Jang H. Y.;Cheong H. T.;Kim C. I.;Park C. K.;Yang B. K.
Reproductive and Developmental Biology
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v.29
no.2
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pp.133-139
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2005
Oxidative stress is one of the major causes of failure in in vitro storage of boar semen. Reactive oxygen species (ROS) are known to be important mediators of such stress. The present study examined the effects of pyruvate and taurine on sperm motility and expression of BAD, Cytochrome c, Caspase-3 and Cox-2 protein in in vitro storage of boar semen, and tested the effect of semen treated with antioxidant with or without hydrogen peroxide on the development of IVM/IVF porcine embryos. Semen samples were transported to the laboratory at $17^{\circ}C$ within 2 hr after collection and were treated with different concentration of pyruvate $(1\~10mM)$ and taurine $(25\~100mM)$ with or without 250uM $H_2O_2$ respectively. The supplementation of pyruvate and taurine increased sperm motility in boar semen during in vitro incubation at $37^{\circ}C$. Expression of apoptosis protein (BAD, cytochrome c, caspase-3 and cox-2) were reduced in the group of boar semen treated with pyruvate and taurine when compared to the other groups. The developmental rates of IVM/IVF porcine embryos fertilized by semen treated with pyruvate and taurine were significantly increased when compared to control (P<0.005). These results indicate that supplementation of pyruvate and taurine as antioxidants in boar semen extender can improve the semen quality and increase in vitro development of porcine IVM/IVF embryos when boar semen treated with antioxidants was used for in vitro fertilization.
The present study was carried out to examine the effect of superoxide dismutase (SOD) on in vitro maturation (IVM) of porcine follicular oocytes and oxygen concentration with SOD on in vitro development (IVD) of porcine IVM/IVF embryos. The results were summarized as follows : 1. The rates of nuclear maturation, penetrated oocytes, polyspermic oocytes and mean numbers of the penetrated sperm were not different in the NCSU-23 maturation media with 0, 100, 500 and 1,000 units/ml SOD. However. the pronucleus formation rates were significantly lower in oocytes matured with addition groups than those of no addition groups of SOD (P>0.05). 2. The rates of blastocyst formation and total cell numbers of blastocyst at day 7 after in vitro fertilization were significantly lower in addition groups than those of the no addition groups of SOD (P>0.05). 3. The rates of blastocyst formation at day 7 after in vitro fertilization were higher in the NCSU-23 culture medium with 100 units/ml SOD than in those cultured with 0, 500 and 1,000 units/ml SOD under the 5% and 20% $O_2$concentrations. However, no differences was found in the total cell numbers of blastocyst among the treatments. In conclusion, these results suggested that the addition of SOD was not adequate for porcine oocyte maturation and further development, also the rates of blastocyst formation and total cell numbers of blastocyst at day 7 of porcine IVM/IVF embryos were not different in the NCSU-23 culture medium under the 5% and 20% $O_2$concentrations.
The present study was carried out to examine the effect of catalase (CAT) on in vitro maturation (IVM) of porcine follicular oocytes and oxygen concentration with CAT on in vitro development (IVD) of porcine IVM/IVF embryos. The results were summarized as follows - 1 . The rates of nuclear maturation, penetrated oocytes, pronucleus formation rates, polyspermic oocytes and mean numbers of the penetrated sperm were significantly lower in oocytes matured with 100, 500 and 1,000 units/ml CAT than those of central groups (P>0.05). 2. The rates of blastocyst formation and total cell numbers of blastocyst at day 7 after in vitro fertilization were significantly lower in CAT treatment groups than those of the central groups (P>0.05). 3. There were not significant difference in the blastocyst development and total cell numbers of blastocyst on in vitro culture of NCSU-23 media with 0, 100, 500 and 1000 units/ml CAT under the 5% and 20% $O_2$ concentrations. These results suggested that the addition of CAT was not helpful for porcine oocyte maturation and further development, also the rates of blastocyst formation and total cell numbers of blastocyst at day 7 of porcine IVM/IVF embryos were not significantly different in the NCSU-23 culture medium under the 5% and 20% $O_2$ concentrations.
