The first morphogenetic event of preimplantation development, compaction, was required efficient production of porcine embryos in vitro. Compaction of the porcine embryo, which takes place at post 4-cell stage, is dependent upon the adhesion molecule E-cadherin. The E-cadherin through ${\beta}$-catenin contributes to stable cell-cell adhesion. Rho-associated kinase (ROCK) signaling was found to support the integrity of E-cadherin based cell contacts. In this study, we traced the effects of ROCK-1 on early embryonic development and structural integrity of blastocysts in pigs. Then, in order to gain new insights into the process of compaction, we also examined whether ROCK-1 signaling is involved in the regulation of the compaction mediated by E-cadherin of cellular adhesion molecules. As a result, real-time RT-PCR analysis showed that the expression of ROCK-1 mRNA was presented throughout porcine preimplantation stages, but not expressed as consistent levels. Thus, we investigated the blastocyst formation of porcine embryos treated with LPA and Y27632. Blastocysts formation and their qualities in LPA treated group increased significantly compared to those in the Y27632-treated group (p < 0.05). Then, to determine whether ROCK-1 associates embryonic compaction, we explored the effect of activator and/or inhibitor of ROCK-1 on compaction of embryos in pigs. The rate of compacted morula in LPA treated group was increased compared to that in the Y27632-treated group (39.7 vs 12.0%). Furthermore, we investigated the localization and expression pattern of E-cadherin at 4-cell stage porcine embryos in both LPA- and Y27632-treated groups by immunocytochemical analysis and Western blot analysis. The expression of E-cadherin was increased in LPA-treated group compared to that in the Y27632-treated group. The localization of E-cadherin in LPA-treated group was enriched in part of blastomere contacts compared to that Y27632-treated group. ROCK-1 as a crucial mediator of embryo compaction may plays an important role in regulating compaction through E-cadherin of the cell adhesion during the porcine preimplantation embryo. We concluded that ROCK-1 gene may affect the developmental potential of porcine blastocysts through regulating embryonic compaction.
The calcium-binding proteins (CaBP), parvalbumin (PV) and calbindin-D 28K (calbindin) are particularly abundant and specific in their distribution, and present in different subsets of neurons in many brain regions. Although their physiological roles in the neurons have not been elucidated, they are valuable markers of neuronal subpopulations for anatomical and developmental studies. This study is designed to characterize dorsal lateral geniculate nucleus (dLGN) neurons and axon terminals in terms of differential expression of immunoreactivity (IR) for two well-known CaBPs, PV and calbindin. The experiments were carried out on 6 adult monkeys. Monkeys were perfused under deep Nembutal anesthesia with 2% paraformaldehyde and 0.2% glutaraldehyde in 0.1M phosphate buffer. After removal, the brains were postfixed for 6-8 hr in 2% paraformaldehyde at $4^{\circ}C$ and infiltrated with 30% sucrose at $4^{\circ}C$. Thereafter, they were frozen in dry ice. Serial sections of the thalamus, at $20{\mu}m$, were made in the frontal plane with a sliding microtome. The sections were stained for PV and calbindin with indirect immunocytochemical methods. For electron microscopy, after infiltration with 30% sucrose the blocks of thalamus were serially sectioned at $50{\mu}m$ with a Vibratome in the coronal plane and stained immediately by indirect ABC methods without Triton X-100 in incubation medium. Stained sections were postfixed in 0.2% osmium tetroxide, dehydrated and flat-embedded in Spurr resin. The block was then trimmed to contain only a selected lamina or interlaminar space. The dLGN proper showed strong PV IR in fibers in all laminae and interlaminar zones. Particularly dense staining was noted in layers 1 and 2 that contain many stained fibers from optic tract. Neuronal cell body stained with PV was concentrated only in the laminae. In these laminae staining was moderate in cell bodies of all large and medium-sized neurons, and was strong in cell bodies of some small neurons together with their processes. Calbindin IR was marked in the neuronal cell body and neuropil in the S layers and interlaminar zones whereas moderate in the neuropil throughout the nucleus. Regional difference in distribution of PV and calbindin IR cell is distinct; the former is only in the laminae and the latter in both the S layer and interlaminar space. The CaBP-IR elements were confined to about $10{\mu}m$ in depth of Vibratome section. The IR product for CaBP was mainly associated with synaptic vesicle, pre- and post-synaptic membrane, and outer mitochondrial membrane and along microtubule. PV-IR was noted in various neuronal elements such as neuronal soma, dendrite, RLP, F, PSD and some myelinated or unmyelinated axons, and was not seen in the RSD and glial cells. Only a few neuronal components in dLGN was IR for calbindin and its reaction product was less dense than that of PV, and scattered throughout cytoplasm of soma of some relay neurons, and was also persent in some dendrite, myelinated axons and RLP. The RSD, F, PSD and glial elements were always non-IR for calbindin. Calbindin labelled RLP were presynaptic to unlabeled dendrite or dendritic spine and PSD. Calbindin-labeled dendrite of various sizes were always postsynaptic to unlabeled RSD, RLP or F. From this study it is suggested that dLGN cells of different functional systems and their differential projection to the visual cortex can be distinguished by differential expression of PV and calbindin.
