Shen and colleagues (Lin et al., 2004) have recently shown that overexpression of the Drosophila DNA methyltransferase 2 isoform C, dDnmt2c, extended life span of fruit flies, probably due to increased expression of small heat shock proteins such as Hsp22 or Hsp26. Here, I demonstrate with immunoprecipitations that overexpressed dDnmt2c interacts with endogenous Hsp70 protein in vivo in S2 cells. However, its C-terminal half, dDnmt2c(178-345) forms approximately 10-fold more Hsp70-containing protein complexe than wild-type dDnmt2c. Overexpressed dDnmt2c(178-345) but not the full length dDnmt2c is able to increase endogenous mRNA levels of the small heat shock proteins, Hsp26 and Hsp22. I provide evidence that dDnmt2c(178-345) increases Hsp26 promoter activity via two heat shock elements, HSE6 and HSE7. Simultaneously overexpressed Hsp40 or a dominant negative form of heat shock factor abrogates the dDnmt2c(178-345)-dependent increase in Hsp26 transcription. The data support a model in which the activation of heat shock factor normally found as an inactive monomer bound to chaperones is linked to the overexpressed C-terminus of dDnmt2c. Despite the differences observed in flies and S2 cells, these findings provide a possible explanation for the extended lifespan in dDnmt2c-overexpressing flies with increased levels of small heat shock proteins.
In this study, we examined the expression of heat shock proteins (HSPs) in fish cell line CHSE-2lnl and human HeLa cells exposed to heat shock. In fish CHSE-214 cells HSP70 was the major polvpeptide induced by an elevated temperature or an amino acid analog, while in HeLa cells HSP90 as well as HSP70 were prominently enhanced in response to these stresses. Pretreatment of actinomvcin D prior to heat shock completely inhibited the induction of fish HSP70, indicating the transcriptional regulation of fish HSP70 gene expression. In HeLa and CHSE-214 cells either recovering from heat shock or experiencing prolonged heat shock, attenuation in the HSP90 a'nd HSP70 induction occurred but both induction and repression of HSP70 synthesis appear 19 precede those of HSP90. Moreover, attenuation did not occur in the syntheses of 40 kDa and 42 kOto proteins which were only induced in CHSE-214 cells. The enhanced syntheses of these he proteins continued as long as CHSE-214 cells were Siven heat shock. These results suggest that down-regulation of HSP syntheses during prolonged heat shock may be controlled by several different. as vet undefined, mechanisms.
Kim Woo Jin;Park Doo Won;Park Jung Youn;Kang Ho Sung;Kim Han Do
Fisheries and Aquatic Sciences
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v.2
no.1
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pp.85-92
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1999
We examined the expression patterns of heat shock proteins in primary cultured hepatocytes from flounder (Paralichthys olivaceus) exposed to heat shock. The expression of hsp90, hsp70, hsp40, hsp30, and hsp27 was induced and major polypeptides were hsp70, hsp30 and hsp27. Northern blot analysis showed that expression of hsp70 was inhibited by transcriptional inhibitor actinomycin D, suggesting that expression of hsp70 gene is regulated at the transcriptional level. Prolonged exposure of cells to an elevated incubation temperature $(30^{\circ}C)$ induced the transient synthesis of hsp90, hsp70, hsp40, and hsp30 whereas maintenance of cells at a slightly higher incubation temperature $(32^{\circ}C)$ induced the continuous syntheses of these hsps. When cells were incubated at a higher temperatures $(35^{\circ}C\;or\;37^{\circ}C)$, the synthesis of hsps was almost similar to that of hsps in cells exposed to 32't except for the induction of hsp27 synthesis. These results that temperature and incubation time for optimum expression of each hsp during prolonged heat shock are different.
