Di- and tri-methylation of lysine 4 on histone H3 (H3K4me2 and H3K4me3, respectively) are epigenetic markers of active genes. Complex associated with Set1 (COMPASS) mediates these H3K4 methylations. The involvement of COMPASS activity in secondary metabolite (SM) biosynthesis was first demonstrated with an Aspergillus nidulans cclA knockout mutant. The cclA knockout induced the transcription of two cryptic SM biosynthetic gene clusters, leading to the production of the cognate SM. Monascus spp. are filamentous fungi that have been used for food fermentation in eastern Asia, and the pigment Monascus azaphione (MAz) is their main SM. Monascus highly produces MAz, implying that the cognate biosynthetic genes are highly active in transcription. In the present study, we examined how COMPASS activity modulates MAz biosynthesis by inactivating Monascus purpureus cclA (Mp-cclA) and swd1 (Mp-swd1). For both ${\Delta}Mp-cclA$ and ${\Delta}Mp-swd1$, a reduction in MAz production, accompanied by an abated cell growth, was observed. Suppression of MAz production was more effective in an agar culture than in the submerged liquid culture. The fidelity of the ${\Delta}Mp-swd1$ phenotypes was verified by restoring the WT-like phenotypes in a reversion recombinant mutant, namely, trpCp: Mp-swd1, that was generated from the ${\Delta}Mp-swd1$ mutant. Real-time quantitative Polymerase chain reaction analysis indicated that the transcription of MAz biosynthetic genes was repressed in the ${\Delta}Mp-swd1$ mutant. This study demonstrated that MAz biosynthesis is under the control of COMPASS activity and that the extent of this regulation is dependent on growth conditions.
Kim, Yun-Hui;Lee, Dong-Soo;Kang, Joo-Hyun;Lee, Yong-Jin;Chung, June-Key;Lee, Myung-Chul
The Korean Journal of Nuclear Medicine
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v.38
no.1
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pp.99-108
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2004
Purpose: The ability to noninvasively track the migration of neural progenitor cells would have significant clinical and research implications. We generated stably transfected F3 human neural progenitor cells with human sodium/iodide symporter (hNIS) for noninvasively tracking F3. In this study, the expression patterns of hNIS gene in F3-NIS were examined according to the cultured time and the epigenetic modulation. Materials and Methods: F3 human neural stem cells had been obtained from Dr. Seung U. Kim (Ajou University, Suwon, Korea). hNIS and hygromycin resistance gene were linked with IRES (Internal Ribosome Entry Site) under control of CMV promoter. This construct was transfected to F3 with Liposome. To investigate the restoration of hNIS gene expression in F3-NIS, cells were treated with demethylating agent (5-Azacytidine) and Histone deacetylase inhibitor (Trichostatin A: TSA). The expression of hNIS was measured by I-125 uptake assay and RT-PCR analysis. Results: The iodide uptake of the F3-NIS was higher 12.86 times than F3 cell line. According to the cell passage number, hNIS expression in F3-NIS gradually diminished. After treatment of 5-Azacytidine and TSA with serial doses (up to $20{\mu}M$, up to 62.5nM, respectively) for 24 hours, I-125 uptake and mRNA of hNIS in F3-NIS were increased. Conclusion: These results suggest that hNIS transfected F3 might undergo a change in its biological characters by cell passage. Therefore, the gene ex[ressopm of exogenous gene transferred human stem cell might be affected to the epigenetic modulation such as promoter methylation and Histone deacetylation and to the cell culture conditions.
