Despite many efforts to improving canine in vitro maturation(IVM), the efficiency is still low compared to that of other mammalian species. The present study investigated the effects of gonadotropin, epidermal growth factor and cysteine supplementation on in vitro maturation of canine oocytes. Cumulus-oocyte complexes (COCs) were matured in basic medium (TCM-199 containing 10% FBS, 0.11mg/ml sodium pyruvate supplemented with or without $10{\mu}g/ml$ FSH, 10ng/ml EGF and 0.57mM cysteine) for 72 hr at $38.5^{\circ}C$ in humidified atmosphere of 5% $CO_2$ in air. After culture, oocytes were stained with Hoechst 33342 $(10{\mu}g/ml)$ for 30 min at $4^{\circ}C$, and assessed their nuclear status (GV: germinal vesicle, GVBD: germinal vesicle break down, MI: metaphasse I, MII: metaphase II, UK: unknown stage). No differences were observed in GV, MI and MII rate except GVBD rate between with and without gonadotropins addition respectively (6.7%, vs. 17.2%). Supplementation of 10ng/ml of EGF in hormones added IVM medium resulted in significantly (p<0.05) higher MII rate (4.54% vs.7.06%). Although there are no significantly difference, total of MI and MII rates were increased by adding cysteine. In conclusion, the present study indicates that supplementation of $10{\mu}g/ml$ LH and FSH, 10ng/ml EGF and 0.57mM cysteine in canine IVM medium show a positive influence on the progression of maturation to MII at 72 hr.
In Vitro fertilization of U. unicinctus eggs observed by immunofluorescence and electron microscopes revealed an overview of the meiotic pattern of the tide animals. The eggs have been fertilized early at germinal vesicle stage, followed by germinal vesicle break down (GVBD), but pre-mitotic aster like structure could not be resolved by the methods employed in this work. The meiotic features, such as rotation-shift movement of spindle fibers, behavior of spermatozoonmonaster in the egg cytoplasm and active spindle fiber of the 1st polar body, have been observed. The antitubulin-FITC fluorescence show the 2nd meiotic apparatus appeared firstly parallel to the tangential line of the oolemma, proceeding the meiosis, its bipolarity is rotated and shifted towards the oolemma. The polar bodysite of the oolemma was not amorphous, but active in a sense of anti-tubulin-FITC reactions during the extrusions of the polar bodies. The immunofluorescence reactions of the spermatozoon centriole appeared at a later stage of the 2nd meiosis. During the time periods, the fertilized spermatozoon resided in the egg cytoplasm. Activating the centrioles, spermatozoon approaches towards the chromosomal materials of the 2nd oocyte. This suggests that spermatozoon centrioles initiate and play a roll to fuse male and female pronuclei.
The aim of this study was to investigate the effect of the follicular culture from which the oocytes originate on their subsequent in vitro maturation ability. Ovarian follicles were isolated and cultured according to size(1~2mm, 2~6mm and 6~8mm) for 42~44 h. The rates of germinal vesicle breakdown(GVBD) in each groups were 87%(65/75), 82%(80/97) and 89%(47/53), but the oocytes maturation were su, pp.essed at anaphase-I stage. In spite of the adding porcine follicular fluid and/or hormones in maturation medium, maturation ability of oocytes from follicle cultured for 21~22 h were inhibited. When oocytes from follicle cultured for 4 h at various temperature were incubated for 38~40 h, the rates of oocytes maturation from follicle cultured at 2$0^{\circ}C$(51%, 26/51) and 39$^{\circ}C$(54%, 26/48) were significant higher(P<0.05) than group cultured at 4$^{\circ}C$(33%, 19/58). On the other hand, the GVBD were stared 2 h after culture of follicle of oocytes. To summairze, oocytes maturation by follicular culture were inhibited at anaphase-I stage in porcine. When the follicle cultured for 4 h, maturation were completed to metaphase-II stage. However, rates of GVBD in oocytes from follicular culture were higher than oocytes cultured in medium.
