Seo, Eun Jin;Park, Jae Kyung;Jeong, Hoim;Kang, Jung Sook;Kim, Hyung-Ryong;Jang, Il Ho
International Journal of Oral Biology
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제43권2호
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pp.77-82
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2018
The mesenchymal stem cells (MSCs) that reside in dental tissues hold a great potential for future applications in regenerative dentistry. In this study, we used human dental pulp cells, isolated from the molars (DPCs), in order to establish the organoid culture. DPCs were established after growing pulp cells in an MSC expansion media (MSC-EM). DPCs were subjected to organoid growth media (OGM) in comparison with human dental pulp stem cells (DPSCs). Inside the extracellular matrix in the OGM, the DPCs and DPSCs readily formed vessel-like structures, which were not observed in the MSC-EM. Immunocytochemistry analysis and flow cytometry analysis showed the elevated expression of CD31 in the DPCs and DPSCs cultured in the OGM. These results suggest endothelial cell-prone differentiation of the DPCs and DPSCs in organoid culture condition.
Dina A. Hammouda;Alaa M Mansour;Mahmoud A. Saeed;Ahmed R. Zaher;Mohammed E. Grawish
Restorative Dentistry and Endodontics
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제48권2호
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pp.20.1-20.13
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2023
This mini-review was conducted to present an overview of the use of exosomes in regenerating the dentin-pulp complex (DPC). The PubMed and Scopus databases were searched for relevant articles published between January 1, 2013 and January 1, 2023. The findings of basic in vitro studies indicated that exosomes enhance the proliferation and migration of mesenchymal cells, as human dental pulp stem cells, via mitogen-activated protein kinases and Wingless-Int signaling pathways. In addition, they possess proangiogenic potential and contribute to neovascularization and capillary tube formation by promoting endothelial cell proliferation and migration of human umbilical vein endothelial cells. Likewise, they regulate the migration and differentiation of Schwann cells, facilitate the conversion of M1 pro-inflammatory macrophages to M2 anti-inflammatory phenotypes, and mediate immune suppression as they promote regulatory T cell conversion. Basic in vivo studies have indicated that exosomes triggered the regeneration of dentin-pulp-like tissue, and exosomes isolated under odontogenic circumstances are particularly strong inducers of tissue regeneration and stem cell differentiation. Exosomes are a promising regenerative tool for DPC in cases of small pulp exposure or for whole-pulp tissue regeneration.
Purpose: Exact knowledge of the location and dimension of the pulp chamber help to maintain the pulp healthy during operative procedure and also reduces the risk of perforation of pulp chamber during root canal treatment. This in-vivo study was carried out to measure critical morphology of pulp chamber of mandibular molar using intra-oral periapical radiograph. Materials and Methods: Mandibular molar teeth of 56 patients were evaluated. The mandibular molar teeth whose pulp chamber was not violated by caries, restoration, fracture crown and those having closed apex were included in the study. The intraoral periapical radiographs were taken with paralleling angle technique using radio-opaque grid with 1 mm space. This grid was placed directly on the film. Results: In 94% of the mandibular first molars specimens the pulp chamber ceiling was at the level of the cemento-enamel junction. The measurements showing the lowest percentage variance were buccal cusp to furcation (approximately 11%) and buccal cusp to pulp chamber ceiling (approximately 15%). The distance from the cusp tip to pulp chamber ceiling height was approximately 6.0 mm, the distance from the pulpal floor to the furcation was approximately 3.0 mm, and the average height of a pulp chamber was 1.5 to 2.0 mm. Conclusion: The exact knowledge of distances of pulp chamber from various anatomical landmarks helps in proper assessment of root canals and ultimately avoids the failure of root canal treatment.