Dimethylation of the histone H3 protein at lysine residue 9 (H3K9) is mediated by euchromatin histone methyltransferase II (EHMT2) and results in transcriptional repression of target genes. Recently, chemical inhibition of EHMT2 was shown to induce various physiological outcomes, including endoplasmic reticulum stress-associated genes transcription in cancer cells. To identify genes that are transcriptionally repressed by EHMT2 during apoptosis, and cell stress responses, we screened genes that are upregulated by BIX-01294, a chemical inhibitor of EHMT2. RNA sequencing analyses revealed 77 genes that were upregulated by BIX-01294 in all four hepatic cell carcinoma (HCC) cell lines. These included genes that have been implicated in apoptosis, the unfolded protein response (UPR), and others. Among these genes, the one encoding the stress-response protein Ras-related GTPase C (RRAGC) was upregulated in all BIX-01294-treated HCC cell lines. We confirmed the regulatory roles of EHMT2 in RRAGC expression in HCC cell lines using proteomic analyses, chromatin immune precipitation (ChIP) assay, and small guide RNA-mediated loss-of-function experiments. Upregulation of RRAGC was limited by the reactive oxygen species (ROS) scavenger N-acetyl cysteine (NAC), suggesting that ROS are involved in EHMT2-mediated transcriptional regulation of stress-response genes in HCC cells. Finally, combined treatment of cells with BIX-01294 and 5-Aza-cytidine induced greater upregulation of RRAGC protein expression. These findings suggest that EHMT2 suppresses expression of the RRAGC gene in a ROS-dependent manner and imply that EHMT2 is a key regulator of stress-responsive gene expression in liver cancer cells.
SET1A is a histone H3K4 methyltransferase that catalyzes di- and trimethylation of histone H3 at lysine 4 (H3K4). Mono-, di-, and trimethylations on H3K4 (H3K4me1, H3K4me2, and H3K4me3, respectively) are generally correlated with gene activation. Although H3K4 methylation is associated with the stimulation of adipogenesis of 3T3-L1 preadipocytes, it remains unknown whether SET1A plays a role in the regulation of adipogenesis of 3T3-L1 preadipocytes. Here, we investigated whether SET1A regulates 3T3-L1 preadipocytes' adipogenesis and characterized the mechanism involved in this regulation. SET1A expression increased during 3T3-L1 preadipocytes' adipogenesis. Consistent with the increased SET1A expression, the global H3K4me3 level had also increased on day 2 after the induction of adipogenesis in 3T3-L1 adipocytes. SET1A knockdown using siRNA in 3T3-L1 preadipocytes inhibited 3T3-L1 preadipocytes' adipogenesis, as assessed by Oil Red O staining and the expression of adipogenic genes, indicating that SET1A stimulates the adipogenesis of 3T3-L1 preadipocytes. SET1A knockdown inhibited the cell proliferation of 3T3-L1 cells during mitotic clonal expansion (MCE) via down-regulation of the cell cycle gene cyclin E1, as well as the DNA synthesis gene, dihydrofolate reductase. Furthermore, SET1A knockdown repressed peroxisome proliferator-activated receptor gamma ($PPAR{\gamma}$) expression during the late stage of adipogenesis. These results indicate that SET1A stimulates MCE and $PPAR{\gamma}$ expression, which leads to the promotion of 3T3-L1 preadipocytes' adipogenesis.
Kim Ja Young;Ahn Mee Ryung;Kim Dae-Kee;Sheen Yhun Yhong
Archives of Pharmacal Research
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v.27
no.4
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pp.407-414
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2004
The expression of CYP3A4 gene is induced by a variety of structurally unrelated xenobiotics including the antibiotic rifampicin, pregnenolone 16-carbonitrile (PCN), and endogenous hormones, that might mediate through steroid and xenobiotic receptor (SXR) system. The molecular mechanisms underlying regulation of CYP3A4 gene expression have not been understood. In order to gain the insight of the molecular mechanism of CYP3A4 gene expression, study has been undertaken to investigate if the histone deacetylation is involved in the regulation of CYP3A4 gene expression by proximal promoter in human hepatoma HepG2 cells. Also we have investigated to see if SXR is involved in the regulation of CYP3A4 proximal promoter activity in human hepatoma HepG2 cells. HepG2 cells were transfected with a plasmid PCYP3A4-Luc containing ${\~}1kb$ of the CYP3A4 proximal promoter region (-863 to +64 bp) in front of a reporter gene, luciferase, in the presence or absence of pSAP-SXR. In HepG2 cells, CYP3A4 inducers, such as rifampicin, PCN and RU486 showed minimal stimulation of CYP3A4 proximal promoter activity in the absence of SXR and histone deacetylase (HDAC) inhibitors. 4-Dimethylamino-H-[4-(2-hydroxycarbamoylvinyl)benzyl]benzamide (IN2001), a new class HDAC inhibitor significantly increased CYP3A4 proximal promoter activity over untreated control cells and rifampicin concomitant treatment with IN2001 increased further CYP3A4 proximal promoter activity that was stimulated by IN2001 The results of this study demon-strated that both HDAC inhibitors and SXR are essential to increase of CYP3A4 proximal promoter activity by CYP3A4 inducers such as PCN, rifampicin, and RU486. Especially SXR seems to be important for the dose dependent response of CYP3A4 inducing chemicals to stimulate CYP3A4 proximal promoter activity. Also this data suggested that HDAC inhibitors seemed to facilitate the CYP3A4 proximal promoter to be activated by chemicals.