This study was conducted to improve the in vitro maturation(JVM), in vitro fertilization (IVF) and in vitro developmental capacity of oocytes derived from slaughtered Korean native cattle. The recoverd oocytes, obtained from a local slaughter house, were used completely surrounded by at least 3 layers of cumulus cells in combination with a homogeneous cytoplasmic pigmentation. In vitro maturation was induced in TCM-199 or Ham's F-10 supplemented with LH(1O $\mu$g/rnl), FSH(35 $\mu$g/ml), estradiol-17$\beta$(1 $\mu$g/ml) at 39$^{\circ}C$ under 5% $CO_2$ in air for 24 hours. Sperm from caudal epididyrnis and previously matured cumulus-oocytes complexes were cultured for 24 hours in 100 $\mu$l droplets of fertilization media under paraffin oil. The zygotes were cultured with media(TCM-199 with bovine oviductal epithelial cells or CRlaa) for 7 to 10 days. The cleavage rate of IVM-IVF oocytes was significantly (P<0.05) higher following maturation using Ham's F-10 (59.9%) than TCM-199 (51.6%). Development to the blastocysts among cleaved embryos was not signficantly different between maturation media: Ham's F-10 (16.0%) and TCM-199(11.9%). However, the hatching rate was affected significantly (P<0.05) on rnaturation media as 62.9% in Ham's F-10, compared with 41.2% in TCM-199. The cleavage rate of IVM-IVF oocytes was significantly (P<0.05) higher following IVF using m-TALP medium (80.1%) than BO medium (51.6%). The percentage of in vitro developed blastocysts among cleaved embryos was not signficantly different between fertimization media: BO (11.7%) and m-TALP (17.6%). The cleavage and the developmental rate to the blastocysts after IVF in m-TALP or condition medium(CM) with or without oviduct epithelial cell monolayer(OECM) was similar(80.1% and 17.6% in m-TALP, 83.8% and 19.4% in M-TALP with OECM. 82.9% and 18.9% in CM, 87.6% and 16.0% in CM with OECM, respectively). The percentage of in vitro developed blastocysts among cleaved embryos was significantly (P<0.05) higher in TCM-199 medium co-cul tured with bovine oviduatal epithelial cell monolayers(35.2%) than CRlaa medium(1.9%). These results stggest that the most transferable IVF embryos could be produced from Ham's F-10, m-TALP and TCM-199 medium with bovine oviductal epithelial cell monolayers for IVM, IVF and IVC, respectively.
The objective of this study was to develop an effective in vitro production system capable of obtaining more porcine embryos from immature oocytes. These experiments were thus conducted to examine the effect of oocytes type and maturation time on the in vitro maturation(IVM) and fertilization(IVF) of oocytes and the in vitro development (IVD)of IVF embryos. 1. The degree of oocyte maturation based on cumulus expansion index(GEI) did not differ for A- and B-typed oocytes but the index of oocyte type C was lower(P<0.05) than that of other oocyte types. 2. When the oocytes of type A and B were matured for 36, 42 and 48hrs, the GEl was not different between the 36- and 42-h maturation but the GEl after 48hrs was greatly lower(P<0.05) than that of other maturation times. 3. The highest cleavage rate(48.6%) of IVF oocytes was obtained from A typed oocytes and 42-h maturation but the developmental potential based on cleavage index was the highest when B-typed oocytes were matured for 42hrs.
Over the years, the embryo transfer industry has grown from the simple collection & transfer of embryos into an advanced field of embryo biotechnology. Currently a large demand exists for bovine oocytes and early embryos in both research and commercial settings. Bovine embryos can now be produced in-vitro. Primary oocytes collected from antral follicles of abattoir - obtained ovaries can be induced to undergo the maturation process. In-vitor maturation system, however must ensure that the resulting oocyte is capable of undergoing normal fertilization and yields a zygote competent of developing to term after embryo transfer. Sperm preparation for IVF has improved with the use of heparine. The use of co-culture system has proved beneficial in circumventing the developmental block in IVM/IVF bovine embryos.
