Kim, Ji-Su;Koo, Deog-Bon;Song, Bong-Suk;Gabbine Wee;Choo, Young-Kug;Lee, Kyung-Kwang;Han, Yong-Mahn
Proceedings of the KSAR Conference
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2004.06a
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pp.240-240
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2004
The modification of in vitro maturation (IVM) conditions should be required to efficient production of matured porcine oocyte in vitro. Estradiol-17β (E₂) as steroid hormone exists in ovarian follicular fluid and plays a major role in ovulation. It has been reported that estradiol as well as other steroids are involved in keeping the oocytes in meiotic arrest. (omitted)
Morshed, S.M. Niyaz;Bhuiyan, Mohammad Musharraf Uddin;Rahman, Mohammad Moshiur;Singha, Joydev Kumer;Juyena, Nasrin Sultana
Journal of Embryo Transfer
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v.29
no.3
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pp.201-206
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2014
The objectives of the study were to determine an effective culture dish, culture duration and protein supplementation in medium for in vitro maturation (IVM) of oocytes of native zebu cows in Bangladesh. The ovaries of cows were collected from local slaughterhouse followed by aspiration of follicular fluid. The cumulus-oocyte-complexes (COCs) with more than 3 compact cumulus cell layers were cultured in tissue culture medium (TCM) 199 for maturation. The maturation of oocytes was determined by observing polar body under microscope. To determine an effective culture dish, 130 COCs derived from 48 ovaries in a well of 4-well dish and 102 COCs derived from 36 ovaries in drops covered with mineral oil within 35 mm petri dish were cultured for 24 hours. The rate of maturation of oocytes did not vary between 4-well dish ($51.3{\pm}15.0%$) and drops in petri dish ($52.4{\pm}11.6%$). To determine the effective culture duration, 185 COCs derived from 62 ovaries were cultured in drops for 18, 21, 24 and 27 hours. The rate of maturation of occytes ranged from $51.9{\pm}9.4%$ (18 hours) to $59.0{\pm}17.1%$ (27 hours) and the difference in maturation rate among different culture durations was not significant (P>0.05). To determine an effective protein supplementation, 63 oocytes from 19 ovaries were cultured separately in TCM 199 supplemented with either fetal bovine serum (FBS) or bovine serum albumin (BSA). The rate of maturation was significantly (P<0.01) higher in medium supplemented with FBS ($55.63{\pm}16.19%$) than that of BSA ($14.82{\pm}9.36%$). In conclusion, COCs of native zebu cows can be cultured for IVM either in 4-well culture dish or droplets in petri dish for 18 to 27 hours in medium supplemented with FBS.
Tsuzuki, Y.;Duran, D.H.;Kuroki, Y.;Uehara, F.;Ashizawa, K.;Fujihara, N.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.11
no.3
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pp.307-310
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1998
The present studies were undertaken to evaluate the effects of a low concentration of dimethyl-sulfoxide (DMSO) on in vitro maturation and development of bovine oocytes fertilized in vitro. Significantly more oocytes reached the metaphase stage of the second meiotic division in TCM-199 supplemented with $50{\mu}M$ DMSO than in the control medium (p < 0.05), and the highest rates of development up to the blastocyst stage were obtained when $50{\mu}M$ DMSO was added to the maturation and culture media (p < 0.05). The avarage of cell numbers of the blastocysts, expanded and hatched blastocysts cultured with $50{\mu}M$ DMSO were 81.7, 125.7 and 129.9 cells, respectively. The proportion of blastocysts with normal chromosome numbers was 90.5%. These results suggest that the addition of $50{\mu}M$ DMSO is beneficial for the maturation of bovine oocytes and production of the blastocysts with high quality.
In this study, to improve the in vitro development of various cells including cloned embryos, the effects that isoproterenol and melatonin have on in vitro development of porcine parthenogenetic oocytes were investigated. Parthenogenetic activation was induced with electrical stimulation, BSA and 6-DMAP treatment. $10^{-7}M$ of melatonin and isoproterenol ($10^{-10}$, $10^{-12}$ and $10^{-14}M$) were supplemented for in vitro maturation (IVM) and in vitro culture (IVC) medium, with different concentrations. When isoproterenol and melatonin were supplemented in IVM medium with different concentrations, there was no significant (P<0.05) difference of maturation rate in the treatment groups as well as in that of only melatonin. As isoproterenol and melatonin were supplemented in IVM medium with different concentrations, blastocyst rates of isoproterenol $10^{-12}M$ treatment group (37.1%) were significantly (P<0.05) higher than control group (26.0%). Isoproterenol and melatonin were supplemented in IVC medium with different concentrations, then the cleavage rate of $10^{-12}M$ isoproterenol treatment group (82.2%) was significantly (P<0.05) higher than the group that melatonin was only supplemented (70.9%). There was no difference of blastocyst rate between the treatment groups. When isoproterenol and melatonin were supplemented for IVM+IVC medium with different concentrations, the cleavage rate of $10^{-12}M$ isoproterenol treatment group (92.5%) was significantly (P<0.05) higher than the control group (82.8%) and the group that melatonin was only treated (81.6%). The blastocyst rate of $10^{-12}M$ as 45.6% was significantly (P<0.05) higher than control group (25.2%) and melatonin treatment group (31.2%). The cell number of blastocyst in $10^{-12}M$ isoproterenol treatment group $35.5{\pm}3.4$ was significantly (P<0.05) highest. The results of this study showed that the development rate of IVC when both isoproterenol and melatonin were supplemented was higher than when melatonin was only supplemented. Therefore, it is concluded that isoproterenol is rather effective in the activation of melatonin. $10^{-7}M$ melatonin and $10^{-12}M$ isoproterenol were considered suitable concentration.
