The early gonadal development and sexual differentiation of Rhynchocypris oxycephalus are described from the stage of hatching to 150 days after hatching. During this peroid, the average length of the body grew from 0.64 cm to 5.96 cm. the primordial germ cells (PGCs), which could be recognized at the time of hatching, began to protrude into peritoneal cavity at a standard total length of 1.91 cm. At a standard total length of 2.29cm, initial ovarian differentiation wasidentified by the transformation of PGCs to meiotic oocytes. Finally, at the standard total length of 5.96 cm, the female gonads gradually developed towards migratory nucleus oocytes, characterisiing the maturation. Oocytes proliferated rapidly after sex differentiation while the testis entered a period of quiescence, as they continued to multiply but did not undergo growth until the standard total length of 4.00 cm. At a standard total length of 4.00 cm, spermatocytes arrested in thephase of interkinesis, Sertoli-like cells and sperm duct formation, with signs of meiotic activity, were observed. Therefore it may be concluded that R. oxycephalus belongs to the differentiated type of gonochoristic teleosts.
Kim, Jung-Ha;Kim, Hyun-Jin;Kim, Byong-Soo;Kang, Jee-Hae;Kim, Min-Seok;Lee, Eun-Joo;Kim, Sun-Hun
International Journal of Oral Biology
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v.41
no.2
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pp.89-96
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2016
Tooth development shows dynamic morphological changes from the stages of cap to hard tissue formation and is strictly regulated during development. In the present study, we compared expression and localization of 3 major enamel matrix proteins in rats: amelogenin, enamel and ameloblastin. DD-PCR and RT-PCR revealed differential expression of the major proteins from the cap stage to root stage. Immunofluorescence staining results indicated that amelogenin was not detected in either inner enamel epithelium or reduced enamel epithelium, but highly immunoreactive in preameloblasts and ameloblasts; in addition, it was sporadically expressed in preodontoblasts abutting preameloblasts. Ameloblastin expression was also observed in not only differentiated ameloblasts but also osteoblasts. Immunoreactivity to ameloblastin in ameloblasts was strong in Tomes' processes. Enamelin was exclusively localized along the entire newly formed and maturing enamel. Enamelin was largely localized in near Tomes' processes and enamel rods in maturing enamel. Alendronate treatment resulted in down-regulation of amelogenin and ameloblastin at both transcription and translation levels; whereas, enamelin expression was unchanged in response to the treatment. These results suggested that amelogenin, ameloblastin and enamelin might be implicated in cell differentiation, adhesion of ameloblasts to enamel and enamel crystallization during enamel matrix formation, respectively.
An enhncer detector line(EDL) having P[1ArB] insertion in X chromosome with expression of reporter gene (lacZ) in the polar cells and border cell of egg chamber was established and used to monitor the differentiation and migration of border cells during the oogenesis of Drosophila. differentiation of border cell from the anterior polar follicle cells was evident in stage-9 egg chamber of EDL149 which was characterized by migration of columnar follicle cells toward posterior of egg chamber surrounding the oocyte. Migration of border cells was observed in the stage-9 and -10 egg chambers. \beta -galactosidase activities were rapidly increased during the first 4 days after eclosion, and it coincided with the timing of border cell differentiation in the ovary during adult life. Homozygote of EDL149 showed some retardation of border cell migration , resulting absence of migration of some border cells in the anterior part of egg chamber or delayed migration of some border cells in the stage-10 egg chamber. These results suggest that the P[1ArB] of EDL149 is inserted at the locus of the structural gene required for the border cell migration. In addition to the expression in egg chambers, lacZ expression was also detected in the meiotic germ cells of testis and antenna, suggesting the possible requirement of the trapped gene function in these organ. this EDL and enhancer trapped gene might be useful for the study of developmentally regulated cell migration.