A possible involvement of maturation promoting factor (nfPF) in the two-cell block phenomenon was studied by fusion experiments. Germinal vesicle (GlF) ooeyte was fused with a blastomore from late or blocked 2-cell mouse embryos. and germinal vesicle breakdoum (GVBD) of fused GV oocvtes in the presence of dbcAMP (100$\mu$g/ml) was scored as an index of MPF aniviD. GnD was induced approximately 30% by fusion of a blastomere derived from late 2-cell embryos, but not from blocked 2-cell embryos. The rate of GVBD was changed when GV oocyte was fused with a blastomere from late 2-cell embryos which were treated with u-amanitin, puromvcin or colcemid before and after hsion: Treatment of late 2-cell embryos with puromycin (50 Is/mll but not with u-amanitin (100 Is/ml) clearly inhibited GVBD, indicating that do novo protein synthesis maw be required for the appearance of MPF activity in late 2-cell embryos. Treatment of late 2-cell embryos w기h colcemid (0.1 Is/mll doubled GVBD, presumably due to the maintenance of metaphase or mitotic phase. SDS-PAGE and twoiimensional electrophoresis revealed that there was no difference in protein synthetic pattern in late and blocked 2-cell embryos, but three phosphoproteins with 27, 35 and 46 M)a, presumsblv M-phase components were phosphorylated in late 2-cell embryos but not in blocked 2-cell embryos. It seems then that MPF activity is closely related to phosphorylstion of M-phase components in late 2-cell embryos.
In vitro maturation of denuded porcine immature oocytes can be enhanced by co-incubation with spermatozoa even before fertilization. This study was to determine whether the addition of spermatozoa into the culture medium could influence the nuclear maturation of porcine cumulus-enclosed germinal vesicle (GV) oocytes. Cumulus-oocyte complexes (COCs) were collected from follicles of 3- to 5-mm diameter. Porcine COCs were cultured in tissue culture medium containing spermatozoa. After 48 h culture, oocytes were examined for evidence of GV breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II. The proportion of oocytes reaching at metaphase II was significantly (P < 0.05) increased in the oocytes cultured in media containing spermatozoa compared to those in media without spermatozoa (52.3% vs 12.5%). No difference in the percentage of metaphase II was observed among the different periods of spermatozoa exposure and among the spermatozoa from different species. The proportion of oocytes reaching metaphase II was significantly different between high and low concentrations of spermatozoa. The present study suggests that manunalian spermatozoa contain a substance(s) that improves nuclear in vitro maturation of porcine cumulus-enclosed GV oocytes. Enhancing effect of spermatozoa for in vitro maturation of oocytes is a highly dose-dependent.
The nudear changes of bovine oocytes during 24 hrs. of culture for mejotic maturation were examined. Bovine oocytes were collected from small(<2 mm), medium(2~6 mm) and large(>6mm) follicles and classified into three grades by their morphological characteristics. A total of 242 oocytes collected were obtained:from 184 small, 157 medium and 1 large follicles, respectively and were classified into 95 grade I, 155 grade H and 92 grade III oocytes. All the bovine oocytes collected and graded were washed with a basal medium and incubated in groups of 10 for 24 hrs in 5% $CO_2$ and 39$^{\circ}C$. The basal medium used was composed of TCM-199 supplemented with sodium bicarbonate, sodium pyruvate, streptomycin, penicillin G and 10% FCS. The oocytes were cultured in drops of 50,$\mu$l basal medium supplemented with 35$\mu$g /ml FSH, 10$\mu$g /ml LH and 1$\mu$g /ml estradiol-17$\beta$. The oocytes were fixed and examined on their chromosomal status by 1% acetorcein staining in the interval of 3 hrs. Most of the grade I oocytes developed to germinal vesicule stage at 0 to 3 hrs., germinal vesicle breakdown at 6 hrs., metaphase I at 9 to 15 hrs., anaphase I and telophase I at 18 hrs., and metaphase II and the first polar body at 24 hrs. after culture for meiotic maturation. However, it was found that compared to grade I oocytes, grade H and W oocytes reached earlier to germinal vesicle breakdown and most of them developed earlier to M II stage at 21 hrs. after culture.
