The energetics of nitrate uptake by intact cells of the halotolerant cyanobacterium Aphanothece halophytica were investigated. Nitrate uptake was inhibited by various protonophores suggesting the coupling of nitrate uptake to the proton motive force. An artificially-generated pH gradient across the membrane (${\Delta}pH$) caused an increase of nitrate uptake. In contrast, the suppression of ${\Delta}pH$ resulted in a decrease of nitrate uptake. The increase of external pH also resulted in an enhancement of nitrate uptake. The generation of the electrical potential across the membrane ($\Delta\psi$) resulted in no elevation of the rate of nitrate uptake. On the other hand, the valinomycin-mediated dissipation of $\Delta\psi$ caused no depression of the rate of nitrate uptake. Thus, it is unlikely that $\Delta\psi$ participated in the energization of the uptake of nitrate. However, $Na^+$-gradient across the membrane was suggested to play a role in nitrate uptake since monensin which collapses $Na^+$-gradient strongly inhibited nitrate uptake. Exogenously added glucose and lactate stimulated nitrate uptake in the starved cells. N, N'-dicyclohexylcarbodiimide, an inhibitor of ATPase, could also inhibit nitrate uptake suggesting that ATP hydrolysis was required for nitrate uptake. All these results indicate that nitrate uptake in A. halophytica is ATP-dependent, driven by ${\Delta}pH$ and $Na^+$-gradient.
The rate of $^{3}H$-thymidine uptake induced by MMS in asynchronous HeLa $S_3$ suspension cells was decreased in direct proprotion to dose increase. The combined treatment of BUdR or IUdR with MMS was more effective in reducing the rate of $^{3}H$-thymidine uptake. MMS-stimulated $^{3}H$-thymidine uptake was detected in synchronized $G_2$ stage cells of HeLa $S_3$ suspension cultures following treatment with thymidine double shock. BUdR and IUdR greatly enhanced MMS-stimulated $^{3}H$-thymidine uptake. IUdR was found to be a more effective sensitizer than BUdR in this respect.
The objective of the present study was to elucidate the effect of bisphosphonates, anti-osteoporosis agents, on glucose uptake in retinal capillary endothelial cells under normal and high glucose conditions. The change of glucose uptake by pre-treatment of bisphosphonates at the inner blood-retinal barrier (iBRB) was determined by measuring cellular uptake of $[^3H]3$-O-methyl glucose (3-OMG) using a conditionally immortalized rat retinal capillary endothelial cell line (TR-iBRB cells) under normal and high glucose conditions. $[^3H]3$-OMG uptake was inhibited by simultaneous treatment of unlabeled D-glucose and 3-OMG as well as glucose transport inhibitor, cytochalasin B. On the other hand, simultaneous treatment of alendronate or pamidronate had no significant inhibitory effect on $[^3H]3$-OMG uptake by TR-iBRB cells. Under high glucose condition of TR-iBRB cells, $[^3H]3$-OMG uptake was increased at 48 h. However, $[^3H]3$-OMG uptake was decreased significantly by pre-treatment of alendronate or pamidronate compared with the values for normal and high glucose conditions. Moreover, geranylgeraniol (GGOH), a mevalonate pathway intermediate, increased the uptake of $[^3H]3$-OMG reduced by bisphosphonates pre-treatment. But, pre-treatment of histamine did not show significant inhibition of $[^3H]3$-OMG uptake. The glucose uptake may be down regulated by inhibiting the mevalonate pathway with pre-treatment of bisphosphonates in TR-iBRB cells at high glucose condition.
