The present experiments on cryopreservation were designed to examine the effects of solution toxicity, equilibration time and cell stages on the post-thaw survival of bovine IVF embryos. The oocytes were matured in vitro(IVM) for 24 hrs. in TCM-199 supplemented with 35 $\mu$g /ml FSH, 10 $\mu$g /ml LH, 1 $\mu$g /ml estradiol-17$\beta$ and granulosa cells at 39$^{\circ}C$ under 5% $CO_2$ in air. They were fertilized in vitro(IVF) by epididymal spermatozoa treated with heparin for 24 hrs., and then the zygotes were co-cultured in vitro(IVC) with bovine oviductal epithelial cells for 7 to 9 days. The bovine IVF embryos were exposed to the EFS solution in one step at room temperature, kept in the EFS solution during different period for toxicity test, vitrified in liquid nitrogen, and thawed rapidly. 1. after the bovine blastocysts were exposed to EFS solution for 2 min. at room temperature and then they were washed in 0.5 M sucrose solution and TCM-199, they were cultured to examined cryoprotectant induced injury during exposure, Most of the embryos(95.0%) developed to reexpanded blastocoels. However, when the exposure time was extended to 5 and 10 min, these development rates dropped dramatically in 5 min. (69.5%) and 10 min. (47.4%), respectively, 2. When the bovine IVF embryos were vitrified in EFS solution after the equilibration for 1 and 2 min. exposure, The embryos to have reexpanded blastocoels following thawing, washing and culture processes were found to he 82.6 and 73.9%, respectively. However, when the exposure time was extended to 3 min, this survival rate dropped to 18.2%. The optimal time for equilibration of bovine IVF blastocysts in EFS solution seemed to he 1~2 min. 3. When the bovine IVF embryos were equilibrated for 1 min. the significantly (P<0. 05) higher post-thaw survival rates were obtained from the embryos of blastocyst stage(81.3%) than morulae stage(5. 1%). The optimal cell stage for viterification with EFS solution proven to he blastocyst stage in bovine IVF embryos. 4. The number of blastomeres of blastocyst stage was examined with nuclear staining with Hoechst 33342 during 7 to 9 days post-insemination. The cell counts of frozen bovine IVF embryos were found significantly(P$\geq$7.5 and those of the fresh embryos 76.6$\geq$7. 1, which were cultured in the sarne period and conditions as frozen embryos.
This study was undertaken in an effort to product embryos through in vitro maturation(IVM), in vitro fertilization(IVF) and in vitro culture(IVC) after cryopreservation of immature and mature porcine oocytes. The experiments were conducted to investigate IVM rate of oocytes frozen with 3 different cryoprotectants and to examine IVF and IVC of frozen-thawed oocytes. The CEI(cumulus cells expansion index) after IVM of frozen-thawed immature oocytes was higher in oocytes frozen with PG+PEG(propylene glycol plus polyethylene glycol) than those frozen with single cryoprotectant and this index was almost 90% of unfrozen oocyte's index(2.39 vs. 2.66). The IVF rate of all frozen oocytes was very low(68% of unfrozen oocytes) and the IVF rate of frozen immature oocytes was slightly higher than that of frozen mature oocytes(39.0% vs. 34.4%), but polyspermic penetration was higher in frozen immature oocytes(21.9% vs. 19.1%). The cleavage rate after IVF of frozen-thawed oocytes was 9.3% for frozen mature oocytes and 11.3% for frozen immature oocytes and this rate was significantly lower(P<0.05) than that of control(60.7%). The development to 8-cell stage was greatly lower in frozen mature oocytes than in frozen immature oocytes. The results indicate that the use of PG plus PEG as cryoprotectant may be very effective for vitrification of porcine oocytes and the frozen-thawed immature porcine oocytes can be used fro in vitro embryo production based on IVM, IVF and IVC system.
