Quercetin is a major flavonoid present in onions, which acts as an antioxidant. Quercetin exists both as a free compound and conjugated with carbohydrates, primarily as glucosides in onion. Aged black onion was made through a 30 day aging process in which the onions were kept in an environment of $60^{\circ}C$ and high humidity (90% RH). Quercetin and quercetin glucosides were assayed in onion bulbs before and after the aging process, using high performance liquid chromatography-electrospray ion trap mass spectrometry (HPLC-ESI/MS/MS). Quercetin mono- and diglucosides were identified in fresh onion bulbs, whereas quercetin aglycone was the only form present in aged black onion bulbs. These findings indicate that the quercetin mono- and di-glucosides present in fresh onions undergo complete deglycosylation during the aging process. Such profiling will provide a rapid method that can be used to assess changes in the two major quercetin glycosides during the aging process of onion bulbs.
We developed analytical methods using high performance chromatography (HPLC) and liquid chromatography tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) for the simultaneous determination of 80 unapproved compounds in dietary supplements. The target compounds for analysis were unapproved ingredients (e.g., pharmaceuticals) that have potential adverse effects on consumers owing to accidental misuse, overuse, and interaction with other medication in dietary supplement. Two analytical methods were tested to identify the optimal validation results according to AOAC guideline. As a result, limit of quantification (LOQ) was 0.14-0.5 ㎍ mL-1; linearity (r2) was ≥ 0.99; accuracy (expressed as recovery) was 78.9-114%; precision (relative standard deviation) was ≤ 4.28% in the HPLC method. In the LC-MS/MS method, LOQ was 0.01-2 ng mL-1, linearity (r2) was ≥0.98, accuracy was 71.7-119%; precision was ≤ 12.5%. The developed methods were applied to 51 dietary supplements collected from 2019 to 2021 through MFDS alert system. Based on our previous monitoring study, major compounds were icariin, sibutramine, yohimbine, sildenafil, tadalafil, sennosides (A, B), cascarosides (A, B, C, D), and phenolphthalein. In this study, we re-analyzed samples of detected compounds, and evaluated the statistical difference using Bland-Altman analysis to compare two analytical approaches between HPLC and LC-MS/MS. These results showed a good agreement between two methods that can be used to monitor the unapproved ingredients in dietary supplements. The developed two methods are complementarily suitable for monitoring the adulteration of 80 unapproved compounds in dietary supplements.
Kim, Chul-Young;Lee, Hee-Ju;Lee, Eun-Ha;Jung, Sang-Hoon;Lee, Dong-Un;Kang, Suk-Woo;Hong, Sae-Jin;Um, Byung-Hun
Food Science and Biotechnology
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v.17
no.4
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pp.846-849
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2008
This study employed high performance liquid chromatography (HPLC) coupled to an on-line $ABTS^+$ radical scavenging detection (RSD) system along with HPLC-electro spin impact/mass spectrometry (ESI/MS), to rapidly determine and identify antioxidant compounds occurring in blueberry extract. The extract was separated by HPLC, and then the radical scavenging activities of the separated compounds were evaluated by the on-line coupled $ABTS^+$-RSD system. The negative peaks of the $ABTS^+$-RSD system, which indicates the presence of antioxidant activity, were monitored by measuring the decrease in absorbance at 734 nm. The active components in the blueberry extract were identified by HPLC-ESI/MS using their MS spectra and retention times. According to the data acquired from the on-line HPLC-$ABTS^+$-based assay and HPLC-ESI/MS systems, the antioxidant compounds detected in the blueberry extract were identified as chlorogenic acid and 11 anthocyanins.
Fenpyroximate is acaricide of pyrazole group. This acaricide have already been permitted for herb cultivation. This experiment was conducted to establish a determination method for fenpyroximate residue in herbal medicines using HPLC-PDA and HPLC-MS/MS. Fenpyroximate residue was extracted with acetone from samples of herbal which Liquorice Root (Glycyrrhiza uralensis) and Safflower Seed (Carthamus tinctorius Linne). The extract was diluted with saturated saline water and dichloromethane liquid-liquid partition (extraction) was followed to recover fenpyroximate from the aqueous phase. Amino propyl ($NH_2$) and florisil column chromatography was additionally employed for final clean up of the extract. The fenpyroximate was quantitated by HPLC-PDA and HPLC-MS/MS. The herbals were fortified with fenpyroximate at 2 or 3 levels per crop. Mean recovery ratio were ranged from 72.0 to 106.4%. The coefficients of variation were ranged from 0.2 to 4.4. Therefore, this analytical method was reproducible and sensitive enough to determine the residue of fenpyroximate in herbal medicines.