This study was carried out to investigate the physiological changes induced acutely with the low doses of lead acetate in the synaptosomes from the cerebrum and brain stem of the rat. The general uptake patterns of [$^3$H]-serotonin were observed in synaptosomes, as a model of presynaptic nerve terminal, from the cerebrum and brain stem. And the effects of the low doses of lead acetate on the uptake process were investigated id vitro and in vivo. The Km value of the uptake of the [$^3$H]-serotonin by the synaptosomes was 0.5 $\mu$M in the cerebrum and 0.1 $\mu$M in the brain stem. These low values reveal that the synaptosomes from the cerebrum and the brain stem have a high affinity to [$^3$H]-serotonin, especially in brain stem. The uptake of $\mu$M-serotonin was dependant on the sodium and potassium ions. When being treated with ouabain, the $Na^+$$-K^+$ ATPase inhibitor, the uptake of [$^3$H]-serotonin was reduced. This supports strongly that the uptake of [$^3$H]-serotonin was sensitive to the changes of the concentrations of the sodium and potassium ions. When the calcium channel blocker, verapamil, was treated, the uptake of [$^3$H]-serotonin was changed only in synaptosomes from the brain stem. The uptake of [$^3$H]-serotonin was reduced by the lead treatment in the synaptosomes from the cerebrum and brain stem in vitro and in vivo. [lead acetate, synaptosomes, $^3$H-serotonin, rat]
The characteristics of dopamine uptake, D-1 and D-2 receptors after acute and subacute cocaine administration were determind in striatum from WKY and SHR. Cocaine was administered either acutely (40 mg/kg, s.c.) or twice daily (20 mg/kg, s.c.) for 3 and 7 days in 9-wk old WKY and SHR. Rats were sacrificed 30 min, 2 or 24 h after the single injection and 18 h after the last administration to the subacutely treated group. The changes in dopamine uptake, dopamine uptake sites, D-1 and D-2 receptors were determined using $(^3H)$dopamine, $(^3H)$-GBR-12935, $(^3H)$SCH-23390 and $(^3H)$sulpiride, respectively. In acutely treated rats, significant increases in $V_{max}$of dopamine uptake were observed 30 min after the cocanine injection in both strains without changes in $K_m$ values. The in vitro $IC_{50}$for cocaine was significantly decreased 30 min in WKY and 2 h in SHR. However, that for in vitro GBR-12909 was significantly increased 30 min and 2 h in both strains. Also densities of $(^3H)$-GBR-12935 binding sites were significantly increased 30 min and 2 h without changes in their $K_d$. Significant increases in D-2 receptor density were observed 30 min, 2 or 24 h after acute injection in both strains without changes in their affinities. The density of D-1 receptor was significantly decreased 30 min after the injection in WKY, but not in SHR. In subacutely treated rats, a significant increase in $K_m$ of dopamine uptake was observed in 7-day treated SHR. The in vitro $IC_{50}$fot GBR-12909 was significantly increased in 3-day treated WKY. The density of D-1 receptors was significantly increased in 3- and 7-day treated WKY, but not in SHR. The affinity of both binding sites remained unchanged. The results suggest that cocanine administration alters dopamine uptake, characteristics of dopamine uptake sites and dopamine receptor binding characteristics in rat brain. Furthermore, D-1 and D-2 dopamine receptors appear to be differently regulated.
Little is known concerning the mechanisms responsible for the transplacental transfer of thiamine. So, the aim of this work was to characterize the placental uptake of thiamine from the maternal circulation, by determining the characteristics of $^3H$-thiamine uptake by a human trophoblast cell line (BeWo). Uptake of $^3H$-thiamine (50-100 nM) by BeWo cells was: 1) temperature-dependent and energy-independent; 2) pH-dependent (uptake increased as the extracellular medium pH decreased); 3) $Na^+$-dependent and $Cl^-$-independent; 4) not inhibited by the thiamine structural analogs amprolium, oxythiamine and thiamine pyrophosphate; 5) inhibited by the unrelated organic cations guanidine, N-methylnicotinamide, tetraethylammonium, clonidine and cimetidine; 6) inhibited by the organic cation serotonin, and by two selective inhibitors of the serotonin plasmalemmal transporter (hSERT), fluoxetine and desipramine. We conclude that $^3H$-thiamine uptake by BeWo cells seems to occur through a process distinct from thiamine transporter-1 (hThTr-1) and thiamine transporter-2 (hThTr-2). Rather, it seems to involve hSERT. Moreover, chronic (48 h) exposure of cells to caffeine ($1\;{\mu}M$) stimulated and chronic exposure to xanthohumol and iso-xanthohumol (1 and $0.1\;{\mu}M$, respectively) inhibited $^3H$-thiamine uptake, these effects being not mediated through modulation of the expression levels of either hThTr-1 or hSERT mRNA.