The objective of this study was to investigate the effects of cell status of BOEC on development of bovine IVM/IVF embryos and gene expression in BOEC before or after culturing of embryos. The developmental rates beyond morula stage in the BOEC co-culture group was significantly higher than in the control group (p<0.05). In particular, blastocyst production in the BOEC co-culture group (28.3%) was dramatically increased compared with the control group (7.2%). In the in vitro development of bovine IVM/IVF embryos according to cell status, the developmental rates beyond morula stage in the primary culture cell (PCC) co-culture group were the highest of all experimental groups. Expression of genes related to growth (TGF-${\beta}$ EGF and IGFBP), apoptosis (Bax, Caspase-3 and p53) and antioxidation (CuZnSOD, MnSOD, Catalase and GPx) in different status cells of BOEC for embryo culture was detected by RT-PCR. While EGF gene was detected in isolated fresh cells (IFC) and PCC, TGF-${\beta}$ and IGFBP were found in IFC or PCC after use in the embryo culture, respectively. Caspase-3 and Bax genes were detected in all experimental groups regardless of whether the BOEC was used or not used in the embryo culture. However, p53 gene was found in IFC of both conditions for embryo culture and in frozen/thawed culture cells (FPCC) after use in the embryo culture. Although antioxidant genes examined were detected in all experimental groups before using for the embryo culture, these genes were not detected after use. This study indicated that the BOEC co-culture system used for in vitro culture of bovine IVF embryos can increase the developmental rates, and cell generations and status of BOEC might affect the in vitro development of bovine embryos. The BOEC monolayer used in the embryo culture did not express the growth factors (TGF-${\beta}$ and EGF) and enzymatic antioxidant genes, thereby improving embryo development in vitro.
본 연구는 EGF가 체외성숙과 수정에 의해 생산된 소 수정란의 발달과 inner cell mass (ICM)와 trophectoderm (TE) 세포수에 미치는 영향 및 공동배양시의 첨가효가를 조사하고 그와 더불어 간적면역 형광법을 이용하여 EGF-R 단백의 발현 유무를 조사하기 위해 실시하였다. 그 결과를 요약하면 다음과 같다. EGF 1, 10, 100 ng/ml의 농도로 처리되었던 4-세포기와 8-세포기 배는 대조군에 비하여 유의차는 인정되지 않았으나 양호한 배반포기 배 발달과 ICM과 TE 세포수 증가 양상을 나타내었다. 특히, 발달단계에 따른 EGF (10ng/ml) 효과를 조사하였던 바, 8-세포기 이후 배에서 대조군에 비하여 배반포기까지 유의한 배 발달을 유도하는 것을 확인할 수 있었지만 (p<0.05), ICM과 TE 세포수 증가에는 유의한 영향을 미치지 못하는 것을 알 수 있었다. 또한, 간접 면역 형광에 의한 EGF-R의 발현 유무를 조사한 결과, EGF-R는 4-세포기 이후에 발현되며 그 강도는 발달단계가 진행되면서 다양하게 나타난다는 것을 알 수 있었다. 한편, 수정란과 난구세포 공동배양 군은 EGF의 첨가 유무에 상관없이 대조군에 비하여 유의한 배 발달과 총세포수의 증가를 나타내며, 공동배양군에 대한 EGF 첨가는 수정란과 난구세포와의 공동배양 효과를 증진시키는 것으로 나타났다. 따라서, EGF는 착상전 소 수정란의 4-세포기 이후에 발현디는 EGF-R에 반응하여 배 발달을 유기하고, 공동배양시의 배 발달에 유용한 물질형성을 촉진시키지만, 배반포기 배의 ICM과 TE 세포수 증가에는 유의한 영향을 나타내지 못한다는 것을 알 수 있었다.