Cellular senescence is an irreversible form of cell cycle arrest. Senescent cells have a unique gene expression profile that is frequently accompanied by senescence-associated heterochromatic foci (SAHFs). Protein kinase CK2 (CK2) downregulation can induce trimethylation of histone H3 Lys 9 (H3K9me3) and SAHFs formation by activating SUV39h1. Here, we present evidence that the PI3K-AKT-mTOR-reactive oxygen species-p53 pathway is necessary for CK2 downregulation-mediated H3K9me3 and SAHFs formation. CK2 downregulation promotes SUV39h1 stability by inhibiting its proteasomal degradation in a p53-dependent manner. Moreover, the dephosphorylation status of Ser 392 on p53, a possible CK2 target site, enhances the nuclear import and subsequent stabilization of SUV39h1 by inhibiting the interactions between p53, MDM2, and SUV39h1. Furthermore, $p21^{Cip1/WAF1}$ is required for CK2 downregulation-mediated H3K9me3, and dephosphorylation of Ser 392 on p53 is important for efficient transcription of $p21^{Cip1/WAF}$. Taken together, these results suggest that CK2 downregulation induces dephosphorylation of Ser 392 on p53, which subsequently increases the stability of SUV39h1 and the expression of $p21^{Cip1/WAF1}$, leading to H3K9me3 and SAHFs formation.
In Saccharomyces cerevisiae, Paf1 complex consists of five proteins, and they are structurally and functionally well conserved in yeast, fruit fly, plants, and human. With binding to RNA polymerase II from transcription start site to termination site, Paf1 complex functions as a platform for recruiting many types of transcription factors to RNA polymerase II. Paf1 complex contributes to H2B ubiquitination and indirectly influences on H3K4 di- and tri-methylation by histone crosstalk. But the individual effects of five components in Paf1 complex on these two histone modifications including H2B ubiquitination and H3K4 methylation largely remained to be identified. In this study, we constructed the single-gene knockout mutants of each Paf1 complex component and observed H3K4 mono-, di-, and trimethylation as well as H2B ubiquitination in these mutants. Interestingly, in each ${\Delta}paf1$, ${\Delta}rtf1$, and ${\Delta}ctr9$ strain, we observed the dramatic defect in H3K4 monomethylation, which is independent of H2B ubiquitination, as well as H3K4 di- and trimethylation. However, the protein level of Set1, which is methyltransferase for H3K4, was not changed in these mutants. This suggests that Paf1 complex may directly influence on H3K4 methylation by directly regulating the activity of Set1 or the stability of Set1 complex in an H2B ubiquitination independent manner.
S6K1 is a key regulator of cell growth, cell size, and metabolism. Although the role of cytosolic S6K1 in cellular processes is well established, the function of S6K1 in the nucleus remains poorly understood. Our recent study has revealed that S6K1 is translocated into the nucleus upon adipogenic stimulus where it directly binds to and phosphorylates H2B at serine 36. Such phosphorylation promotes EZH2 recruitment and subsequent histone H3K27 trimethylation on the promoter of its target genes including Wnt6, Wnt10a, and Wnt10b, leading to repression of their expression. S6K1-mediated suppression of Wnt genes facilitates adipogenic differentiation through the expression of adipogenic transcription factors PPARγ and Cebpa. White adipose tissues from S6K1-deficient mice consistently exhibit marked reduction in H2BS36 phosphorylation (H2BS36p) and H3K27 trimethylation (H3K27me3), leading to enhanced expression of Wnt genes. In addition, expression levels of H2BS36p and H3K27me3 are highly elevated in white adipose tissues from mice fed on high-fat diet or from obese humans. These findings describe a novel role of S6K1 as a transcriptional regulator controlling an epigenetic network initiated by phosphorylation of H2B and trimethylation of H3, thus shutting off Wnt gene expression in early adipogenesis.
