Journal of the Korean Applied Science and Technology
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v.16
no.1
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pp.83-94
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1999
Glycoside fatty acid esters were synthesized by lipase-catalyzed glycosylation of fatty acids with methyl glycoside in solvent and solvent free process. Optimum condition of solvent process using 2-methyl-2-propanol were : moral ratio of methyl glycoside to fatty acid 1:3: initial concentration of methyl glycoside 50g/l:enzyme(immodilized lipase Novozym 435 from Candidia antarctica) content 1%(w/v) : desiccant content 9%(w/v); reaction temperature $60^{\circ}C$: reaction time 10hrs. The yield of 99% was obtained. Solvent-free process was carried out in total absence of solvent at $70^{\circ}C$ under reduced pressure, 5-20mmHg. To give meximum yield of 99% at the optimum condition of molar ratio of methyl glycoside to fatty acid 1:3, enzyme content 10%(w/w), and reaction time 10hrs. The glycosylation reactivity of different glycosylation agents were sequent to $Methyl-{\beta}-D-fructofuranoside$. $Methyl-{\beta}-D-glucopyranoside$. $Methyl-{\beta}-D-fructofuranosi$ de, and $Methyl-{\alpha}-D-glucopyranoside$.
Protein glycosylation, a highly significant and ubiquitous post-translational modification (PTM) in eukaryotic cells, has attracted considerable research interest due to its pivotal role in a wide array of essential biological processes. Conducting a comprehensive analysis of glycoproteins is imperative for understanding glycoprotein bio-functions and identifying glycosylated biomarkers. However, the complexity and heterogeneity of glycan structures, coupled with the low abundance and poor ionization efficiencies of glycopeptides have all contributed to making the analysis and subsequent identification of glycans and glycopeptides much more challenging than any other biopolymers. Nevertheless, the significant advancements in enrichment techniques, chromatographic separation, and mass spectrometric methodologies represent promising avenues for mitigating these challenges. Numerous substrates and multifunctional materials are being designed for glycopeptide enrichment, proving valuable in glycomics and glycoproteomics. Mass spectrometry (MS) is pivotal for probing protein glycosylation, offering sensitivity and structural insight into glycopeptides and glycans. Additionally, enhanced MS-based glycopeptide characterization employs various separation techniques like liquid chromatography, capillary electrophoresis, and ion mobility. In this review, we highlight recent advances in enrichment methods and MS-based separation techniques for analyzing different types of protein glycosylation. This review also discusses various approaches employed for glycan release that facilitate the investigation of the glycosylation sites of the identified glycoproteins. Furthermore, numerous bioinformatics tools aiding in accurately characterizing glycan and glycopeptides are covered.
Lee, H. G;Lee, P. Y.;Lee, Y. K.;Kim, S. J.;H. K. Chung;M. K. Seo;Park, J. K.;K. S. Min;W. K. Chang
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.27
no.4
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pp.299-307
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2003
The effects of additions/deletions in glycosylated residues of recombinant human EPO (rhEPO) produced in CHO-K1 on their secretion were examined. hEPO cDNA was amplified from human liver mRNA and cloned into the pCR2.1 TOPO. Using overlapping-extension site-directed mutagenesis method, glycosylation sites at 24th, 38th, 83rd, and 126th were respectively or accumulatively removed by substituting its asparagine (or serine) with glutamine. To add novel glycosylation sites, 69 and 105th leucine was mutated to asparagine. Mutant and wild type rhEPO constructs were cloned into the pcDNA3 expression vector with CMV promoter and transfected into CHO cell line, CHO-K1, to produce mutant rhEPO mutant rhEPO proteins. Enzyme-linked immunosorbant assay (ELISA) and Western analysis with monoclonal anti-EPO antibody were performed using supernatants of the cultures showing transient and stable expressions respectively. Addition of novel glycosylation reduced rhEPO secretion dramatically while deletion mutants had little effect except some double deletion mutants ($\Delta$24/83 and $\Delta$38/83) and triple mutant ($\Delta$24/38/83). This fact suggests that not single but combination of changes in glycosyl groups affect secretion of rhEPO in cell culture, possibly via changes in their conformations.
