PARK JUNHO;YU SUNGRYUL;YOON JAESEUNG;BAEK KWANGHEE
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.6
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pp.1397-1401
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2005
Bone morphogenetic protein-4 (BMP-4) is a signaling homodimeric molecule that acts as a morphogen to influence cell fate in a concentration-dependent manner. The limited supply of a pure preparation of BMP-4, due to very low level of their expression in vivo, makes it difficult not only to study the biological activities of BMPs, but also to use them as a clinical tool. For a large-scale production of BMP-4, human BMP-4 cDNA was expressed in Chinese hamster ovary (CHO) cells by a recently development vector system, which confers position-independent stable expression of the foreign genes. The CHO cell line expressing recombinant human BMP-4 (rhBMP-4) at the level of $7\;{\mu}g/ml$ could be obtained after stepwise selection with methotrexate. This level of expression is about 70 times higher than those previously reported. The partially processed form of BMP-4 as well as mature form could be detected, when the aliquots of culture media were analyzed by Western blot. The glycosylation pattern and biological activity of the rhBMP-4 were determined by glycosidase treatment and the induction rate of alkaline phosphatase in mouse osteoblastic cells.
To investigate bacteria with algalytic activities against Anabaena cylindrica when water blooming occurs and to study enzyme profiles associated with alga-lytic activity, various bacterial strains were isolated from surface waters and sediments in eutrophic lakes or reservoirs in Korea. Among 178 isolates, only nine isolates exhibited lytic abilities against A cylindrica on the agar plates, and then the isolate AK-13 was selected as the strongest in lysing the cyanobacterium A. cytindrica. The strain AK-13 was characterized and identified as Sinorhizobium sp. based on fatty acid methyl ether profiles and 16S rDNA sequence. According to the results of the enzyme assays, in the strain An-13 of Sinorhizobium sp., alginase, amylase, proteinase (caseinase and gelatinase), carboxymethyl-cellulase (CMCase), laminarinase, and lipase was produced, namely CMCase, laminarinase and protease were highly active. None of glycosidase was produced. Therefore, enzyme systems of Sinorhizobium sp. AK-13 were very complex to degrade cell walls of A. cylindrica. The peptidoglycans of A. cylindrica mat be hydrolyzed and metabolized to a range of easily utilizable monosaccharides or other low molecular weight organic substances by Sinorhizobium sp. AK-13.
The in vitro glycosylation of pentapeptide (Arg-Lys-Asp-Val-Tyr; RKDVY) and RNase A was carried out using PNGase F (peptide-N-glycosidase F), and the results were analyzed using MALDI-TOF-MS. Aminated N,N-diretyl chitobiose was used as the sugar in the glycosylation reaction, and the amination yield of N,N'-diacetyl chitobiose was about $60\%$. To reduce the water activity and shift the reaction equilibrium to a reverse reaction, 1,4-dioxane or ethylene glycol was used as the organic solvent in the enzymatic glycosylation. A certain extent of nonenzymatic glycosylaton, known as the Maillard reaction, was also observed, which occurs on an arginine or lysine residue when the length of tie sugar residue is one or two. However, the extent of glycosylation was much higher in the enzymatic reaction, indicating that PNGase F can be effectively used to produce glycopeptides and glycoproteins in vitro.
In the course of screening neuraminidase inhibitors from herbal medicines, Reynoutria elliptica exhibited high inhibitory activity. Four active compounds were isolated from the ethyl acetate soluble fraction by consecutive purification using sillica gel, Sephadex LH-20 chromatography, and recrystallization. The chemical structures of these compounds were identified as 1,3,8-trihydroxy-6-methylanthraquinone (emodin) 1,8-dihydroxy-3-methoxy-6-methylanthraquinone (emodin 3-methyl ether; physcion), 1,3,8-trihydroxy-6-hydoxymethylanthraquinone ($\omega$-hydroxyemodin), and 3,5,4 -trihydroxystilbene (trans-resvertrol) by spectral data including MS, $^1 H-, and ^{13}C-NMR. The IC_{50}$ values of emodin, emodin 3-methyl ether, $\omega$-hydroxyemodin, and trans-resvertrol were 2.81, 74.07, 10.49, and 8.77 $\mu$M, respectively. They did not inhibit other glycosidase such as glucosidase, mannosidase, and galactosidase, indicating that they were relatively specific inhibitors of neuraminidase.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1998.11a
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pp.134-134
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1998
The modulation of glycosidase activity by inhibitors is of great interest. Such compounds have been shown to be important tools in mechanistic studies on glycohydrolase as well as having promising therapeutic application. An ${\alpha}$-glucosidase inhibitor was isolated from culture filterates of Penicillium sp. The inhibitor was active against ${\alpha}$-glucosidase isolated from yeast and porcine small intestine. However, it showed no inhibition to Aspergillus ${\alpha}$-galactosidase, Escherichia coli ${\beta}$-galactosidase, and jack bean ${\alpha}$-mannosidase. The inhibitor was highly soluble in ether, methanol and chloroform. The inhibitor was purified using silica gel, Sephadex LH-20 column chromatography and reverse-phase HPLC. The inhibitory compound designated PA-7(IC$\sub$50/=35$\mu\textrm{g}$) was obtained as white powder. The structure of PA-7 was determined with spectroscopic data of EI-MS, FAB-MS, $^1$H, and $\^$13/C NMR. The inhibitor has a diketopiperazine moiety.
