The energetics of nitrate uptake by intact cells of the halotolerant cyanobacterium Aphanothece halophytica were investigated. Nitrate uptake was inhibited by various protonophores suggesting the coupling of nitrate uptake to the proton motive force. An artificially-generated pH gradient across the membrane (${\Delta}pH$) caused an increase of nitrate uptake. In contrast, the suppression of ${\Delta}pH$ resulted in a decrease of nitrate uptake. The increase of external pH also resulted in an enhancement of nitrate uptake. The generation of the electrical potential across the membrane ($\Delta\psi$) resulted in no elevation of the rate of nitrate uptake. On the other hand, the valinomycin-mediated dissipation of $\Delta\psi$ caused no depression of the rate of nitrate uptake. Thus, it is unlikely that $\Delta\psi$ participated in the energization of the uptake of nitrate. However, $Na^+$-gradient across the membrane was suggested to play a role in nitrate uptake since monensin which collapses $Na^+$-gradient strongly inhibited nitrate uptake. Exogenously added glucose and lactate stimulated nitrate uptake in the starved cells. N, N'-dicyclohexylcarbodiimide, an inhibitor of ATPase, could also inhibit nitrate uptake suggesting that ATP hydrolysis was required for nitrate uptake. All these results indicate that nitrate uptake in A. halophytica is ATP-dependent, driven by ${\Delta}pH$ and $Na^+$-gradient.
非同時化시킨 HeLa $S_3$ 細胞에 있어 MMS에 의한 $^3 H$-Thymidine Uptake率은 MMS의 頻度증가에 따라 직선적으로 감소하며, BUdR 혹은 IUdR과 二重處理할 경우 그 감소율은 더욱 증가한다. MMS에 의한 $^3 H$-Thymidine Uptake은 thymidine 二重 處理후 얻은 同時化된 HeLa $S_3$ 細胞의 $G_2$ 時期에서 檢出된다. BUdR과 IUdR은 MMS에 의한 $^3 H$-Thymidine Uptake率을 더욱 증가시키며 IUdR은 BUdR에 비해 더효과적인 感受性 物質로 판명되었다.
The objective of the present study was to elucidate the effect of bisphosphonates, anti-osteoporosis agents, on glucose uptake in retinal capillary endothelial cells under normal and high glucose conditions. The change of glucose uptake by pre-treatment of bisphosphonates at the inner blood-retinal barrier (iBRB) was determined by measuring cellular uptake of $[^3H]3$-O-methyl glucose (3-OMG) using a conditionally immortalized rat retinal capillary endothelial cell line (TR-iBRB cells) under normal and high glucose conditions. $[^3H]3$-OMG uptake was inhibited by simultaneous treatment of unlabeled D-glucose and 3-OMG as well as glucose transport inhibitor, cytochalasin B. On the other hand, simultaneous treatment of alendronate or pamidronate had no significant inhibitory effect on $[^3H]3$-OMG uptake by TR-iBRB cells. Under high glucose condition of TR-iBRB cells, $[^3H]3$-OMG uptake was increased at 48 h. However, $[^3H]3$-OMG uptake was decreased significantly by pre-treatment of alendronate or pamidronate compared with the values for normal and high glucose conditions. Moreover, geranylgeraniol (GGOH), a mevalonate pathway intermediate, increased the uptake of $[^3H]3$-OMG reduced by bisphosphonates pre-treatment. But, pre-treatment of histamine did not show significant inhibition of $[^3H]3$-OMG uptake. The glucose uptake may be down regulated by inhibiting the mevalonate pathway with pre-treatment of bisphosphonates in TR-iBRB cells at high glucose condition.
Synaptosome에 의한 [$^3$H]-serotonin의 일반적인 흡수특성과 이 과정에 납이 미치는 영향을 in vitro와 in vitro에서 관찰하였다. 흰쥐의 대뇌와 뇌간에서 각각 분리한 synaptosome의 흡수친화력은 대뇌가 Km=0.5$\mu$M, 뇌간이 Km=0.1$\mu$M로 모두 고친화성 흡수였고 뇌간에서 더 높았다. 또한 이 흡수과정에 sodium과 potassium이온이 영향을 미치는 것으로 나타났다. Synaptosome이 [$^3$H]-serotonin을 흡수하는 과정은 납에 의해 억제되었고 이러한 납의 독성영향은 in vitro와 in vitro에서 유사한 결과를 보였다.