The purpose of this study was to examine the MAPK signaling pathways involved in regulation of HO-1 and the odontoblast differentiation markers during the odontoblastic differentiation for HDPCs. We evaluated cell growth by MTT assay and differentiation marker mRNA expression by RT-PCR. When the cells were treated with p38 inhibitor (SB203580, $10{\mu}M$), JNK inhibitor (SP600125, $10{\mu}M$), and ERK inhibitor (PD98059, $20{\mu}M$) for 7 days, cell growth and expression of HO-1 and differentiation makers were significantly decreased in HDPCs. Our results suggest that odontoblastic differentiation is positively regulated by HO-1 induction in HDPCs via ERK, JNK, and p38 signaling pathways. Thus, pharmacological HO-1 induction might represent a potent therapeutic approach for pulp capping and the regeneration of HDPCs.
The purpose of the present study was to measure and compare the arachidonic acid metabolites in diseased periodontal tissue and vital pulp tissue of the tooth, and to investigate the relationship between periodontal and pulp disease. Diseased periodontal tissue of periodontally involved human teeth and vital pulp tissue from the same teeth which were intact with no periapical lesions were obtained. Each periodontal and pulp tissue homogenates from the same tooth were incubated with $^{14}C$ - arachidonic acid. Lipid solvent extracts were separated by thin layer chromatography to be analyzed by autoradiography and TLC analyzer. 1. The conversion into $TXB_2$, 6 - keto - $PGF_{1a}$ and $PGE_2$, and unidentified metabolite in pulp tissue were less than that in diseased periodontal tissue(P<0.05). 2. Biosynthetic levels of $TXB_2$, unidentified metabolite, 6 - keto - $PGF_{1a}$ and HETEs were not satistically significant between diseased periodontal tissue and pulp tissue. $LTB_4$ was measured highly in pulp tissue(P<0.1). 3. The percentage of each metabolite to the total converted metabolites were not statistically significant between diseased periodontal tissue and pulp tissue. But the percentage of $LTB_4$ in pulp tissue was higher than that in diseased periodontal tissue(P<0.05). 4. The relative amounts of the total metabolites formed in lipoxygenase pathway to those formed in cyclo - oxygenase pathway were 6 fold in diseased periodontal tissue and 12 fold in pulp tissue. But there was no statistical significance between diseased periodontal tissue and pulp tissue(P>0.05).
Cyclooxygenase-2 (COX-2)-mediated prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) plays a key role in development and progression of inflammatory responses and Porphyromonas gingivalis is a common endodontic pathogen. In this study, we investigated induction of COX-2 and $PGE_2$ by P. gingivalis in human dental pulp cells (HDPCs). P. gingivalis increased expression of COX-2, but not that of COX-1. Increased levels of $PGE_2$ were released from P. gingivalis-infected HDPCs and this $PGE_2$ increase was blocked by celecoxib, a selective COX-2 inhibitor. P. gingivalis activated all three types of mitogen-activated protein kinases (MAPKs). P. gingivalis-induced activation of nuclear $factor-{\kappa}B$ ($NF-{\kappa}B$) was demonstrated by the results of phosphorylation of $NF-{\kappa}B$ p65 and degradation of inhibitor of ${\kappa}B-{\alpha}$ ($I{\kappa}B-{\alpha}$). Pharmacological inhibition of each of the three types of MAPKs and $NF-{\kappa}B$ substantially attenuated P. gingivalis-induced $PGE_2$ production. These results suggest that P. gingivalis should promote endodontic inflammation by stimulating dental pulp cells to produce $PGE_2$.
치수는 상아질로 둘러싸인 간엽조직으로 다양한 세포와 기저 물질들로 구성되어 있으며 혈관과 신경조직이 분포되어 있다. 치수의 염증은 조직의 분해를 야기하며 이는 Matrix Metalloproteinase에 의해 세포 외 기질의 분해가 촉진되어 병적인 과정을 거치게 된다. 이에 Lipopolysaccharide에 의한 MMP와 inflammatory cytokine의 유도와 peroxisome proliferator-activated receptors (PPAR)에 의한 염증매개 물질의 조절에 대해 알아보고자 하였다. 사람의 치수세포를 다양한 LPS농도에 노출시킨 후 24시간째 MMP-2, MMP-9의 변화를 보고 LPS에 의해 자극된 치수세포에서 ICAM-1, VCAM-1, $IL-1{\beta},\;TNF-{\alpha}$의 분비가 증가됨을 알 수 있었다. 또한 Adenovirus $PPAR{\gamma}\;(Ad/PPAR{\gamma})$와 $PPAR{\gamma}$ agonist인 rosiglitazone를 LPS로 자극된 치수세포에 처리하였을 때 48시간째 MMPs와 Adhesion molecules, cytokines의 감소를 확인하였다. 이로써 사람의 치수세포에서 $PPAR{\gamma}$가 가지는 항 염증효과에 대해 지속적 인 연구가 필요할 것으로 사료된다.