A survey for total aflatoxins (aflatoxins $B_1$, $B_2$, $G_1$, and $G_2$) was conducted on 245 cereals and processed cereal products, and 148 nuts and processed nut products in Korea, for a total of 393 commercialized ed samples. The total aflatoxins were quantified by the immunoaffinity column clean-up method with high performance liquid chromatography (HPLC) - fluorescence detection (FLD), and were confirmed by liquid chromatography tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). Total aflatoxins(AFs) were detected in 37 samples (9.4% incidence), including 2 millet samples, 1 mixed cereal (sunsik), 1 powdered malt sample, 2 processed cereal products, 6 peanut samples, 22 peanut butter samples, and 1 sample each of almonds, adlay tea, and a processed nut product. The contamination levels were $0.04-2.65{\mu}g/kg$ for aflatoxin $B_1$, and $0.04-5.51{\mu}g/kg$ for total aflatoxins. Finally, LC-MS/MS analysis of the contaminated samples was conducted to confirm the detected aflatoxins, and all 37 samples showing aflatoxins by HPLC-FLD were confirmed by LC-MS/MS.
Kim, Jin-Hee;Park, So-Young;Lim, Hyun-Kyun;Park, Ah-Yeon;Kim, Ju-Sun;Kang, Sam-Sik;Youm, Jeong-Rok;Han, Sang-Beom
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.28
no.7
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pp.1187-1194
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2007
The three major active isoflavonoids (calycosin-7-O-β -glucoside, isomucronulatol 7-O-β-glucoside, formononetin) and two main saponins (astragaloside I, astragaloside IV) in an extract of Radix Astragali were determined using rapid, sensitive, reliable HPLC/UV and LC-ESI-MS/MS methods. The separation conditions employed for HPLC/UV were optimized using a phenyl-hexyl column (4.6 × 150 mm, 5 μm) with the gradient elution of acetonitrile and water as the mobile phase at a flow rate of 1.0 mL/min and a detection wavelength of 230 nm. The specificity of the peaks was determined using a triple quadrupole tandem mass spectrometer equipped with an electrospray ionization (ESI) source that was operated in multiple reaction monitoring (MRM) in the positive mode. These methods were fully validated with respect to the linearity, accuracy, precision, recovery and robustness. The HPLC/UV method was applied successfully to the quantification of three major isoflavonoids in the extract of Radix Astragali. The results indicate that the established HPLC/UV and LC-ESI-MS/MS methods are suitable for the quantitative analysis and quality control of multi-components in Radix Astragali.
Microbial biotransformations can be used to predict mammalian drug metabolism. The present investigation deals with microbial biotransformation of valdecoxib using microbial cultures. Thirty-nine bacterial, fungal, and yeast cultures were used to elucidate the biotransformation pathway of valdecoxib. A number of microorganisms metabolized valdecoxib to various levels to yield nine metabolites, which were identified by HPLC-DAD and LC-MS-MS analyses. HPLC analysis of biotransformed products indicated that a majority of the metabolites are more polar than the substrate valdecoxib. Basing on LC-MS-MS analysis, the major metabolite was identified as a hydroxymethyl metabolite of valdecoxib, whereas the remaining metabolites were produced by carboxylation, demethylation, ring hydroxylation, N-acetylation, or a combination of these reactions. The hydroxymethyl and carboxylic acid metabolites were known to be produced in metabolism by mammals. From the results, it can be concluded that microbial cultures, particularly fungi, can be used to predict mammalian drug metabolism.