As a tumor suppressor homologue during mitosis, Chk2 is involved in replication checkpoints, DNA repair, and cell cycle arrest, although its functions during mouse oocyte meiosis and early embryo development remain uncertain. We investigated the functions of Chk2 during mouse oocyte maturation and early embryo development. Chk2 exhibited a dynamic localization pattern; Chk2 expression was restricted to germinal vesicles at the germinal vesicle (GV) stage, was associated with centromeres at pro-metaphase I (Pro-MI), and localized to spindle poles at metaphase I (MI). Disrupting Chk2 activity resulted in cell cycle progression defects. First, inhibitor-treated oocytes were arrested at the GV stage and failed to undergo germinal vesicle breakdown (GVBD); this could be rescued after Chk2 inhibition release. Second, Chk2 inhibition after oocyte GVBD caused MI arrest. Third, the first cleavage of early embryo development was disrupted by Chk2 inhibition. Additionally, in inhibitor-treated oocytes, checkpoint protein Bub3 expression was consistently localized at centromeres at the MI stage, which indicated that the spindle assembly checkpoint (SAC) was activated. Moreover, disrupting Chk2 activity in oocytes caused severe chromosome misalignments and spindle disruption. In inhibitor-treated oocytes, centrosome protein ${\gamma}$-tubulin and Polo-like kinase 1 (Plk1) were dissociated from spindle poles. These results indicated that Chk2 regulated cell cycle progression and spindle assembly during mouse oocyte maturation and early embryo development.
This study was carried out to test the efficacy of pharmacological inhibitors of the cell cycle transition in keeping bovine oocytes at the germinal vesicle(GV) stage and the reversibility of this inhibition. Bovine oocytes were incubated for 22∼24 hrs in the presence of various inhibitors : cycloheximide (2$\mu\textrm{g}$/$m\ell$), 6-DMAP (2 mM), and roscovitine (50$\mu$M). Bovine oocytes cultured with any of the inhibitors were significantly blocked at the GV stage. Reversibility of pharmacological inhibitors was assessed by culturing oocytes an additional 22∼24 hours in inhibitor-free medium. Examination of oocytes revealed that the inhibitory effect was fully reversible and effect of resuming meiotic progression on nuclear maturation varied according to the various inhibitors. This study suggests that cycloheximide, 6-DMAP and roscovitine can be applied to control meiotic arrest and resumption in maturation culture of bovine oocytes in vitro. More investigations are needed to better understand how the cell cycle of oocyte is blocked without problems to future developmental competence.
Melatonin (N-acetyl-5-methoxytryptamine), a major hormone of pineal gland in vertebrates, is known to be associated with regulation of the dynamic physiological functions in general and has some functions on reproduction in the ovarian follicles in particular. And its antioxidant properties as a scavenger are also reported. The aim of this study was to investigate the effect of melatonin on the in vitro maturation of mouse germinal vesicle (GV)-stage oocytes. Oocyte maturation, apoptosis, and mRNA expression of melatonin receptor were analyzed in the cumulus cell-enclosed oocytes (CEOs) cultured with melatonin for 18 h. The CEOs were obtained from 3 wk-old ICR female mice cultured in media with 0, 0.1 nM, 10 nM, or 1,000 nM melatonin for 18 h. And then the extrusion of the first polar body was assessed to evaluate the maturation rate. The apoptosis and mRNA expression of melatonin receptor (Mtnr1-a and Mtnr1-b) in cumulus cells of each group were measured by TUNEL assay, ELISA, and real time RT-PCR after in vitro maturation(IVM). The addition of melatonin in the IVM medium significantly improved nuclear maturation of the mouse GV oocytes and the highest maturation rate were obtained from the group treated with 1,000 nM melatonin. Apoptosis was not detected in IVM oocytes, but detected in cumulus cells. And cumulus cells treated with 1,000 nM melatonin exhibited significantly lower apoptosis. In the group treated with 1,000 nM melatonin, the expression of melatonin receptor mRNA was decreased in CEOs. In conclusion, melatonin has a potentially important role for regulating oocyte maturation and reduces the apoptosis of cumulus cells in vitro.
Oocyte maturation refers to the process that prophase I arrested germinal vesicle(GV) drives the progression of meiosis to metaphase II(MII) to have the capacity for fertilization and embryo development. To better understand the molecular mechanism(s) involved in oocyte maturation, we identified differentially expressed genes(DEGs) between GV and MII mouse oocytes using a new innovative annealing control primer (ACP) technology. Using 20 ACPs, we successfully cloned 32 DEGs between GV and Mll oocytes, and 26 out of these 32 DEGs were functionally known genes. Four genes including Pscd2 were GV-specific, 10 genes including PKD2 and CSN3 were highly expressed in GV oocytes(GV-selective), and 12 genes including Diva were highly expressed in MII oocytes (MII-selective). Ail of the genes identified in this study were first reported in the oocyte expression using ACP system and especially, we could characterize the existence of PKD-CSW signaling pathwayin the mouse oocytes. Results of the present study would provide insight for studying molecular mechanisms regulating oocyte maturation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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