Objectives: The aim of this study was to investigate the expression of 7 different sirtuin genes (SIRT1-SIRT7) in human dental pulp cells (HDPCs), and to determine the role of SIRTs in the odontoblastic differentiation potential of HDPCs. Materials and Methods: HDPCs were isolated from freshly extracted third molar teeth of healthy patients and cultulred in odontoblastic differentiation inducing media. Osteocalcin (OCN) and dentin sialophosphoprotein (DSPP) expression was analyzed to evaluate the odontoblastic differentiation of HDPCs by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR), while alizarin red staining was used for the mineralization assay. To investigate the expression of SIRTs during odontoblastic differentiation of HDPCs, real time PCR was also performed with RT-PCR. Results: During the culture of HDPCs in the differentiation inducing media, OCN, and DSPP mRNA expressions were increased. Mineralized nodule formation was also increased in the 14 days culture. All seven SIRT genes were expressed during the odontogenic induction period. SIRT4 expression was increased in a time-dependent manner. Conclusions: Our study identified the expression of seven different SIRT genes in HDPCs, and revealed that SIRT4 could exert an influence on the odontoblast differentiation process. Further studies are needed to determine the effects of other SIRTs on the odontogenic potential of HDPCs.
This study investigated the genes involved in the differentiation of odontoblasts derived from human dental pulp stem cells (hDPSCs). hDPSCs isolated from human tooth pulp were validated by fluorescence activated cell sorting (FACS). After odontogenic induction, hDPSCs were analyzed investigated by Alizaline red-S staining, ALP assay, ALP staining and RT-PCR. Differential display-polymerase chain reaction (DD-PCR) was performed to screen differentially expressed genes involved in the differentiation of hDPSCs. By FACS analysis, the stem cell markers CD24 and CD44 were found to be highly expressed in hDPSCs. When hDPSCs were treated with agents such as ${\beta}$-glycerophosphate (${\beta}$-GP) and ascorbic acid (AA), nodule formation was exhibited within six weeks. The ALP activity of hDPSCs was found to elevate over time, with a detectable up-regulation at 14 days after odontogenic induction. RT-PCR analysis revealed that dentin sialophosphoprotein (DSPP) and osteocalcin (OC) expression had increased in a time-dependent manner in the induction culture. Through the use of DD-PCR, several genes were differentially detected following the odontogenic induction. These results suggest that these genes may possibly be linked to a variety of cellular process during odontogenesis. Furthermore, the characterization of these regulated genes during odontogenic induction will likely provide valuable new insights into the functions of odontoblasts.
In order to study the effects of advanced periodontitis on pulps, 36 human teeth were examined histologically.
In addition, a medical and dental history was elicited.
The pulps were intact, uninflammed in only 9 teeth (25%) of 36 periodontally involved teeth.
27 teeth (75%) had pulps exhibiting inflammatory lesions of varing intensities. Of 27 teeth with pathological pulp tissue alterations, focal reversible pulpitis was found in 4 teeth, chronic pulpitis in 13 teeth, pulp abscess in 6 teeth, and pulp necrosis in 4 teeth.
These observations appeared to indicate that teeth with dvanced periodontitis produce a high incidence of degenertion and inflammation of the pulp.
Responses to electric pulp test were not found to be reliable indicators of the state of the pulp in periodontally involved teeth.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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