This study introduces a novel analytical method for the assessment of pralsetinib impurities and degradation products (DPs), addressing critical gaps in existing methodologies. This research aims to develop a robust HPLC method for impurity analysis, characterize degradation products using LC-MS, and evaluate the environmental impact of the method. The study began by optimizing HPLC conditions with various columns and buffers, ultimately achieving successful separation using an XBridge® RP-C18 column with ethanol as solvent A and 50 mM formic acid at pH 2.9. This setup provided excellent peak resolution and symmetry, essential for reliable stability studies. The developed HPLC method was then adapted for HPLC-MS/MS, enhancing sensitivity and detection efficiency of DPs. Stress degradation studies of pralsetinib under different conditions (acidic, basic, oxidative, thermal, and photolytic) revealed significant degradation under acidic (29.3 %) and basic (21.5 %) conditions, with several DPs identified. Oxidative stress resulted in 19.8 % degradation, while thermal and photolytic conditions caused minimal degradation. HPLC-MS/MS analysis identified structures of five degradation products, providing detailed insights into pralsetinib's stability and degradation pathways. Method validation followed ICH guidelines Q2(R1), confirming method's specificity, selectivity, sensitivity, linearity, accuracy, precision, and robustness. The method exhibited strong linearity with a coefficient of determination (r2) greater than 0.999 for pralsetinib and its impurities. This method advances impurity detection and DPs characterization, ensuring the quality and safety of pralsetinib. Additionally, method's environmental impact was assessed, aligning with sustainable analytical practices. These findings provide essential data on pralsetinib's stability, guiding storage conditions and ensuring its efficacy and safety in pharmaceutical applications.
The diacylhydrazine insecticides, methoxyfenozide, chromafenozide and tebufenozide are new-generation insecticides. These insecticides induce premature molting and cause the death of insects by mimicking their hormone. Also, these insecticides have already been widely used for vegetables planting in worldwide. Highperformance liquid chromatography (HPLC) is the most widely used procedure for determination of each compound residues in crops. However, simultaneous analysis method of these diacylhydrazine insecticides was not reported. The purpose of this study is to develop a simultaneous determination procedure of methoxyfenozide, chromafenozide and tebufenozide residue in crops using HPLC-UVD/MS method. These insecticide residues were extracted with acetone from representative samples of five raw products which comprised hulled rice, soybean, apple, pepper, and Chinese cabbage. The extract was diluted with saline water, and dichloromethane partition was followed to recover these insecticides from the aqueous phase. Florisil column chromatography was additionally employed for final cleanup of the extracts. The analytes were quantitated by HPLCUVD/MS, using a $C_{18}$ column. The crops were fortified with each insecticide at two levels per crop. Mean recoveries ranged from 89.0 to 104.8% in five representative agricultural commodities. The coefficients of variation were less than 3.9%. Quantitative limits of methoxyfenozide, chromafenozide and tebufenozide were 0.04 mg/kg in crop samples. A HPLC-UVD/MS with selected-ion monitoring was also provided to confirm the suspected residues. The proposed simultaneous analysis method was reproducible and sensitive enough to determine the residues of methoxyfenozide, chromafenozide and tebufenozide in agricultural commodities.
Licorice, Glycyrrhizae Radix is widely used as a herbal medicines and a dietary supplements in East Asia. We employed high performance liquid chromatography electrospray ionization tandem mass spectrometry to determine liquiritin and glycyrrhizin in the Glycyrrhizae Radix. Liquiritin and glycyrrhizin in Glycyrrhizae Radix were ionized by positive ion pneumatically assisted electrospray and detected by HPLC-MS/MS in the multiple-reaction monitoring (MRM) mode using precursor ${\rightarrow}$ product ion combinations at m/z $436.2{\rightarrow}257.0$ and $823.4{\rightarrow}453.4$, respectively. The assay had a calibration range from 10 to 3,000 ng/mL. The limits of detection (LOD) of the liquiritin and glycyrrhizin were 0.4 ng/mL and 0.01 ng/mL, respectively. The reproducibility and repeatability (relative standard deviation) at different analyte concentrations varied from 103 to 113 % and 0.95 to 1.8 %, respectively. According to the above results, HPLC-MS/MS method permits assignment of tentative structures such as liquiritin and glycyrrhizin in the Glycyrrhizae Radix.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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