To gain an insight into the function of heat shock proteins (HSPs) in insects during thermal stress, three HSP cDNAs were identified in the transcriptome of adult Heortia vitessoides, one of the most destructive defoliating pests in Aquilaria sinensis (Loureiro) Sprenger forests. The open reading frames of HvHsp60, HvHsp70, and HvHsp90 were 1,719, 2,070, and 2,151 bp in length, respectively, and encoded proteins with molecular weights of 61.05, 75.02, and 82.23 kDa, respectively. Sequence analysis revealed that all three HSPs were highly conserved in structure. Regarding the stage-specific expression profiles, HvHsp60, HvHsp70, and HvHsp90 mRNAs were detected in all developmental stages. Regarding the tissue-specific expression profiles, the expression levels of the three HSP genes were different in various larval and adult tissues. Moreover, the expression patterns of heat-stressed larvae, pupae, and adults indicated that HvHsp60, HvHsp70, and HvHsp90 were heat-inducible. In particular, HvHsp60 transcripts increased dramatically in larvae and pupae that were heat-stressed at $40^{\circ}C$ and were upregulated in adults that were heat-stressed at $35^{\circ}C$ and $40^{\circ}C$. The expression of HvHsp70 significantly increased in all of the three different developmental stages at $35^{\circ}C$, $40^{\circ}C$, and $45^{\circ}C$. The expression of HvHsp90 obviously increased at $30^{\circ}C$, $35^{\circ}C$, and $40^{\circ}C$ in larvae and could be induced at $35^{\circ}C$ in pupae and adults. The results suggest that HSP60, HSP70, and HSP90 play a major role in protecting H. vitessoides against high-temperature stress.
Kim, Ki-Yong;Jang, Yo-Soon;Lee, Byung-Hyun;Jo, Jinki
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.18
no.4
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pp.303-310
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1998
We studied expression patterns of thermotolerance gene (BcHSP17.6) in cabbages which was isolated from Chinese cabbage and we will attempt transformation of forage crops with the gene in order to increase thermotolerance of forage crops. Antiserum against a BcHSP17.6 protein was reacted with its antigen. With this antiserum, the accumulation of the 15- to 18-kD LMW HSPs under various heat shock (HS) conditions was quantified. The LMW HSPs began to be detectable at $35^{\circ}C$, and after 4 hours at $40^{\circ}C$ they were accumulated to a maximum level of 1.56 micrograms per 100 micrograms of total proteins in cabbage leaves and remained almost unchanged up to 24 hours after HS. Accumulation of the HSPs was reduced at temperatures higher than $40^{\circ}C$. We conclude that accumulation of these LMW HSPs are necessary for Chinese cabbages to survive at an otherwise lethal temperature.
Kim, Il-Sup;Moon, Hye-Youn;Yun, Hae-Sun;Jin, Ing-Nyol
Journal of Microbiology
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v.44
no.5
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pp.492-501
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2006
In this study, we attempted to characterize the physiological response to oxidative stress by heat shock in Saccharomyces cerevisiae KNU5377 (KNU5377) that ferments at a temperature of $40^{\circ}C$. The KNU5377 strain evidenced a very similar growth rate at $40^{\circ}C$ as was recorded under normal conditions. Unlike the laboratory strains of S. cerevisiae, the cell viability of KNU5377 was affected slightly under 2 hours of heat stress conditions at $43^{\circ}C$. KNU5377 evidenced a time-dependent increase in hydroperoxide levels, carbonyl contents, and malondialdehyde (MDA), which increased in the expression of a variety of cell rescue proteins containing Hsp104p, Ssap, Hsp30p, Sod1p, catalase, glutathione reductase, G6PDH, thioredoxin, thioredoxin peroxidase (Tsa1p), Adhp, Aldp, trehalose and glycogen at high temperature. Pma1/2p, Hsp90p and $H^+$-ATPase expression levels were reduced as the result of exposure to heat shock. With regard to cellular fatty acid composition, levels of unsaturated fatty acids (USFAs) were increased significantly at high temperatures ($43^{\circ}C$), and this was particularly true of oleic acid (C18:1). The results of this study indicated that oxidative stress as the result of heat shock may induce a more profound stimulation of trehalose, antioxidant enzymes, and heat shock proteins, as well as an increase in the USFAs ratios. This might contribute to cellular protective functions for the maintenance of cellular homeostasis, and may also contribute to membrane fluidity.