We determined the effects of follicular fluid fractions in the maturation medium on bovine oocyte maturation, fertilization and subsequent development, as well as on number of cells in blastocysts following culture. Follicular fluid and oocytes from bovine follicles less than 5 mm in diameter were collected from the ovaries of slaughtered cows. Follicular fluid was separated into different molecular weight fractions by untrafiltration through a membrane using a centrifuge at 500$\times$g, for 2h. For the maturation medium, follicular fluid fractions (30%, v/v), whole fluid (30%) or PVP(3mg/ml) were added to TCM 199(0.1$\mu\textrm{g}$/ml estradiol-17$\beta$, 100IU hCG). After maturation for 24h, oocytes were fertilized in vitro with bull frozen-thawed spermatozoa and cultured on a monolayer of granulosa cells for 9 days after fertilization. There were no differences in maturation rates or fertilization rates among any maturation conditions. The rates of development to >2-cell stage of the oocytes were significantly decreased when fraction of follicular fluid below 10,000 MW were added into maturation medium, compared with control and fraction above 10,000 MW(26.0% vs 40.8% to 64.0%, respectveily. p<0.01). Likewise, the rates of development to blastocysts of fertilized oocytes were significantly decreased in maturation medium containing fraction of follicular fluid (<10,000 MW). The average cell number of blastocysts derived from oocytes that matured in the fraction(>10,000 MW) of follicular fluid was 154.7$\pm$13.7. These embryos contained more cells than those matured in whole follicular fluid, or the fraction(<10, 000 MW) of follicular fluid or control(107.0$\pm$8.4, 91.8$\pm$11.8 and 95.8$\pm$6.2, respectively). In conclusion, we found that fractions of follicular fluid contained factors stimulating or inhibiting oocyte cytoplasmic matruation. These suggest that a factor(s) inducing cytoplasmic maturation of oocytes may exist in >10,000 MW fraction of follicular fluid.
This study was conducted to find out the effect of follicle size and oocyte type on in vitro maturation of poricine follicular oocytes. TCM-HEPEAS medium was used to basic medium, and the oocyte matured in vitro was stained with the Rapid staining method. The results obtained were summarized as follows; 1. The number of follicles an ovary was 20.5. The number of A-and B-typed oocytes an ovary was 2.34. The proportion of A-and b-types oocytes was 40% of the recovery oocytes. 2. Cumulus expanison indexes(CEI) by the follicle size were 1.62∼2.34(<2mm), 1.27∼2.28(2∼5mm) and 1.46∼2.75(>5mm). It was no differ to maturation rate by the follicle size. 3. The degree of oocyte maturation based on oocyte type did not differ for B-and C-typed oocyted but the index of oocyte type A was higher than that of b-and C-typed oocytes. 4. When follicluar oocytes were cultured for 42 hours, the proportion of the Met-II(second metaphase) stage were 22.5% (degree 1), 35.4%(degree 2) and 65.5% (degree 3).
This experiment was carried out to investigate the effects of different IVM-IVC culture media factors, such as development rates according to the maturation media, collecting times from slaughter to initiation of incubation and with cumulus cells, on in vitro maturation of oocytes collected from 3∼5mm diameter follicles of the swine abattoir The development rates significantly(p<0.05) higher when the oocytes were matured TCM-199 media than NCSU-23 media. In comparing with TCM199 medium in presence of Earle's salts and Hank's salt, there were no significantly differences between each salt balance in cleaved rate and in number of morulae plus blastocyst. Among 1,455 immature oocytes, 999(68.6%) of oocytes were cleaved. The number of development to the morulae and blastocysts were 617(61.8%) include 62 balstocysts(6.2%).
