To enhance the embryo preservation technology and better application of embryo transfer technique to the field (dairy science or animal reproduction. etc.), we examined the viabilities of bovine embryos produced in vitro and in vivo after cryopreservation according to their developmental stage and thawing temperature. Bovine embryos from in vivo/vitro fertilization (Hanwoo) were examined at day 7, 8, and 9. Survival rates and total cell numbers of in vivo fertilized embryos were as follows: morulae 68.8% and $67\;{\pm}\;6.0$; blastocysts 80.5% and $120\;{\pm}\;10$; expanded blastocysts 77.4% and $138\;{\pm}\;9.7$, respectively. Rates of embryo development for blastocysts and expanded blastocysts after thawing were significantly higher than that of morula stage embryos (p<0.05). While survival rates of in vitro fertilized embryos according to developmental stage showed no significant difference among groups (morula 67.9%; blastocyst 74.3%; and expanded blastocyst 79.4%), total cell numbers were significantly lower than those of other groups (morula $64\;{\pm}\;5.9$; blastocyst $116\;{\pm}\;8.7$; and expanded blastocyst $135\;{\pm}\;9.1$) For the viability according to thawing temperature, survival rate was higher in $37^{\circ}C$.
This experiment was arried out to investigate the development of ea4y rabbit embryos in vivo. Twenty-six New Zealand White does were superovulated by treatment with PMSG(Intervet Co; I. M single injection, 150. U./rabbit) followed 3 day later by simultaneous I.V injection of 100 I.U HCG (Intervet Co, )and natural service with fertile male. All of does was killed at the specific times (24, 27, 30, 36, 42, 50 and 93 h post-hCG) to find out the early embryonic development in vivo respectively. Embryos at the specified stages of development were obtained at the following times after injection of hCG; one-ceH at 24 h, two-cell at 24~27h, four-cell at 27~36 h, morulae at 50 h and early blasto-cyst at 93 h and expanded or hatching blastocyst at 144 h. Number of embryos recovered per rabbit superovulated was 26.1 and average of recovery rate was 83.7%. The results suggest that superovulation was efficient for the increase of embryo number in rabbits, and as shown in results, asynchronous cleavage was prevalent among the recovered embryos.
The present study was to assess the in vitro viability and sexing rate of bovine embryos. Blastocysts were harvested on day 7~9 day after insemination(in vitro and in vivo), and the sex of the embryos was examined using the LAMP method. Embryo cell biopsy was carried out in a $80{\mu}l$ drop $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$ free D-PBS and, biopsied embryos viability were evaluated after more 12 h culture in IVMD culture medium. The formation of recovered embryo to expanded and hatching stages had ensued in higher of sexed embryo in vivo than in vitro (100% vs. 89%, p<0.05), and in vitro, the rates of degeneration after sexing were significantly (p<0.05) higher in vitro than in vivo(11% vs. 0.0%). The rates of the predicted sex were female 61% vs. 56%, and male 39% vs. 44% in vivo and in vitro, respectively. The rates of survival following different biopsy methods were seen between punching and bisection method in vivo and in vitro (100% vs. 89% and 100% vs, 78% respectively). Biopsy method by punching was significantly (p<0.05) higher than bisection between produced embryos in vivo and in vitro. The present data indicate that with microblade after punching for embryo sexing results in high incidence of survivability on development after embryo biopsy. It is also suggested that LAMP-based embryo sexing suitable for field applications.
Adaptive development of early stage embryo is well established and recently it is explored that the mammalian embryos also have adaptive ability to the stressful environment. However, the mechanisms are largely unknown. In this study, to evaluate the possible role of aquaporin in early embryo developmental adaptation, the expression of aquaporin (AQP) 5 gene which is detected during early development were examined by the environmental condition. To compare expression patterns between in vivo and in vitro, we conducted quantitative RT-PCR and analyzed localization of the AQP5 by whole mount immunofluorescence. At in vivo condition, Aqp5 expressed in oocyte and in all the stages of preimplantation embryo. It showed peak at 2-cell stage and decreased continuously until morula stage. At in vitro condition, Aqp5 expression pattern was similar with in vivo embryos. It expressed both at embryonic genome activation phase and second mid-preimplantation gene activation phase, but the fold changes were modified between in vivo embryos and in vitro embryos. During in vivo development, AQP5 was mainly localized in apical membrane of blastomeres of 4-cell and 8-cell stage embryos, and then it was localized in cytoplasm. However, the main localization area of AQP5 was dramatically shifted after 8-cell stage from cytoplasm to nucleus by in vitro development. Those results explore the modification of Aqp5 expression levels and location of its final products by in vitro culture. It suggests that expression of Aqp5 and the roles of AQP5 in homeostasis can be modulated by in vitro culture, and that early stage embryos can develop successfully by themselves adapting to their condition through modulation of the specific gene expression and localization.