This study was performed to investigate the immunohistochemical and ultrastructural characterization of the choline acetyltransferase (ChAT)-immunoreactive nerve cells in the diagonal band of Broca of the rat basal forebrains, utilizing techniques of immunohistochemical and immunocytochemical microscopy. The ChAT-immunoreactivities were shown within neuronal cell bodies and processes by the light micoscope. According to cell shape and ratio of long axis vs short axis of cell body, the ChAT-immunoreaclive nerve cells in both vertical and horizontal limbs of the diagonal band of Broca were classified into 6 types. at the light microscopic level; round, oval, elongated, fusiform, triangular and polygonal types. As a result of the electron microscopic observation, the ChAT-immunoreactivated products appeared on the outer nuclear envelope, membranes of rough endoplasmic reticula (rER), free ribosomes and polysomes. Each cell type was subdivided into subtype I and II according to the several criteria such as volume of cell body, nuclear size relative to the cytoplasm, kinds and distribution of cell organelles and numbers and sorts of synapses. The subtype I of immnunoreactive nerve cells had large cell body and a small nucleus showing shallow indentations of nuclear evelope. In this subtype I with abundant cytoplasm, rER were well differentiated. Their long cisternae were parallelly ditributed and lamellated. One or two lamellar bodies and nematosomes were observed. The subtype II cell had small cell body and a large nucleus with deep indentations of nuclear envelope. In this subtype II with small cytoplasm, the rER were irregularly distributed and the lamellar body and nematosome were not found. A few axosomatic synapses in the subtype I and II were shown to be symmetric or asymmetric. The ratios of the symmetric synapse to the asymmetric one were investigated to be 1 : 2 and 1 : 4 in the subtype I and II, respectively. The axodendritic ones were almost asymmetric. But, the fusiform and triangular immunoreactive nerve cells were shown only to be subtype I. According to observations in this study, it is considered that the ultrastructural characterization in the 2 subtypes of each cell type may reflect the differences of the metabolic activities and projecting distances to the target cells.