Guo, Chao;Liu, Ye;Yu, Haoran;Du, Kun;Gan, Yiru;Huang, He
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.7
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pp.1163-1172
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2016
The Ω-loop is a nonregular and flexible structure that plays an important role in molecular recognition, protein folding, and thermostability. In the present study, molecular dynamics simulation was carried out to assess the molecular stability and flexibility profile of the porcine trypsin structures. Two Ω-Loops (fragment 57-67 and fragment 78-91) were confirmed to represent the flexible region. Subsequently, glycosylation site-directed mutations (A73S, N84S, and R104S) were introduced within the Ω-loop region and its wing chain based on its potential N-glycosylation sites (Asn-Xaa-Ser/Thr consensus sequences) and structure information to improve the thermostability of trypsin. The result demonstrated that the half-life of the N84S mutant at 50℃ increased by 177.89 min when compared with that of the wild-type enzyme. Furthermore, the significant increase in the thermal stability of the N84S mutant has also been proven by an increase in the Tm values determined by circular dichroism. Additionally, the optimum temperatures of the wild-type enzyme and the N84S mutant were 75℃ and 80℃, respectively. In conclusion, we obtained the thermostability-improved enzyme N84S mutant, and the strategy used to design this mutant based on its structural information and N-linked glycosylation modification could be applied to engineer other enzymes to meet the needs of the biotechnological industry.
Zheng, Feng;Ma, Lixian;Shao, Lihua;Wang, Gang;Chen, Fengzhe;Zhang, Ying;Yang, Song
Journal of Microbiology
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v.45
no.1
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pp.41-47
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2007
The Hantaan virus (HTNV) is an enveloped virus that is capable of inducing low pH-dependent cell fusion. We molecularly cloned the viral glycoprotein (GP) and nucleocapsid (NP) cDNA of HTNV and expressed them in Vero E6 cells under the control of a CMV promoter. The viral gene expression was assessed using an indirect immunofluorescence assay and immunoprecipitation. The transfected Vero E6 cells expressing GPs, but not those expressing NP, fused and formed a syncytium following exposure to a low pH. Monoclonal antibodies (MAbs) against envelope GPs inhibited cell fusion, whereas MAbs against NP did not. We also investigated the N-linked glycosylation of HTNV GPs and its role in cell fusion. The envelope GPs of HTNV are modified by N-linked glycosylation at five sites: four sites on G1 (N134, N235, N347, and N399) and one site on G2 (N928). Site-directed mutagenesis was used to construct eight GP gene mutants, including five single N-glycosylation site mutants and three double-site mutants, which were then expressed in Vero E6 cells. The oligosaccharide chain on residue N928 of G2 was found to be crucial for cell fusion after exposure to a low pH. These results suggest that G2 is likely to be the fusion protein of HTNV.
Gurung, Rit Bahadur;Gong, So Youn;Dhakal, Dipesh;Le, Tuoi Thi;Jung, Na Rae;Jung, Hye Jin;Oh, Tae Jin;Sohng, Jae Kyung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.27
no.9
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pp.1639-1648
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2017
Curcumin is a natural polyphenolic compound, widely acclaimed for its antioxidant, anti-inflammatory, antibacterial, and anticancerous properties. However, its use has been limited due to its low-aqueous solubility and poor bioavailability, rapid clearance, and low cellular uptake. In order to assess the effect of glycosylation on the pharmacological properties of curcumin, one-pot multienzyme (OPME) chemoenzymatic glycosylation reactions with UDP-${\alpha}-{\text\tiny{D}}$-glucose or UDP-${\alpha}-{\text\tiny{D}}$-2-deoxyglucose as donor substrate were employed. The result indicated significant conversion of curcumin to its glycosylated derivatives: curcumin 4'-O-${\beta}$-glucoside, curcumin 4',4"-di-O-${\beta}$-glucoside, curcumin 4'-O-${\beta}$-2-deoxyglucoside, and curcumin 4',4"-di-O-${\beta}$-2-deoxyglucoside. The products were characterized by ultra-fast performance liquid chromatography, high-resolution quadruple-time-of-flight electrospray ionization-mass spectrometry, and NMR analyses. All the products showed improved water solubility and comparable antibacterial activities. Additionally, the curcumin 4'-O-${\beta}$-glucoside and curcumin 4'-O-${\beta}$-2-deoxyglucoside showed enhanced anticancer activities compared with the parent aglycone and diglycoside derivatives. This result indicates that glycosylation can be an effective approach for enhancing the pharmaceutical properties of different natural products, such as curcumin.
Lee, Ju Yeon;Choi, Jin-woong;Bae, Sanghyeon;Hwang, Heeyoun;Yoo, Jong Shin;Lee, Joo Eon;Kim, Eunji;Jeon, Young Ho;Kim, Jin Young
Mass Spectrometry Letters
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v.12
no.3
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pp.66-75
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2021
Interleukin-4 (IL-4) and IL-13 are cytokines secreted by immune cells. Cytokines induce the proliferation of macrophages or promote the differentiation of secretory cells. The initiation and progression of allergic inflammatory diseases, such as asthma, are dependent on cytokines acting through related receptor complexes. IL-4 and IL-13 are N-glycoproteins. Glycan structures in glycoproteins play important roles in protein folding, protein stability, enzymatic function, inflammation, and cancer development. Therefore, the glycan structure of IL-4 and IL-13 needs to be elucidated in detail for the development of effective therapies. We report the first attempt to characterize the site-specific N-glycosylation of recombinant IL-4 and IL-13 via liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) analysis. The tandem mass spectra of intact N-glycopeptides were identified using the Integrated GlycoProteome Analyzer (I-GPA) platform, which can automatically and rapidly analyze multiple N-glycopeptides, including their glycan composition and amino acid sequences. The recombinant IL-4 and IL-13 were identified with amino acid sequence coverages of 84% and 96%, respectively. For IL-4, 52 glycoforms on one N-glycosylation site were identified and quantified. In IL-13, 232 N-glycopeptides from three N-glycosylation sites were characterized, with the site Asn52 being the most extensively glycosylated (~80%). The complex glycans were the most abundant glycan on IL-4 and IL-13 (~96% and 91%, respectively), and the biantennary glycans were the most abundant in both recombinant IL-4 and IL-13 proteins.