The cell wall components of fruit include cellulose. hemicellulose, pectin, glycoprotein etc., and the cell wall composition differs according to the kind of fruit. Fruit softening occurs as a result of a change in the cell wall polysaccharides : the middle lamella which links primary cell walls is composed of pectin. and primary cell walls are decomposed by a solution of middle lamella caused due to a result of pectin degradation by pectin degrading enzymes during ripening and softening, During fruit ripening and softening, contents of arabinose and galactose among non-cellulosic neutral sugars are notably decreased, and this occurs as a result of the degradation of pectin during fruit repening and softening since they are side-chained with pectin in the form of arabinogalactan and galactan Enzymes involved in the degradation of the cell wall include polygalacturonase, cellulose, pectinmethylesterase, glycosidase, etc., and various studies have been done on the change in enzyme activities during the ripening and softning of fruit. Among cell wall-degrading enzymes, polygalacturonase has the greatest effect on fruit softening, and its activity Increases during the maturating and softening of fruit. This softening leads to the textural change of fruit as a result of the degradation of cell wall polysaccharides by a cell wall degrading enzyme which exists in fruit.
We identified apoptosis as being a significant mechanism of toxicity following the exposure of HeLa cell cultures to abrin holotoxin, which is in addition to its inhibition of protein biosynthesis by N-glycosidase activity. The treatment of HeLa cell cultures with abrin resulted in apoptotic cell death, as characterized by morphological and biochemical changes, i.e., cell shrinkage, internucleosomal DNA fragmentation, the occurrence of hypodiploid DNA, chromatin condensation, nuclear breakdown, DNA single strand breaks by TUNEL assay, and phosphatidylserine (PS) externalization. This apoptotic cell death was accompanied by caspase-9 and caspase-3 activation, as indicated by the cleavage of caspase substrates, which was preceded by mitochondrial cytochrome c release. The broad-spectrum caspase inhibitor, benzyloxycarbonyl-Val-Ala-Asp-fluoromethyl ketone (zVAD-fmk), prevented abrin-triggered caspase activation and partially abolished apoptotic cell death, but did not affect mitochondrial cytochrome c release. These results suggest that the release of mitochondrial cytochrome c, and the sequential caspase-9 and caspase-3 activations are important events in the signal transduction pathway of abrin-induced apoptotic cell death in the HeLa cell line.
The leaves of Mirabilis jalapa L contains protein fraction presumed ribosome-inactivating protein (RIP). RIP is a group of protein that has RNA N-glycosidase activity that is capable to inhibit protein synthesis. Protein fraction of the plant was shown to be cytotoxic on HeLa cell-line, however, the mechanism by which the protein kill the cells is not identified yet, whether trough apoptosis, necrosis, or other mechanism. This research aim to study the mechanism of cell death caused by the protein fraction isolated from the leaves of this plant on HeLa and Raji cell-line, as representative of different kind of cancer cells. Results showed that protein fraction isolated from the leaves of Mirabilis jalapa L was more cytotoxic to HeLa cell-line (LC50: 0.65 mg/ml) than to Raji cell-line (1.815 mg/ml) on 48 hours incubation time. Moreover, it was demonstrated that the death of HeLa cells caused by the protein fraction was due to induction of apoptosis, while on Raji cell-line was due to non-apoptosis way, presumably via necrosis.
Hyaluronidases are a family of enzymes that catalyse the breakdown of hyaluronic acid, which is abundant in the extracellular matrix and cumulus oocyte complex. To investigate the activity of recombinant bovine sperm hyaluronidase 1 (SPAM1) and determine the effect of the Asn-X-Ser/Thr motif on its activity, the bovine SPAM1 open reading frame was cloned into the mammalian expression vector pCXN2 and then transfected to the HEK293 cell line. Expression of recombinant bovine hyaluronidase was estimated using a hyaluronidase activity assay with gel electrophoresis. Recombinant hyaluronidase could resolve highly polymeric hyaluronic acid and also caused dispersal of the cumulus cell layer. Comparative analysis with respect to enzyme activity was carried out for the glycosylated and deglycosylated bovine sperm hyaluronidase by N-glycosidase F treatment. Finally, mutagenesis analysis revealed that among the five potential N-linked glycosylation sites, only three contributed to significant inhibition of hyaluronic activity. Recombinant bovine SPAM1 has hyaluronan degradation and cumulus oocyte complex dispersion ability, and the N-linked oligosaccharides are important for enzyme activity, providing a foundation for the commercialization of hyaluronidase.
Using two drugs, tunicamycin and brefeldin A, which affect protein processing, we investigated the intracellular processing mechanism of secreted aspartyl proteinase 1 (SAPl) of Candide albicans. Three intracellular forms of SAPI were detected by immunoblotting using menoclonal antibody (MAb) CAPl. Their molecular weights were approximately 40, 41 and 45 kDa, respectively. The 41 kDa protein is a glycoprotein and may be the same as the extracellular form judging by its molecular mass. The 40 kDa protein was the unglycosylated form and its molecular mass coincided with deglycosylated SAPl and the 45 kDa protein was also the unglycosylated form. Neither the 40 and 45 kDa proteins were detected in the culture supernatant of C. albicans. These suggested that the 40 and 45 kDa proteins might be intracellular precursor forms of SAPI. These results show that SAPI is translated as a 45 kDa precusor form in the endoplasmic reticulum and the 45 kDa precursor farm undergoes proteolytic cleavage after translocation into the Golgi apparatus, generating the 40 kDa precursor form. This 40 kDa precursor is converted into a 41 kDa mature form through glycosylation in the Golgi apparatus. The mature form of the 41 kDa protein is sorted into secretary vesicles and finally released into the extracellular space through membrane fusion. When the glycan region of SAPl was digested with N-glycosidase F, both stability and activity of the enzyme decreased. These results indicate that the glycan attached to the enzyme may, at least in parti be related to enzyme stability and activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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