E. coli. Among 74 strains resistant to 7 or more drugs, all except one transferred the resistance, and the number of strains with transferable resistance decreased, as the number of resistant drugs decrease. A R plasmid from randomly selected p13 strain was tested for the incompatibility group, and the plasmid was classified into Inc F II. R plasmM DNA bands were identified by polyacrylamide gel electrophoresis.
Importance: Antimicrobial resistance (AMR) is a serious public health threat. AMR bacteria and their resistance determinants in food can be transmitted to humans through the food chain and by direct contact and disseminate directly to the environment. Objective: This study examined the AMR characteristics and transferable R plasmids in Escherichia coli isolated from meat ducks raised in an open-house system. Methods: One hundred seventy-seven (n = 177) commensal E. coli were examined for their antimicrobial susceptibilities and horizontal resistance transfer. The plasmids were examined by PCR-based plasmid replicon typing (PBRT) and plasmid multi-locus sequence typing (pMLST). Results: The highest resistance rate was found against ampicillin (AMP, 83.0%) and tetracycline (TET, 81.9%), and most isolates exhibited multidrug resistance (MDR) (86.4%). The R plasmids were conjugally transferred when TET (n = 4), AMP (n = 3), and chloramphenicol (n = 3) were used as a selective pressure. The three isolates transferred resistance genes either in AMP or TET. The blaCTX-M1 gene resided on conjugative plasmids. Five replicon types were identified, of which Inc FrepB was most common in the donors (n = 13, 38.4%) and transconjugants (n = 16, 31.2%). Subtyping F plasmids revealed five distinct replicons combinations, including F47:A-:B- (n = 2), F29:A-:B23 (n = 1), F29:A-:B- (n = 1), F18:A-B:- (n = 1), and F4:A-:B- (n = 1). The chloramphenicol resistance was significantly correlated with the other AMR phenotypes (p < 0.05). Conclusions and Relevance: The meat ducks harbored MDR E. coli and played an important role in the environmental dissemination of AMR bacteria and its determinants. This confirms AMR as a health issue, highlighting the need for routine AMR monitoring and surveillance of meat ducks.
A plasmid expression vector of pEStxl encoding a mature form of the B chain of the Shiga toxin was constructed without a signal peptide under the control of an inducible n promoter. The encoded protein was purified to 90% by simple heat treatment, and then further purified to 95% by Phenyl-Sepharose and DEAE-Sepharose chromatographies, all in a single day. Accordingly, this expression system and heat treatment could facilitate the rapid purification of gram-scale amounts of the Shiga toxin B subunit from recombinant Escherichia coli cells.
An enzymatic reaction for the production of D-alanine from D-aspartic acid and pyruvate as substrates by a thermostable D-amino acid aminotransferase (D-AAT) was investigated at various conditions In the temperature range of 40-70$\^{C}$ and pH range of 6.0-9.5. The D-AAT was produced with recombinant E. coli BL21, which hosted the chimeric plasmid pTLK2 harboring the D-AAT from the novel thermophilic Bacillus sp. LK-2. The enzyme reaction was shown to follow the Ping Pong Bi Bi mechanism. The K$\_$m/ values for D-aspartic acid and pyruvate were 4.38 mar and 0.72 mM, respectively. It was observed that competitive inhibition by D-alanine, the product of this reaction, was evident with the inhibition constant K$\_$i/ value of 0.1 mM. A unique feature of this reaction scheme is that the decorboxylation of oxaloacetic acid, one of the products, spontaneously produces pyruvate. Therefore, only a catalytic amount of pyruvate is necessary for the enzyme conversion reaction to proceed. A typical time-course kinetic study skewed that D-alanine up to 88 mM could be produced from 100 mM of D-aspartic acid with a molar yield of 1.0.