This study was undertaken to determine if Salviae Radix (SR) exerts protective effect against oxidant-induced inhibition of phosphate uptake in renal proximal tubular cells. Membrane transport function and cell death were evaluated by measuring phosphate uptake and trypan blue exclusion, respectively, in opossum kidney (OK) cells, an established proximal tubular cell line. $H_2O_2$ was used as a model oxidant. $H_2O_2$ inhibited the phosphate uptake in a dose-dependent manner over the concentration range of 0.1-0.5 mM. Similar fashion was observed in cell death. However, the phosphate uptake was more vulnerable to $H_2O_2$ than cell death, suggesting that $H_2O_2$-induced inhibition of phosphate uptake is not totally attributed to cell death. Decreasedphosphate uptake was associated with ATP depletion and inhibition of $Na^+$-pump activity as determined by direct inhibition of $N^+-K^+$-ATPase activity. When cells were treated with $H_2O_2$ in the presence of 0.05% SR, the inhibition of phosphate uptake and cell death induced by $H_2O_2$ was significantly attenuated. SR restored ATP depletion and decreased $Na^+-K^+$-ATPase activity, and this is likely responsible for the protective effect of SR on decreased phosphate uptake. The protective effect of SR was similar to the $H_2O_2$ scavenger catalase. SR reacts directly with $H_2O_2$ to reduce the effective concentration of the oxidant. The iron chelator deferoxamine prevented the inhibition of phosphate uptake and cell death induced by $H_2O_2$, suggesting that $H_2O_2$-induced cell injury is resulted from an iron-dependent mechanism. These results indicate that SR exerts the protective effect against $H_2O_2$-induced inhibition of phosphate uptake by reacting directly with $H_2O_2$ like the $H_2O_2$scavenger enzyme catalase, in OK cells. However, the underlying mechanism remains to be explored.
This study was undertaken to examine the effect of oxidants on membrane transport function in renal epithelial cells. Hydrogen peroxide ($H_2O_2$) was used as a model oxidant and the membrane transport function was evaluated by measuring $Na^+$-dependent phosphate ($Na^+$-Pi) uptake in opossum kidney (OK) cells. $H_2O_2$ inhibited $Na^+$-Pi uptake in a dose-dependent manner. The oxidant also caused loss of cell viability in a dose-dependent fashion. However, the extent of inhibition of the uptake was larger than that in cell viability. $H_2O_2$ inhibited $Na^+$-dependent uptake without any effect on $Na^+$-independent uptake. $H_2O_2$-induced inhibition of $Na^+$-Pi uptake was prevented completely by catalase, dimethylthiourea, and deferoxamine, suggesting involvement of hydroxyl radical generated by an iron-dependent mechanism. In contrast, antioxidants Trolox, N,N'-diphenyl-p-phenylenediamine, and butylated hydroxyanisole did not affect the $H_2O_2$ inhibition. Kinetic analysis indicated that $H_2O_2$ decreased Vmax of $Na^+$-Pi uptake with no change in the Km value. Phosphonoformic acid binding assay did not show any difference between control and $H_2O_2$-treated cells. $H_2O_2$ also did not cause degradation of $Na^+$-Pi transporter protein. Reduction in $Na^+$-Pi uptake by $H_2O_2$ was associated with ATP depletion and direct inhibition of $Na^+$-$K^+$-ATPase activity. These results indicate that the effect of $H_2O_2$ on membrane transport function in OK cells is associated with reduction in functional $Na^+$-pump activity. In addition, the inhibitory effect of $H_2O_2$ was not associated with lipid peroxidation.
The effect of pH on the rate of PAH uptake was studied in rabbit renal basolateral membrane vesicles (BLMV) and brush border membrane vesicles (BBMV). In the absence of Na in incubation medium, a decrease in external $pH(pH_0)$ led to an increase in probenecid-sensitive PAH uptake by BLMV. In the presence of Na, the probenecid-sensitive PAH uptake was unaltered when the $pH_0$ decreased from 8.0 to 6.0 but further decrease in $pH_0$ to 5.5 increased significantly the uptake. The probenecid-sensitive PAH uptake was not affected by an alteration in pH per se in the absence of a pH gradient with or without the presence of Na. However, the presence of Na stimulated the probenecid-sensitive PAH uptake in all pH ranges tested over that measured in the absence of Na. A similar pattern of pH dependence on the PAH uptake was observed in BBMV but the presence of Na did not alter the probenecid-sensitive PAH uptake in the presence and absence of a pH gradient. Kinetic analysis for BLMV showed that Na or pH gradient increased Vmax of the probenecid-sensitive PAH uptake without a change in Km value. These results suggest that PAH is transported by $OH^-/PAH$ exchange process in the luminal membrane, but the pH dependence in the BLMV is not unequivocally consistent with an anion exchange process. The PAH transport is dependent on Na in BLMV but not in BBMV.
Polyamines were analyzed in young cotyledons of spring radish. The uptake rate of SPD were transported within 20 min lineary and reached the saturation phase after 1hr. The uptake rate of SPD decreased gradually with the time by the increasing amount of SPD inside the cells. The uptake of PA depends on the external pH. The optimal pH of PA uptake are pH 7.5. $K_m-$ and $V_{max}-$values depend on external pH also. The uptake rate of PA was inhibited by external KCI, which depolarized membrane potential in the cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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