This study was conducted to establish an in vitro maturation (IVM) system by selection of efficient macromolecule in the porcine in vitro production (IVP) technology. To choose the efficient macromolecules in the development of porcine embryos, the effects of 3 kinds of macromolecules (porcine serum; PS, porcine follicular fluid; pFF, and polyvinyl alcohol; PVA) supplemented in IVM media on the maturation, cleavage, and development rates to blastocyst of parthenogenetic activation (PA) and in vitro fertilization (IVF) embryos were examined. The maturation rates of porcine oocytes in media supplemented with PS were significantly higher than those with pFF and PVA (92.4% vs. 85.4%, 77.1%; p<0.05). In the cleavage and development to blastocyst rates, supplement with PS or pFF in the IVM media was more effective than PA. However, there were no significant differences in cleavage and development to blastocyst between PS and pFF group. From the results of this study, it was demonstrated that PS was optimal macromolecule in the porcine IVM media.
This study was designed to evaluate the efficacy of antioxidants and amino acid with buffalo rat liver cell(BRLC), bovine oviductal epithelial cell(BOEC) and STOC monolayers in supporting the development of in vitro matured(IVM) and in vitro fertilized(IVF) bovine oocytes. Bovine embryos developed to the 2~8 cell stage after in vitro fertilization were cultured for 5 to 6 days at 39$^{\circ}C$ in CR1aa containing antioxidants and amino acids with various somatic cells. Embryo development was examined and cell numbers of blastocysts were counted by fluorescence staining method. In experiment 1, the proportion of embryos that reached the blastocyst stage in control, catalase(250U), SOD(600U), glutathione(100$\mu$M) and taurine(2.5mM) with BRLC were 11.4, 8, 0, 16.7 and 43.4 respectively. Taurine(2.5mM) with BRLC group was significantly the highest among treatments(P<0.05). In experiment 2, in vitro development rate into blastocyst in control, catalase(250U), SOD(600U), glutathione(100$\mu$M) and taurine(2.5mM) with BOEC were 15.8, 23.5, 22.8, 28.6 and 56.9 respectively. In experiment 3, embryonic development in all treatments as control, catalase(250U), SOD(600U), glutathione(100$\mu$M) and taurine(2.5mM) added to CR1aa with STO cells were 23.5, 24.5, 17.0, 28.8 and 50.0 blastocysts. These results show that antioxidants and amino acids with somatic cells can provide a significant benefit for coculture of early bovine embryos derived from IVM and IVF.
This study was carried out to investigate the effects of gonadotropins added during maturation of porcine oocytes on the in vitro maturation(IVM), in vitro fertilization(IVF) and developmental potential of embryos. The follicular oocytes were cultured in TCM-199 medium containing different combination of gonadotropins(5$\mu$g /ml FSR or 1OIU /ml PMSG and 1O$\mu$g /ml LH or 1OIU /ml hCG), 10% FCS and 10% PFF for 36~48h in a incubator with 5% $CO_2$ in Air at 39$^{\circ}C$ and then matured oocytes were again cultured to 120h after IVF for 6~7h with heparin(100$\mu$g /m')-treated sperm. When the oocytes were matured for 42brs in the medium containing FSH+LH, FSH+hCG, PMSG+LH or PMSG+hCG, the JVF rate of each treatment was 50.0%, 52.9%, 66.7% and 70.0%, respectively. The highest CEI (cumulus cell expansion index) was obtained from PMSG+hCG-added medium and the highest polyspermic penetration resulted from FSH+LH-added medium. The cleavage of IVF oocytes derived from hormone added IVM was significantly(P<0.05) promoted by PMSG+hCG and the cleavage rate after 36-h, 42-h and 48-h maturation aws 53.0%, 56.7% and 45.6%, respectively. The highest developmental potential resulted from the oocytes derived from PMSG+LH -added IVM.