Importance: Carbapenem-resistant Enterobacteriaceae are emerging as a global public health risk. Therefore, assessing the prevalence of carbapenem-resistant Escherichia coli (CRE) in both humans and animals is important. Objective: We aimed to ascertain the occurrence and characteristics of CRE isolated from companion animals, dogs and cats. Methods: E. coli strains were tested for antimicrobial susceptibility using the broth microdilution technique. Antimicrobial resistance genes were detected by polymerase chain reaction and sequencing analysis. The molecular characteristics of CRE were determined using multi-locus sequence typing, replicon typing, and pulsed-field gel electrophoresis (PFGE). Results: In total, 13 CRE isolates (0.13%) were identified from dogs possessing blaNDM-5 along with β-lactamase genes, mostly blaCMY-2 (92.2%) and blaTEM-1 (53.8%). The commonly observed mutations were S83L and D87N in gyrA, S80I in parC, and S458A in parE. CRE carried non-beta-lactam resistance genes, with the majority being tet(B) (100%), sul (84.6%), and aac(3)-II (53.8%). Nine different PFGE patterns (P1-P9), IncX3-type plasmids (69.2%), and ST410 (84.6%) were predominantly detected. Conclusions and Relevance: This investigation provides significant insight into the prevalence and molecular characteristics of blaNDM-5-carrying E. coli in dogs. The co-existence of blaNDM-5 and other antimicrobial resistance genes in E. coli potentially poses severe health hazards to humans.
YANG HYE-YOUNG;CHOI SI-SUN;CHI WON-JAE;KIM JONG-HEE;KANG DAE-KYUNG;CHUN JAESUN;KANG SANG-SOON;HONG SOON-KWANG
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.5
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pp.1125-1129
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2005
Cloning of a 6.6-kb BamHI digested chromosomal DNA from S. griseus IFO13350 revealed the presence of an additional gene encoding a novel trypsin-like enzyme, named SprU. The SprU protein shows a high homology ($79\%$ identity, $88\%$ similarity) with the SGT protease, which has been reported as a bacterial trypsin in the same strain. The amino acid sequence deduced from the nucleotide sequence of the sprU gene suggests that SprU is produced as a precursor consisting of an amino-terminal presequence (29 amino acid residues), prosequence (4 residues), and mature trypsin consisting of 222 amino acids with a molecular weight of 22.94 kDa and a calculated pI of 4.13. The serine, histidine, and aspartic acid residues composing the catalytic triad of typical serine proteases are also well conserved. When the trypsin activity of the SprU was spectrophotometrically measured by the enzymatic hydrolysis of the artificial chromogenic substrate, N-${alpha}$-benzoyl-DL-arginine-p-nitroanilide, the S. lividans transformant with pWHM3-U gave 3 times higher activity than that of control. When the same recombinant plasmid was introduced into S. griseus, however, the gene dosage effect was not so significant, as in the cases of other genes encoding serine proteases, such as sprA, sprB, and sprD. Although two trypsins, SprU and SGT, have a high degree of homology, the pI values, the gene dosage effect in S. griseus, and the gene arrangement adjacent to the two genes are very different, suggesting that the biochemical and biological function of the SprU might be quite different from that of the SGT.
Streptavidin, a protein produced by Streptomyces avidinii, strongly binds up to four molecules of vitamin H, d-biotin exhibiting the dissociation constant of about 10−15 M. This strong binding affinity has been applied for detection and characterization of numerous biological molecules suggesting expression and purification of functional streptavidin should be very useful for the application of this streptavidin-biotin interaction. To express a soluble streptavidin in Escherichia coli, We synthesized streptavidin genes and cloned into pET-22b plasmid, which uses T7 RNA polymerase/T7 promoter expression systems containing pelB leader for secretion into periplasmic space and six polyhistidine tags at C-terminus for purification of expressed proteins. Although streptavidin is toxic to Escherichia coli due to strong biotin binding property, streptavidin was expressed very sufficiently in a range of 10-20 mg/ml. In SDS-PAGE, the size of purified protein was shown as 17 kDa in denatured condition (boiling) and 68 kDa in native condition (without boiling) suggesting tetramerization of monomeric subunit by non-covalent association. Further analysis by size-exclusion chromatography supported streptavidin’s tetrameric structure as well. In addition, soluble streptavidin detected biotinylated proteins in westernblot indicating its functional activity to biotin. Taken these results together, it concluded that our simple expression system was able to show high yield, homotetrameric formation and biotin binding activity analogous to natural streptavidin.