The objective of the present studies was to develop and validate a system for isolation, purification and extended culture of pigment-producing cells in alpaca skin (melanocytes) responsible for coat color and to determine the effect of alpha melanocyte stimulating hormone treatment on mRNA expression for the melanocortin 1 receptor, a key gene involved in coat color regulation in other species. Skin punch biopsies were harvested from the dorsal region of 1-3 yr old alpacas and three different enzyme digestion methods were evaluated for effects on yield of viable cells and attachment in vitro. Greatest cell yields and attachment were obtained following dispersion with dispase II relative to trypsin and trypsin-EDTA treatment. Culture of cells in medium supplemented with basic fibroblast growth factor, bovine pituitary extract, hydrocortisone, insulin, 12-O-tetradecanolphorbol-13-acetate and cholera toxin yielded highly pure populations of melanocytes by passage 3 as confirmed by detection of tyrosinase activity and immunocytochemical localization of melanocyte markers including tyrosinase, S-100 and micropthalmia-associated transcription factor. Abundance of mRNA for tyrosinase, a key enzyme in melanocyte pigment production, was maintained through 10 passages showing preservation of melanocyte phenotypic characteristics with extended culture. To determine hormonal responsiveness of cultured melanocytes and investigate regulation of melanocortin 1 receptor expression, cultured melanocytes were treated with increasing concentrations of ${\alpha}$-melanocyte stimulating hormone. Treatment with ${\alpha}$-melanocyte stimulating hormone increased melanocortin receptor 1 mRNA in a dose dependent fashion. The results demonstrated culture of pure populations of alpaca melanocytes to 10 passages and illustrate the potential utility of such cells for studies of intrinsic and extrinsic regulation of genes controlling pigmentation and coat color in fiber-producing species.
Kim, Sung-Joo;Kim, Yong-Kuk;Sun, Yuan-Jie;Kim, Soo-Jin;Jeong, Young-Gil;Yu, Yun-Cho;Jo, Seung-Mook
Applied Microscopy
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v.32
no.4
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pp.377-383
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2002
We have detected the murine zinc transporter, ZnT3, and zinc ions in the mouse choroid plexus by immunocytochemistry (ICC) and zinc selenium autometallography ($ZnSe^{AMG}$), respectively. BALB/c mice served as experimental animals. Routine floating ABC immunocytochemical procedures were used for the ZnT3 immunocytochemistry, and the mice were injected intraperitoneally (i.p.) with sodium selenide (10 mg/kg) for the zinc selenium autometallography. The choroid plexus showed weak immunoreactivity (Ir) for ZnT3. At high magnification, ZnT3-Ir was seen to be located in the choroid epithelium and the connective tissue of the capillaries. At the EM level, a high electron density of ZnT3-immunoreactivity was restricted to vesicle membranes as well as microvilli in the apical membrane. In contrast, immunostaining of ZnT3 was completely absent in the basolateral plasma membrane and other cell organelles. After silver enhancement, fine $ZnSe^{AMG}$ grains were observed in both the epithelial and endothelial cells of the choroid plexus. Few $ZnSe^{AMG}$ grains present in the cell bodies of the choroid epithelial cells were located in multivesicular bodies. It is striking that very many $ZnSe^{AMG}$ grains were observed in the endothelial cells of the capillaries. These findings establish the choroid plexus as a non-neuronal pool of zinc ions in the brain, although the functional significance of this pool is not clear. The choroid epithelium, however, may play an important role in the transportation of zinc between the CSF and brain tissue.
Purpose: The objective of this study was to investigate the visual system of the greater horseshoe bat (Rhinolophus ferrumequinum) by location analysis of some major neurotransmitters glutamate, ${\gamma}$-aminobutyric acid (GABA), acetylcholine, and their receptors, and $m{\ddot{u}}ller$ glial cells in retina. Methods: Standard immunocytochemical techniques were used after vibratome section of retinal tissues of adult greater horseshoe bat for this study. Immnoreactions in immunofluorescence images were analyzed using confocal microscope. Results: Anti-glutamate-immunoreactive neurons were mainly localized in the ganglion cell layer (GCL). The majority of anti-GABA-immunoreactive cells distributed in the inner nuclear layer (INL), and GABAA receptors were localized in the inner plexiform layer (IPL). Anti-choline acetyltransferase-immuoreactive cholinergic neurons were mainly located in the INL and GCL, and most of nicotinic acetylcholine receptors were localized in the IPL. The $m{\ddot{u}}ller$ cells in the retina of the greater horseshoe bat stretched theirs range from the GCL to outer nuclear layer (ONL). Conclusions: This study revealed that the retinas of the greater horseshoe bats contain the same major neurotransmitters and receptors, and glial cell in visually functional mammalian retinas. The present results may suggest that the greater horseshoe bats have the functional retinas for visual analysis through the organized retinal neural circuits.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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