본 연구는 돼지의 미성숙 난포란을 체외에서 성숙, 수정시킨 후, 생산된 체외수정란을 NCSU 23 체외배양액에 항산화제NAC, ebselen 및 glutathione)와 BSO의 첨가가 돼지 체외수정란의 체외발육에 미치는 영향을 검토하였다. Glutathione 합성억제제인 BSO가 돼지수정란의 체외발육에 미치는 영향을 검토한 결과 0, 1.0 및 5.0 mM의 BSO을 첨가한 구에서 상실배기 이상 발육된 체외발육성적은 각각 35.9, 15.7 및 8.4%로서 BSO 첨가구가 대조구에 비해 통계적으로 유의하게 낮은 체외배율성적을 나타냈으며(P<0.05), NAC 1.0 mM ebselen 10 $\mu\textrm{m}$ 및 glutathione 100 $\mu\textrm{m}$ BSO 1.0 mM을 첨가하여 배양한 결과 상실배 이상 발육된 체외발육율은 40.5, 44.2, 36.0 및 10.9%로서 항산화제 첨가구가 BSO 첨가구보다 통계적으로 유의하게 높은 체외발육성적을 나타냈다P<0.05). 체외수정후 생산된 배반포기 수정란의 세포수는 BSO 농도(0, 1 및 5 mM)에 따른 차이는 인정되지 않았으나, 항산화제를 첨가한 경우에는 ebslene, NAC 및 glutathione 첨가구가 BSO 첨가구보다 유의하게 높은 세포수을 나타냈다(P<0.05).
The effect of thiol compounds on development and intracellular glutathione(GSH) concentrations of bovine embryos produced by in vitro maturation and in vitro fertilization(IVM/IVF) was examined in CRlaa medium with or without $\beta$-mercaptoethanol(0, 10, 25 and 50$\mu$MME) and cysteamine(0, 25, 50 and 75 $\mu$M). Numbers of cells comprising blastocysts were also counted using double fluorescence stain and the total glutathione levels(oxidized and reduced form) of morula and blastocyst embryos were than measured by an enzymatic method. Following routine IVM/IVF procedures oocytes and zygotes were cultured for 40 to 44h in CRlaa medium. Then 2 to 8-cell embyos had cumulus cell removed and were allotted randomly to the experimental medium. In Experiment 1, the proportion of embryos developing to and beyond morulae stages in 0, 10, 25 and 50 $\mu$M $\beta$-ME was 42.9%, 50.0%, 53.7% and 65.6%, respectively. Fifty $\mu$M $\beta$-ME group was significantly higher than those of any other groups (P<0.05). In Experiment 2, the percentages of embryos developed beyond morulae stages in 0, 25, 50 and 75 $\mu$M cysteamine was 42.9%, 40.4%, 60.0% and 59.2%, respectively. Fifty and 75$\mu$M cysteamine groups were significantly higher than in 0 and 25 $\mu$M cysteamine groups, but all of culture medium containing cysteamine(52.6%) was not significantly difference in control group(42.9%). In Experiment 3, the intracellular GSH concentrations of morulae and blastocyst embryos in 0 and 50 $\mu$M $\beta$-ME was 42.4 pM and 44.9 pM, 49.5 pM and 67.8 pM, respectively. Morulae embryos were not difference, but blastocyst embryos were significantly difference between treatments(P<0.05). In Experiment 4, the intracellular GSH concentrations of morulae in CRlaa with or without cysteamine were 39.8 pM and 45.6 pM, and blastocysts were 59.3 pM and 66.8 pM, respectively. Cell numbers of blastocysts were similar to in all experimental groups. These experiments indicate that thiol compounds can increase the proportion of embryos that developing to and beyond morulae stage and the intracellular GSH concentrations.
Park, Sae-Young;Kim, Deok-Im;Tae, Jin-Cheol;Kim, Deok-Im;Park, Sae-Young;Kim, Eun-Young;Lee, Won-Don;Park, Sepill;Lim, Jin-Ho
한국동물번식학회:학술대회논문집
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한국동물번식학회 2004년도 춘계학술발표대회
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pp.201-201
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2004
In this study we examined whether vitrified Hanwoo (Korean cattle) IVM/IVF/IVC blastocysts can survive in vitro/in vivo by a quick one-step dilution method and these embryos result in live births. Blastocysts produced in vitro were vitrified by serial exposure to glycerol (G) and/or ethylene glycol (EG) mixtures of 10% (v/v) G for 5 min, 10% G plus 20% EG (v/v) for 5 min, and 25% G plus 25% EG (v/v) for 30 see. (omitted)
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[게시일 2004년 10월 1일]
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