Kim, Sun Young;Kim, Se Rim;Lee, Jung Chang;Yi, Ho Keun;Lee, Dae Yeol;Hwang, Pyoung Han
Clinical and Experimental Pediatrics
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v.49
no.4
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pp.431-438
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2006
Purpose : Insulin-like growth factor binding protein(IGFBP)-3 has been known as a tumor suppressor gene, and its anti-tumor function was divided into insulin-like growth factor(IGF)-dependent and IGF-independent mechanism. In IGF-independent mechanism, IGFBP-3 directly interacts with a cell without binding of IGFs, becoming an interesting object in oncology. Several studies demonstrate that one of the well-known tumor suppressor genes, p53, induces directly IGFBP-3 transcription, and the increment of IGFBP-3 expression induces apoptosis of many cancer cells. Recently, the anti-tumor mechanisms of IGFBP-3 have been reported, but post-translational modification of IGFBP-3 and its anti-tumor mechanism are not well known. In this study, we examined whether p53 regulated the glycosylation of IGFBP-3, and analysed the meaning of IGFBP-3 glycosylation related to the apoptosis of cancer cell. Methods : The p53-mutated status of MDA-MB-231 human breast cancer cells was used in this experiment. The expression and glycosylation of IGFBP-3 were tested by Western blot analysis after infection of adenovirus mediated Ad/p53 and/or Ad/IGFBP-3. Results : Ad/p53 infected cells resulted in growth retardation and the induced apoptosis. p53 induced direct expression and glycosylation of IGFBP-3. The increase of glcosylated IGFBP-3 was able to promote cellular apoptosis, and the glycosylation of IGFBP-3 was more activated by the double treatment of Ad/p53 and Ad/IGFBP-3. Conclusion : From this study, the anti-tumor activity of IGFBP-3 was shown to improve the stabilization of IGFBP-3 through the increment of glycosylation of IGFBP-3 by p53. This result suggests that the combined gene therapy of p53 and IGFBP-3 may appropriate treatment of cancer.
Kim, So-Young;Sohn, Jung-Hoon;Pyun, Yu-Ryang;Choi, Eui-Sung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.12
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pp.1949-1954
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2007
A simple way to prevent protein hyperglycosylation in Hansenula polymorpha was found. When glucose oxidase from Aspergillus niger and carboxymethyl cellulase from Bacillus subtilis were expressed under the control of an inducible methanol oxidase (MOX) promoter using methanol as a carbon source, hyperglycosylated forms occurred. In contrast, MOX-repressing carbon sources (e.g., glucose, sorbitol, and glycerol) greatly reduced the extent of hyperglycosylation. Carbon source starvation of the cells also reduced the level of glycosylation, which was reversed to hyperglycosylation by the resumption of cell growth. It was concluded that the proteins expressed under actively growing conditions are produced as hyperglycosylated forms, whereas those under slow or nongrowing conditions are as short-glycosylated forms. The prevention of hyperglycosylation in the Hansenula polymorpha expression system constitutes an additional advantage over the traditional Saccharomyces cerevisiae system in recombinant production of glycosylated proteins.
Quercetin and its derivatives are important metabolites that belong to the flavonol class of flavonoids. Quercetin and some of the conjugates have been approved by the FDA for human use. They are widely distributed among plants and have various biological activities, such as being anticancer, antiviral, and antioxidant. Hence, the biosynthesis of novel derivatives is an important field of research. Glycosylation and methylation are two important modification strategies that have long been used and have resulted in many novel metabolites that are not present in natural sources. A strategy for modifying quercetin in E. coli by means of glycosylation, for example, involves overexpressing respective glycosyltransferases (GTs) in the host and metabolic engineering for increasing nucleoside diphosphate sugar (NDP-sugar). Still others have used microorganisms other than E. coli, such as Streptomyces sp., for the biotransformation process. The overall study of the structural activity relationship has revealed that modification of some residues in quercetin decreased one activity but increased others. This review summarizes all of the information mentioned above.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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