An experiment was conducted to investigate the annual reproductive cycle of a Korean endemic species, Acheilognathus majusculus, from Jeokseong-myeon located in Seomjin River. The reproductive cycle is examined histologically regarding water temperature and day length of the habitat, the gonadosomatic index (GSI), the female ovipositor length index (OLI), monthly variation in egg diameter distribution, and developmental characteristics of female and male gonads. The maximum GSI was found in $19.21{\pm}2.32$ and $6.90{\pm}0.53$ for female and male respectively when water temperature ($14^{\circ}C$) and day length (11.1hr) began to rise. On the other hand, the minimum level was reached during August ($1.87{\pm}0.67$ for female and $0.88{\pm}0.50$ for male). No samples represent with measurable ovipositor between September and November, while the longest ovipositor length index was in April ($79.68{\pm}4.69%$). We compared and calculated the stages of testis and ovary development process in order to determine the germ cell development characteristics and the reproductive cycle. According to the result, we classified the female Acheilognathus majusculus reproductive cycle into four stages: Ripe (April) and spawning phase (May to June), degenerative phase (July), growing phase (August to December), and mature phase (January to March). The annual reproductive cycle of male Acheilognathus majusculus was categorized into five stages viz. Ripe and spawning phase (May to June), degenerative phase (July to August), resting phase (September to November), growing phase (December to February), and mature phase (March to April).
Objective: To understand the crucial requirement for the normal early folliculogenesis, we evaluated molecular as well as physiological differences during in vitro ovarian culture. Among the important regulators for follicle development, anti-Müllerian hormone (AMH) and FSH Receptor (FSHR) have been known to be expressed in the cuboidal granulosa cells. Meanwhile, it is known that c-kit is germ cell-specific and GDF-9 is also oocyte-specific regulator. To evaluate the functional requirement for the competence of normal follicular development, we investigated the differential mRNA expression of several factors secreted from granulosa cells and oocytes between in vivo and in vitro developed ovaries. Materials and Methods: Ovaries from ICR neonates (the day of birth) were cultured for 4 days (for primordial to primary transition) or 8 days (for secondary follicle formation) in ${\alpha}$-MEM glutamax supplemented with 3 mg/ml BSA without serum or growth factors. The mRNA levels of the several factors were investigated by quantitative real-time PCR analysis. Freshly isolated 0-, 4-, and 8-day-old ovaries were used as control. Results: The mRNA of AMH and FSHR as granulosa cell factors was highly increased according to the ovarian development in both of 4- and 8-day-old control. However, the mRNA expression was not induced in both of 4- and 8-day in vitro cultured ovaries. The mRNA expression of GDF-9 known to regulate follicle growth as an oocyte factor was different between in vivo and in vitro developed ovaries. In addition, the transcript of GDF-9 was expressed in the primordial follicles of mouse ovaries. The mRNA expression of c-kit was not significantly different during the early folliculogenesis in vitro. Conclusion: This is the first report regarding endogenous AMH and FSHR expression during the early folliculogenesis in vitro. In conclusion, it will be very valuable to evaluate cuboidal granulosa cell factors as functional marker(s) for normal early folliculogenesis in vitro.
Porcine embryonic stem cells (pESCs) have become an advantageous experimental tool for developing therapeutic applications and producing transgenic animals. However, despite numerous reports of putative pESC lines, deriving validated pESC lines from embryos produced in vitro remains difficult. Here, we report that embryo aggregation was useful for deriving pESCs from in vitro-produced embryos. Blastocysts derived from embryo aggregation formed a larger number of colonies and maintained cell culture stability. Our derived cell lines demonstrated expression of pluripotent markers (alkaline phosphatase, Oct4, Sox2, and Nanog), an ability to form embryoid bodies, and the capacity to differentiate into the three germ layers. A cytogenetic analysis of these cells revealed that all lines derived from aggregated blastocysts had normal female and male karyotypes. These results demonstrate that embryo aggregation could be a useful technique to improve the efficiency of deriving ESCs from in vitro-fertilized pig embryos, studying early development, and deriving pluripotent ESCs in vitro in other mammals.