Low efficiency of somatic cell nuclear transfer (SCNT) is attributed to incomplete reprogramming of transfered nuclei into oocytes. Trichostatin A (TSA), histone deacetylase inhibitor and 5-aza-2'deoxycytidine (5-aza-dC), DNA methylation inhibitor has been used to enhance nuclear reprogramming following SCNT. However, it was not known molecular mechanism by which TSA and 5-aza-dC improve preimplantation embryo and fetal development following SCNT. The present study investigates embryo viability and gene expression of cloned porcine preimplantation embryos in the presence and absence of TSA and 5-aza-dC as compared to embryos produced by parthenogenetic activation. Our results indicated that TSA treatment significantly improved development. However 5-aza-dC did not improve development. Presence of TSA and 5-aza-dC significantly improved total cell number, and also decreased the apoptotic and autophagic index. Three apoptotic-related genes, Bak, Bcl-xL, and Caspase 3 (Casp3), and three autophagic-related genes, ATG6, ATG8, and lysosomal-associated membrane protein 2 (LAMP2), were measured by real time RT-PCR. TSA and 5-aza-dC treatment resulted in high expression of anti-apoptotic gene Bcl-xL and low pro-apoptotic gene Bak expression compared to untreated NT embryos or parthenotes. Furthermore, LC3 protein expression was lower in NT-TSA and NT-5-aza-dC embryos than those of NT and parthenotes. In addition, TSA and 5-aza-dC treated embryos displayed a global acetylated histone H3 at lysine 9 and methylated DNA H3 at lysine 9 profile similar to the parthenogenetic blastocysts. Finally, we determined that several DNA methyltransferase genes Dnmt1, Dnmt3a and Dnmt3b. NT blastocysts showed higher levels Dnmt1 than those of the TSA and 5-aza-dC blastocysts. Dnmt3a is lower in 5-aza-dC than NT, NTTSA and parthenotes. However, Dnmt3b is higher in 5-aza-dC than NT and NTTSA. These results suggest that TSA and 5-aza-dC positively regulates nuclear reprogramming which result in modulation of apoptosis and autophagy related gene expression and then reduce apoptosis and autophagy. In addition, TSA and 5-aza-dC affects the acetylated and methylated status of the H3K9.
Allergic diseases have increased over the past several decade worldwide including developing countries. Allergic inflammatory responses are caused by Th (T helper)2 immune responses, triggered by allergen ingestion by antigen presenting cells such as dendritic cells (DCs). Intestinal microorganisms control the metabolism and physiological functions of the host, contribute to early immune system maturation during the early life, and homeostasis and epithelial integrity during life. Bifidobacteria have strain-specific immunostimulatory properties in the Th1/Th2 balance, inhibit TSLP (thymic stromal lymphopoietin) and IgE expression, and promote Flg (Filaggrin) and FoxP3 (Treg) expression to alleviate allergies. In addition, unmethylated CpG motif ODN (oligodeoxynucleotides) is recognized by TLR (toll-like receptors)9 of B cells and plasmacytoid dendritic cells (pDCs) to induce innate and adaptive immune responses, while the butyrate produced by Clostridium butyricum activates the GPR (G-protein coupled receptors)109a signaling pathway to induce the expression of anti-inflammatory gene of pDCs, and directly stimulates the proliferation of thymically derived regulatory T (tTreg) cells through the activation of GPR43 or inhibits the activity of HADC (histone deacetylase) to differentiate naive $CD4^+$ T cells into pTreg cells through the histone H3 acetylation of Foxp3 gene intronic enhancer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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