This study was performed to investigate the effect of VEGF on in vitro maturation of porcine oocytes. The base medium for IVM, TCM-199 was supplemented with 0.6 mM cysteine, 0.91 mM pyruvate, 10 ng/ml epidermal growth factor, $75{\mu}g/ml$ kenamycin, $1{\mu}g/ml$ insulin and 10% (V/V) porcine follicular fluid (pFF) as a Group A; Group B was consists of Group A plus 5 ng/ml VEGF; Group C was consists of replacement of pFF by 10% PVA and Group D: was consists of Group C plus 5 ng/ml VEGF. 1. The maturation rate was significantly higher (p<0.05) in control and VEGF+pFF group than other two groups ($76.1{\pm}9.6,\;78.9{\pm}6.0\;vs\;60.4{\pm}14.2\;and\;58.3{\pm}14.3$, respectively). 2. Addition of VEGF without pFF showed a negative effect on oocytes maturation and about 58.26% oocytes were reached to M-II stage. 3. In the parthenogenetic development, the cleavage rate was significantly higher (p<0.05) in control and VEGF+pFF group ($73.2{\pm}1.8\;and\;64.6{\pm}1.1$, respectively) than other groups ($47.9{\pm}1.8\;and\;48.3{\pm}1.7$, respectively). 4. The blastocyst formation rate was significantly higher (p<0.05) in VEGF+pFF group ($32.6{\pm}2.4$) compared to control and other groups. 5. There was no significant difference in cell numbers (inner cell mass or trophectoderm) among these groups.
Sphingosine-1-phosphate (S1P) has a many function involved proliferation, differentiation and survival of many cells. In this study, to investigate whether S1P improve the developmental competence of porcine embryos, 50 nM of S1P were supplemented during in vitro maturation (with EGF or without EGF) medium and/or in vitro culture (IVC) medium. Addition of S1P was significantly increased the rate of oocytes reaching metaphase II (MII) compared to the control (83.5 vs. 64.1%) in without EGF medium, but not with EGF medium (89.5 vs. 84.6%). When treated with $1{\mu}M$ of N1N-dimethylsphingosine (DMS), a sphingosine kinase inhibitor which is blocked endogenous generation of S1P, the meiotic progression rates to MII stage (without EGF: 45.2 and with EGF: 66.7%) were significantly decreased and degeneration rates (without EGF: 51.2 and with EGF: 30.1%) were increased in both medium compared to control group during IVM periods. Also, the rates of blastocyst formation was significantly increased in the S1P treated group compared to control group (29.0 vs. 19.2%) of EGF supplemented medium, whereas there were no effect in the EGF free medium (9.0 vs. 10.5%). After 12 h IVM, the phosphorylation of ERK1 and ERK2, which is major signaling pathway of MAP kinase, were increased in the S1P group than that of control or DMS group. When supplemented of S1P during IVC, the rates of blastocyst formation and total cell number (30.2% and 40.6) were significantly increased in S1P-treated group compared with control (20.1% and 32.5), DMS (12.3% and 25.1), and S1P plus DMS group (24.7% and 33.6). The percentage of apoptosis nuclei in the S1P group was significantly decreased than other groups. Also, the rates of blastocyst formation (26.7 vs. 14%) and total cell number (42.8 vs. 32.5) were significantly increased in the S1P group than those of control group when S1P added during the entire IVM and IVC periods. Taken together, our results indicate that S1P supplementation in IVM and/or IVC medium affects beneficial effect of meiotic maturation and subsequent developmental competence of porcine embryos.
In most mammals, metaphase II (MII) oocytes having high maturation promoting factor (MPF) activity have been considered as good oocytes and then used for assisted reproductive technologies including somatic cell nuclear transfer (SCNT). Caffeine increases MPF activity in mammalian oocytes by inhibiting p34cdc2 phosphorylation. The objective of this study was to investigate the effects of caffeine treatment during in vitro maturation (IVM) on oocyte maturation and embryonic development after SCNT in pigs. To this end, morphologically good (MGCOCs) and poor oocytes (MPCOCs) based on the thickness of cumulus cell layer were untreated or treated with 2.5 mM caffeine during 22-42, 34-42, or 38-42 h of IVM according to the experimental design. Caffeine treatment for 20 h during 22-42 h of IVM significantly inhibited nuclear maturation compared to no treatment. Blastocyst formation of SCNT embryos was not influenced by the caffeine treatment during 38-42 h of IVM in MGCOCs (41.1-42.1%) but was significantly improved in MPCOCs compared to no treatment (43.4 vs. 30.1%, P<0.05). No significant effects of caffeine treatment was observed in embryo cleavage (78.7-88.0%) and mean cell number in blastocyst (38.7-43.5 cells). The MPF activity of MII oocytes in terms of p34cdc2 kinase activity was not influenced by the caffeine treatment in MGCOCs (160.4 vs. 194.3 pg/ml) but significantly increased in MPCOCs (133.9 vs. 204.8 pg/ml). Our results demonstrate that caffeine treatment during 38-42 h of IVM improves developmental competence of SCNT embryos derived from MPCOCs by influencing cytoplasmic maturation including increased MPF activity in IVM oocytes in pigs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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