본 연구는 기존의 수정란 이식기술을 다각적으로 분석하고 개선하여 한우 체내수정란의 생산 및 이식기술 체계를 확립하기 위하여 수행하였으며, 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. 배란에 미치는 FSH analogue 간의 유의성은 인정되지 않았으나 수정률, 이식 가능 수정란 및 동결수정란 생산에는 처리간에 유의성(P<0.05)이 인정되었다. 특히, Super-OV는 Foll-tropin-V 및 Embryo-S에 비해서 이식 가능 수정란의 생산율이 유의적(P<0.01)으로 낮았다. 2. 호르몬의 투여시기에 따라 공란우의 배란정도 (P<0.1), 수정률, 이식 가능 및 동결 가능 수정란의 생산(P<0.05)은 각각 유의적인 차이를 나타냈다. 특히, 발정주기 11일차의 호르몬투여는 적합하지 않은 결과를 보였다. 3. 다배란처리후 황체의 등급에 따른 수정란의 수는 좌측 또는 우측에서 6개 이상의 황체를 보인 A등급(8.06∼9.49개)의 경우가 B, C 및 D등급(2.93 ∼6.28개)보다 유의적(P<0.01)으로 높았다
수정란의 성 판별은 유전적으로 우수한 유전형질을 보유하고 있는 소의 수정란을 성 판별하므로서 희망하는 성의 송아지를 생산할 수 있으며, 부가가치가 높은 수정란을 확보할 수 있는 기술이다. 수정란의 손상을 최소화하면서 할구를 biopsy하는 기술을 개발하고, 간단하고 빠른 시간에 성 판별이 가능한 Loop-mediated isothermal amplification방법으로 수정란을 성 판별을 실시한 결과는 다음과 같다. 1. 한우 체내 수정란의 성비는 암컷이 $56.5\%$, 수컷이 $43.5\%$였고, 체외 수정란은 암컷이 $49.2\%$, 수컷이 $33.9\%$였다. 그리고, 젖소 체외 수정란의 성비는 암컷이 $29.2\%$, 수컷이 $70.8\%$를 나타내어 한우 체내 및 체외 수정란보다 젖소 체외수정란의 수컷비율이 유의적으로 높게 나타내었다(p<0.05). 또한, 한우 체외 수정란에서 성 판별이 불가능한 것이 $16.9\%$를 나타내어 한우 체내 수정란 및 젖소 체외 수정란과는 유의적인 차이를 나타내었다.(P<0.05). 2. Biopsy한 체내 수정란의 체외 발달율은 $100\%$였으나 체외 수정란에서는 정상적으로 발달하지 못하고 퇴화된 수정란이 $13.2\%$로 체내 수정란보다 유의적으로 높은 결과를 나타내었다.(P<0.05). 3. Punching 방법으로 수정란의 biopsy 후 정상적으로 발달하지 못하고 퇴화된 수정란은 체내 및 체외 수정란에서는 없었으나 biopsy 방법으로 biopsy한 수정란은 체내 및 체외 수정란에서 각각 $16.7\%$ 및 $22.6\%$를 나타내어 Punching 방법보다 유의적으로 높은 결과를 나타내었다(P<0.05). 이상의 결과로 보아 한우 체내 수정란은 LAMP방법을 이용하여 간단하고 신속하게 성 판별이 가능하며, 수정란의 biopsy는 punching 방법이 수정란에 손상을 적게 주는 것으로 사료된다.
We investigated the cleavage rate and blastocyst yield for each culture condition to enhance tolerance of cryo-preservation of bovine IVF embryo with relatively lower cryo-tolerance compared to in vivo embryo. The cleavage rate and blastocysts yield for CR1aa, IVMD, IVD, CR1aa+10% FBS were 73.2, 69.3, 72.8, 68.5% and 44.1, 30.8, 33.3, 48.0%, respectively. The values did not differ among each treatments without serum. For embryo vitrification, In vivo and In vitro blastocysts were exposed to VS1(10% glycerin, 0.1 M glucose, 0.1 M sucrose, PEG 1%) for 5 min, and VS2 (10% glycerin, 10% EG, 0.2 M glucose, 0.2 M sucrose, PEG 2%) for 5 min and then VS3 (10% glycerin, 30% EG, 0.3 M glucose, 0.3 M sucrose, PEG 3%) for 1 min. The exposed embryos were then loaded into the 0.25 ml plastic straws and then plunged into liquid nitrogen. The straws were held for period of 1 to 2 weeks before thawing. In embryo viability, no differences in blastocyst re-expansion rates were found between in vivo and in vitro embryos. whereas expansion-BL rates was significantly higher for in vivo-derived embryos (72.7%) when compared to in vitro-derived embryos (51.4%), respectively (P<0.05). In conclusion, our results indicate that combined use of CRIaa culture medium with vitrification might enhance tolerance of cryopreservation for bovine IVF embryo production.
The objective of this study was to investigate the comparison of transferable embryos and pregnancy rate between Hanwoo and Chickso. The results obtained were as follows: No differences were observed in the efficiency of superovulation rates on Hanwoo 78%, and Chickso 85%, respectively. The mean number of total embryos are each $14.76{\pm}2.16$ and $6.23{\pm}1.07$. So the mean number of transferable embryos are each $10.94{\pm}1.91$ and $4.58{\pm}1.05$. In addition, the mean number of total Hanwoo embryo from <10 and $10{\leq}$ of corpora luteum was $0.50{\pm}0.50$, $11.56{\pm}1.92$, respectively. In case of Chickso, The mean number of transferable embryo from <10 and $10{\leq}$ of CL was $2.75{\pm}1.39$, $6.00{\pm}1.00$, respectively. The pregnancy rates were Hanwoo 40%, and Chickso 37% following transfer of fresh embryos produced in vivo. Also, the pregnancy rates of Chickso 60% were significantly greater (p<0.05) than the Hanwoo 42.48% following transfer of following transfer of frozen embryos, respectively. In conclusion, these results suggest that Chickso may be effectively used for transferable embryos production in Hanwoo. Although the transferable embryos number was not enough, it seems the Chickso greatly affect pregnancy rate. The results indicated that the possibility of transferable embryos from Chickso for embryo transfer could be confirmed in this study. Based on the present findings, it was suggested that it is very important to evaluate in vivo embryo production and pregnancy rate of embryo transfer following superovulation for effective Hanwoo and Chickso production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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