This study was carried out to examine the effects of nitric oxide compounds (hemoglobin and L-NAME) on the development of porcine in vitro maturation (IVM) and in vitro fertilization (IVF) oocytes. Cumulus cell free embryos derived from porcine IVM/IVF oocytes were cultured in NCSU23 medium containing 1~5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ hemoglobin added to 44 and 96hrs in culture times, and in NCSU23 medium containing 0, 10, 50 or 100mM L-NAME. The developmental rates beyond morulae stage in 0, 1 and 5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ hemoglobin groups add to 44hrs in vitro culture times were 52.4%, 57.6% and 57.4%, respectively. The addition of hemoglobin groups made it slightly higher than the control group. The proportion of embryos developed to morulae and blastocysts in 1 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ hemoglobin add to 96hrs after in vitro culture (70.8%) was a little higher than those of 0 and 5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ hemoglobin (66.2% and 62.8%). There was no significant difference in all groups (P〉0.05). The developmental rates beyond morulae stage in 0, 10, 50 and 100mM of L-NAME groups add to 96hrs after in vitro culture were 65.2%, 73.5%, 70.1% and 53.3%, respectively 10mM and 50mM L-NAME groups were significantly higher than in 0 and 100mM of L-NAME groups (P<0.05). In conclusions, these results indicate that L-NAME (10mM, 50mM) can increase the proportion of embryos that develop into morulae and blastocysts but hemoglobin did not affect.
$K^+$ channels are involved in the regulation of a variety of physiological functions, including proliferation, apoptosis and differentiation, in mammalian cells. Our previous study demonstrated that the blockage of $K^+$ channels inhibits mouse early embryonic development. This study was designed to identify the effect of $K^+$ channels during bovine embryonic development. $K^+$ channel blockers (tetraethylammonium (TEA), $BaCl_2$, quinine, ruthenium red and fluoxetine) were added to the culture medium during in vitro fertilization (IVF) for 6 h to first identify the short-term effect of these chemicals. Among $K^+$ channel blockers, fluoxetine, which is used as a selective serotonin reuptake inhibitor, significantly increased the blastocyst formation rate by approximately 6% when compared to control. During the in vitro maturation (IVM) of immature oocytes and the in vitro culture (IVC) of embryos, the oocytes and embryos were exposed to fluoxetine for either a short-term (6 h) or a long-term (24 h) to compare the embryonic development in response to exposure time. The 6 h exposure to fluoxetine during IVM did not affect the blastocyst formation rate, but the rate of blastocyst formation was reduced after the 24 h exposure. On the other hand, embryonic development increased approximately 10% in both groups of embryos exposed to fluoxetine for 6 and 24 h during IVC. Taken together, fluoxetine treatment during IVF and IVC, but not IVM, enhances bovine embryonic development. These results suggest that fluoxetine-modulated signals in oocytes and embryos could be an important factor towards enhancing bovine embryonic development.
First of all, in vitro production (IVP) of porcine embryos is an important as initial step to improve bio-technical applications such as transgenesis and cloning for xenotransplantation. In recent years, considerable progress has been achieved in the IVP embryos using advanced methods for in vitro maturation (IVM) and fertilization (IVF). (omitted)
This study was to investigate the effects of electrofusion, activation and developmental stage of donor embryos on in vitro development of nuclear transplant bovine embryos. A single blastomere nucleus from 8-cell to morula stage embryos produced by in vitro fertilization(IVF) was transferred into a recipient oocyte enucleated at 23∼25 h after in vitro maturation(IVM) or into a recipient oocyte enucleated and cultured for 14∼15 h. In one experiment the nuclear transplant embryos were subjected to additional activation treatments. Fusion rate of nuclear transplant eggs was high at direct current(D.C) voltages of 1.0 and 1.5 kV/cm 991.5 and 93.3%, respectively), but decreased at 2.0kV/cm (81.8%). Additional activation treatments by electric pulases or 7% ethanol did not affect the cleavage and development of nuclear transplant embryos. Development of nuclear transplant embryos slightly increased by delayed nuclear transfer and fusion (42∼43 h after IVM). With this system, blastocysts were obtained from transfer of 8-cell to morula stage donor nuclei (9.6%∼2.4%). The result of this study suggests that nucleo-cytoplasmic interactins, expecially activation of ooplast are very important for the development of nuclear transplant embryos, and donor cell stage does not affect the development of nuclear transplant embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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