In this report, several factors such as infection time and concentration of bacterial suspension, influencing on transient gene expression in Agrobacterium-mediated transformation were evaluated. An appropriate concentration (O.D 600nm = 1.0-1.2) of bateria and 30 min of infection time showed a higher level of GUS expression. To improve transformation efficiency (TE), friable embryogenic calli (FEC) were bombarded by tungsten particles without plasmid DNA, and then co-cultivated with A. tumefaciens LBA4404 which contains pTOK233 super binary vector, carrying neomycin phosphotransferase (NPTII), hygromycin phosphotransferase (hpt) and$\beta-glucuronidase$ (GUS) genes. Three days after co-cultivation with A. tumefaciens and particle bombardment, FEC cultures were transferred to the selection medium (SM: MS medium supplemented with BA 1mg/l, hygromycin 100mg/l, cefotaxime 250 mg/l and vancomycin 200mg/l). They were cultured for 2 weeks and then transferred to the second SM containing hygromycin 50mg/l, cefotaxime 200 mg/l and vancomycin 100mg/l. Later, stable GUS expression was detected 4 to 6 weeks after transfer to the SM. Further, TE from Agrobacterium-mediated transformation after particle bombardment increased to about 3-folds compared with Agrobacterium-mediated transformation without particle bombardment. In the present study, we established an efficient transformation protocol of zoysiagrass by using A. tumefaciens in the combination with particle bombardment for the first time.
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.27
no.1
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pp.17-27
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2001
A cell-based assay system for monitoring NF-$textsc{k}$B activity was developed to determine the influence of activated NF-$textsc{k}$B in human HaCaT cells. The pNF-$textsc{k}$B-SEAP-NPT plasmid that permits expression of the secreted alkaline phosphatase (SEAP) reported gene in response to the NF-$textsc{k}$B activity and contains neomycin phosphotransferase (NPT) gene for the geneticin resistance in host cells was constructed and transfected into human keratinocyte cell line HaCaT. Human HaCaT transfectant cells secreted the SEAP enzyme into the culture medium in a time-dependent manner until 72h. NF-$textsc{k}$B activities were measured in the SEAP reporter gene assay using a fluorescent detection method. The treatment of HaCaT cell transfectants with known antioxidants [e.g., N-acetyl-L-cysteine and vitamin C] showed inhibition of NF-$textsc{k}$B activity in a time-and concentration-dependent manner. The phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) known as a stimulator of NF-$textsc{k}$B expression demonstrated that it increased NF-$textsc{k}$B activity in a time- and concentration-dependent manner. This assay system could be used to determine the quantitative measurement of NF-$textsc{k}$B activity in the human skin and allow the screening of anti-inflammatory agents from various synthetic chemicals and natural products for dermatological purpose. Abbrevitions used: NF-$textsc{k}$B, nuclear factor kappa B; I-$textsc{k}$B, Inhibitory kappa B; SEAP, secreted alkaline phosphatase; NPT, neomycin phosphotransferease; PCR, polymerase chain reaction: dNTP, deoxynucleoside triphosphates; DMEM, dulbecco’s modified eagle medium; FBS, fetal bovine serum; PBs, phosphate-buffered saline; MUP, 4-methylumbellifery phosphate; NAC, N-acetyl-L-cysteine; DMSO, dimethyl sulfoxide; PMA, phorbol 12-myristate 13-acetate.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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