Transgenic animals have been widely used for developmental biology studies, as disease models, and even in industry such as transgenic bioreactor animals. For transgenic birds, quail has the great advantages of small body size, short generation time, and frequent egg production. To date, retroviral or lentiviral transduction has been used to generate transgenic quail for various purposes. However, the efficiency of transgenic offspring production with these methods is relatively low and viral vector usage has safety issues. Unfortunately, non-viral transgenesis has not been established in quail due to a deficiency of stem cell and germ cell culture systems. In this study, we established a direct in ovo lipofection method that could be used to create transgenic quail without germline-competent cells or viruses. To optimize the injection stage during embryo development, the liposome complex (containing piggyBacCMV-GFP and transposase plasmids) was introduced into an embryonic blood vessel at 50 hr, 55 hr or 60 hr. GFP expression was detected in various tissues (heart, kidney, liver and stomach) on day 12 of incubation under a fluorescence microscope. Additionally, GFP-positive cells were detected in the recipient embryonic gonads. In conclusion, the direct in ovo lipofection method with the piggyBac transposon could be an efficient and useful tool for generating transgenic quail.
This study was carried out to examine the expression of the circadian clock genes in the mouse ovary and testis at different developmental stages. Expression of Period1(Per 1), Period2(Per2), Period3(Per3), Cryptochrome1(Cry1), Cyptochrome2(Cry2), Clock Small and Prokineticin1 and Prokineticin2 receptor(Prok1r, Prok2r) genes in mouse ovary was explored by semiquantitative reverse transcription Polymerase chain reaction(RT-PCR) according to the developmental stage(post partum day; ppd 1, 7, 10, 21 and 35). Immunohistochemistry using PER1 antibody was also analyzed. The differential expression pattern of clock genes was presented according to stages of the mouse ovarian development (ppd 1, 7, 10, 21 and 35). In the cases of ovaries, at the starting point of follicle growth at ppd 7 and 10, the clock gene expression patterns were changed vastly. According to the developmental stages, the clock genes were highly expressed at ppd 7 and 10 in mouse testis also. Receptors for Prok2, the circadian output molecule of SCN, were also expressed in ovary at ppd 7 and in testis at ppd 1 and 7, respectively. Immnunohistochemical analysis of PER1 showed positive signals in the cytoplasm of oocytes and granulosa cells. The level or PER1 expression was increased in cells at the spermatogonia and the condensing spermatids. The expression pattern of Perl and localization of PER1 were showed similar patterns according to the developmental stages in ovary and testis. Taken together, it could be observed that the expression of clock genes was highly correlated with gonadal development and germ cell differentiation in mice. Therefore, in this study, circadian programming of the genes in the ovary and testis is strongly imposed across a wide range of core reproductive cycles and normal development of gametes. Although the existence of circadian genes is clearly investigated, further studies on the direct evidence is required for the understanding of the relationship between circadian genes and regulation of gonadal differentiation and germ cell development.
Song, Ha Yeun;Nam, Yoon Kwon;Bang, In-Chul;Kim, Dong Soo
Korean Journal of Ichthyology
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v.21
no.3
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pp.141-148
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2009
Sex differentiation and gonad development were investigated in a marine medaka species, Oryzias dancena (Beloniformes; Teleostei). The average time to hatch was 11 days post-fertilization (dpf) at $25^{\circ}C$. Primordial germ cell (PGC) was first observed at 5 dpf and migrated to presumptive gonadal area between the gut and pronephric duct at 9 dpf. Male and female gonads were morphologically differentiated at 12 days post-hatching (dph). Early oocytes at perinucleolus stage as well as the formation of spermatid and efferent duct were observed at 28 dph. At 6 weeks of age, the ovary exhibited yolk granulation in many oocytes, while testis possessed a considerable number of spermatogonia and spermatids. The first ovulation was observed in 9-week-old females, and at the same age, males contained fully-matured spermatozoa. Data obtained in this study indicate that the gonad differentiation of O. dancena is the typical type of differentiated gonochorism.
Proceedings of the Korea Society of Poultry Science Conference
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2005.11a
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pp.68-69
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2005
To identify germline chimeric chicken using germ cell transplantation method, the testcross, spends much time, labor and cost to perform, is the only way for distinguishing germline chimeric chicken from normal one And to enhance the method, development of breed-specific molecular markers have been needed. We have just identified breed-specific sequence polymorphisms among Barred Plymouth rock, Korean Ogol Chicken and White Leghorn in PMEL17 and MC1R gene the loci of which are identical to dominant white and extended black loci. These sequence polymorphism will be very useful for screening germline chimera.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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