The characteristics of dopamine uptake, D-1 and D-2 receptors after acute and subacute cocaine administration were determind in striatum from WKY and SHR. Cocaine was administered either acutely (40 mg/kg, s.c.) or twice daily (20 mg/kg, s.c.) for 3 and 7 days in 9-wk old WKY and SHR. Rats were sacrificed 30 min, 2 or 24 h after the single injection and 18 h after the last administration to the subacutely treated group. The changes in dopamine uptake, dopamine uptake sites, D-1 and D-2 receptors were determined using $(^3H)$dopamine, $(^3H)$-GBR-12935, $(^3H)$SCH-23390 and $(^3H)$sulpiride, respectively. In acutely treated rats, significant increases in $V_{max}$of dopamine uptake were observed 30 min after the cocanine injection in both strains without changes in $K_m$ values. The in vitro $IC_{50}$for cocaine was significantly decreased 30 min in WKY and 2 h in SHR. However, that for in vitro GBR-12909 was significantly increased 30 min and 2 h in both strains. Also densities of $(^3H)$-GBR-12935 binding sites were significantly increased 30 min and 2 h without changes in their $K_d$. Significant increases in D-2 receptor density were observed 30 min, 2 or 24 h after acute injection in both strains without changes in their affinities. The density of D-1 receptor was significantly decreased 30 min after the injection in WKY, but not in SHR. In subacutely treated rats, a significant increase in $K_m$ of dopamine uptake was observed in 7-day treated SHR. The in vitro $IC_{50}$fot GBR-12909 was significantly increased in 3-day treated WKY. The density of D-1 receptors was significantly increased in 3- and 7-day treated WKY, but not in SHR. The affinity of both binding sites remained unchanged. The results suggest that cocanine administration alters dopamine uptake, characteristics of dopamine uptake sites and dopamine receptor binding characteristics in rat brain. Furthermore, D-1 and D-2 dopamine receptors appear to be differently regulated.
Little is known concerning the mechanisms responsible for the transplacental transfer of thiamine. So, the aim of this work was to characterize the placental uptake of thiamine from the maternal circulation, by determining the characteristics of $^3H$-thiamine uptake by a human trophoblast cell line (BeWo). Uptake of $^3H$-thiamine (50-100 nM) by BeWo cells was: 1) temperature-dependent and energy-independent; 2) pH-dependent (uptake increased as the extracellular medium pH decreased); 3) $Na^+$-dependent and $Cl^-$-independent; 4) not inhibited by the thiamine structural analogs amprolium, oxythiamine and thiamine pyrophosphate; 5) inhibited by the unrelated organic cations guanidine, N-methylnicotinamide, tetraethylammonium, clonidine and cimetidine; 6) inhibited by the organic cation serotonin, and by two selective inhibitors of the serotonin plasmalemmal transporter (hSERT), fluoxetine and desipramine. We conclude that $^3H$-thiamine uptake by BeWo cells seems to occur through a process distinct from thiamine transporter-1 (hThTr-1) and thiamine transporter-2 (hThTr-2). Rather, it seems to involve hSERT. Moreover, chronic (48 h) exposure of cells to caffeine ($1\;{\mu}M$) stimulated and chronic exposure to xanthohumol and iso-xanthohumol (1 and $0.1\;{\mu}M$, respectively) inhibited $^3H$-thiamine uptake, these effects being not mediated through modulation of the expression levels of either hThTr-1 or hSERT mRNA.
This study was undertaken to determine if Salviae Radix (SR) exerts protective effect against oxidant-induced inhibition of phosphate uptake in renal proximal tubular cells. Membrane transport function and cell death were evaluated by measuring phosphate uptake and trypan blue exclusion, respectively, in opossum kidney (OK) cells, an established proximal tubular cell line. $H_2O_2$ was used as a model oxidant. $H_2O_2$ inhibited the phosphate uptake in a dose-dependent manner over the concentration range of 0.1-0.5 mM. Similar fashion was observed in cell death. However, the phosphate uptake was more vulnerable to $H_2O_2$ than cell death, suggesting that $H_2O_2$-induced inhibition of phosphate uptake is not totally attributed to cell death. Decreasedphosphate uptake was associated with ATP depletion and inhibition of $Na^+$-pump activity as determined by direct inhibition of $N^+-K^+$-ATPase activity. When cells were treated with $H_2O_2$ in the presence of 0.05% SR, the inhibition of phosphate uptake and cell death induced by $H_2O_2$ was significantly attenuated. SR restored ATP depletion and decreased $Na^+-K^+$-ATPase activity, and this is likely responsible for the protective effect of SR on decreased phosphate uptake. The protective effect of SR was similar to the $H_2O_2$ scavenger catalase. SR reacts directly with $H_2O_2$ to reduce the effective concentration of the oxidant. The iron chelator deferoxamine prevented the inhibition of phosphate uptake and cell death induced by $H_2O_2$, suggesting that $H_2O_2$-induced cell injury is resulted from an iron-dependent mechanism. These results indicate that SR exerts the protective effect against $H_2O_2$-induced inhibition of phosphate uptake by reacting directly with $H_2O_2$ like the $H_2O_2$scavenger enzyme catalase, in OK cells. However, the underlying mechanism remains to be explored.