To study the functioning of HSP70 in Escherichia coli, we selected NtHSP70-2 (AY372070) from among three genomic clones isolated in Nicotiana tabacum. Recombinant NtHSP70-2, containing a hexahistidine tag at the amino-terminus, was constructed, expressed in E. coli, and purified by $Ni^{2+}$ affinity chromatography and Q Sepharose Fast Flow anion exchange chromatography. The expressed fusion protein, $H_6NtHSP70$-2 (hexahistidine-tagged Nicotiana tabacum heat shock protein 70-2), maintained the stability of E. coli proteins up to 90$^{\circ}C$. Measuring the light scattering of luciferase (luc) revealed that NtHSP70-2 prevents the aggregation of luc without ATP during high-temperature stress. In a functional bioassay (1 h at 50$^{\circ}C$) for recombinant $H_6NtHSP70$-2, E. coli cells overexpressing $H_6NtHSP70$-2 survived about seven times longer than those lacking $H_6NtHSP70$-2. After 2 h at 50$^{\circ}C$, only the E. coli overexpressing $H_6NtHSP70$-2 survived under such conditions. Our NtHSP70-2 bioassays, as well as in vitro studies, strongly suggest that HSP70 confers thermo-tolerance to E. coli.
The decrease in sperm quality under heat stress causes a great loss in animal husbandry production. In order to reveal the mechanism underlying the sperm quality decrease caused by heat stress, we first established a mild heat-treated mouse model. Then, the sperm quality was identified. Further, the testicular proteome profile was mapped and compared with the control using 2D electrophoresis and mass spectrometry. Finally, the differential expressed proteins involved in the heat stress response were identified by real-time PCR and Western blotting. The results showed that heat stress caused a significant reduction in mouse sperm quality (P<0.05). Further, 52 protein spots on the 2D gel were found to differ between the heat-shocked tissues and the control. Of these spots, some repair proteins which might provide some explanation for the influence on sperm quality were found. We then focused on Bag-1, Hsp40, Hsp60 and Hsp70, which were found to be differently expressed after heat shock (P<0.05). Further analysis in this heat-shocked model suggests numerous potential mechanisms for heat shock-induced spermatogenic disorders.
Magnaporthe oryzae, the causal agent of the rice blast disease, poses a worldwide threat to stable rice production. The large-scale functional characterization of genes controlling the pathogenicity of M. oryzae is currently under way, but little is known about heat shock protein 40 (Hsp40) function in the rice blast fungus or any other filamentous plant pathogen. We identified 25 genes encoding putative Hsp40s in the genome of M. oryzae using a bioinformatic approach, which we designated M. oryzae heat shock protein forty (MHF 1-25). To elucidate the roles of these genes, we characterized the functions of MHF16 and MHF21, which encode type ill and type n Hsp40 proteins, respectively. MHF16 and MHF21 expression was not significantly induced by heat shock, but it was down-regulated by cold shock. Knockout mutants of these genes $({\Delta}$mhf16 and ${\Delta}$mhf21) were viable, but conidiation was severely reduced. Moreover, sectoring was observed in the ${\Delta}mhf16$ mutant when it was grown on oatmeal agar medium. Conidial germination, appressorium formation, and pathogenicity in rice were not significantly affected in the mutants. The defects in conidiation and colony morphology were fully complemented by reintroduction of wild type MHF16 and MHF21 alleles, respectively. These data indicate that MHF16 and MHF21 play important roles in conidiation in the rice blast fungus.
Ankyrins are a ubiquitously expressed family of intracellular adaptor proteins involved in targeting diverse proteins to specialized membrane domains in both the plasma membrane and the endoplasmic reticulum. Canonical ankyrins are 190-220 kDa proteins expressed in most tissues and cell types and comprise a membrane-binding domain (MBD) of 24 ANK repeats, a spectrin-binding domain, a death domain and a C-terminal domain. Rescue studies with ankyrin-B/G chimeras have identified the C-terminal domain of ankyrin-B as the defining domain in specifying ankyrin-B activity, but the function of C-terminal domain of ankyrin-B is, however, not known. We report here that the C-terminal domain of ankyrin-B is capable of interacting with the C-terminal Region of Hsp40. The Hsps are induced not only by heat shock but also by various other environmental stresses. Hsps are also expressed constitutively at normal growth temperatures and have basic and indispensable functions in the life cycle of proteins as molecular chaperones, as well as playing a role in protecting cells from the deleterious stresses. The binding sites required in the interaction between C-terminal domain of ankyrin-B and C-terminal region of Hsp40 were characterized using the yeast two-hybrid system and GST-pull down assay. The interaction between ankyrin-B and Hsp40 represents the first direct evidence of ankyrin's role as chaperones.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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