This study was undertaken to examine the effect of oxidants on membrane transport function in renal epithelial cells. Hydrogen peroxide ($H_2O_2$) was used as a model oxidant and the membrane transport function was evaluated by measuring $Na^+$-dependent phosphate ($Na^+$-Pi) uptake in opossum kidney (OK) cells. $H_2O_2$ inhibited $Na^+$-Pi uptake in a dose-dependent manner. The oxidant also caused loss of cell viability in a dose-dependent fashion. However, the extent of inhibition of the uptake was larger than that in cell viability. $H_2O_2$ inhibited $Na^+$-dependent uptake without any effect on $Na^+$-independent uptake. $H_2O_2$-induced inhibition of $Na^+$-Pi uptake was prevented completely by catalase, dimethylthiourea, and deferoxamine, suggesting involvement of hydroxyl radical generated by an iron-dependent mechanism. In contrast, antioxidants Trolox, N,N'-diphenyl-p-phenylenediamine, and butylated hydroxyanisole did not affect the $H_2O_2$ inhibition. Kinetic analysis indicated that $H_2O_2$ decreased Vmax of $Na^+$-Pi uptake with no change in the Km value. Phosphonoformic acid binding assay did not show any difference between control and $H_2O_2$-treated cells. $H_2O_2$ also did not cause degradation of $Na^+$-Pi transporter protein. Reduction in $Na^+$-Pi uptake by $H_2O_2$ was associated with ATP depletion and direct inhibition of $Na^+$-$K^+$-ATPase activity. These results indicate that the effect of $H_2O_2$ on membrane transport function in OK cells is associated with reduction in functional $Na^+$-pump activity. In addition, the inhibitory effect of $H_2O_2$ was not associated with lipid peroxidation.
가토 신장 근위세뇨관에서 분리한 brush border membrane vesicle(BBMV)과 basolateral membrane vesicle(BBMV)에서 rapid filtration 방법으로 PAH 이동에 대한 pH의 영향을 관찰하였다. BLMV에서 용액내 Na이 없을 때 외부 $pH(pH_0)$를 8.0에서 5.5까지 감소시켰을 때 probenecid-sensitive PAH 이동은 유의하게 증가되었다. 용액내 Na이 있을 때 $pH_0$가 8.0에서 6.0까지 변화하여도 PAH 이동에는 영향이 없었으나 5.5까지 더욱 감소시켰을 때 PAH 이동이 증가하였다. 그러나 vesicle 내 외에 pH gradient없이 $pH_0$를 내부 $pH(pH_1)$와 동일하게 변화시켰을 때 PAH 이동은 영향을 받지 않았다. PH gradient가 없을 때 시험된 pH범위에서 Na은 PAH 이동을 증가시켰다. BBMV에서도 BLMV에서와 유사한 pH 의존성을 보였으나 Na의 존재는 PAH 이동에 영향을 미치지 못하였다. BLMV에서 동력학적 분석 결과 일정한 $pH(pH_1)$에서 $pH(pH_0)$ 감소는 Km에 변화없이 PAH 이동에 대한 Vmax를 유의하게 증가시켰다. 이러한 결과로 BBMV에서 PAH 이동에 대한 pH의 영향은$OH^-/PAH$교환기전에 기인하는 것으로 추측되나 BLMV에서 pH 의존성은 음이온 교환기전만으로 설명될 수 없다. 또한 BLMV에서는 PAH 이동이 Na에 의존하나 BBMV에서는 Na에 의존하지 않음을 가르킨다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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