Kim, Jon Soo;Park, Jinyu;Min, Byung-Joo;Oh, Sun Kyung;Choi, Jin Sun;Woo, Mi Jung;Chae, Jong-Hee;Kim, Ki Joong;Hwang, Yong Seung;Lim, Byung Chan
Clinical and Experimental Pediatrics
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v.55
no.12
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pp.487-490
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2012
We report a case of isodicentric chromosome 15 (idic(15) chromosome), the presence of which resulted in uncontrolled seizures, including epileptic spasms, tonic seizures, and global developmental delay. A 10-month-old female infant was referred to our pediatric neurology clinic because of uncontrolled seizures and global developmental delay. She had generalized tonic-clonic seizures since 7 months of age. At referral, she could not control her head and presented with generalized hypotonia. Her brain magnetic resonance imaging scans and metabolic evaluation results were normal. Routine karyotyping indicated the presence of a supernumerary marker chromosome of unknown origin (47, XX +mar). An array-comparative genomic hybridization (CGH) analysis revealed amplification from 15q11.1 to 15q13.1. Subsequent fluorescence in situ hybridization analysis confirmed a idic(15) chromosome. Array-CGH analysis has the advantage in determining the unknown origin of a supernumerary marker chromosome, and could be a useful method for the genetic diagnosis of epilepsy syndromes associated with various chromosomal aberrations.
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2022.10a
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pp.293-293
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2022
This study is to develop new wheat breeding material through wide hybridization with wild species harboring useful characteristics such as salt, heat, and drought tolerance. Leymus mollis, wild rye was used to improve wheat genetic quality. L. mollis, is a perennial plant harboring tolerance against salt, heat, and drought because L. mollis distributes on the seaside. The F1 hybrids were produced by crossing between common wheat (Triticum aestivum L., Chinese Spring) and L. mollis. Genomic in situ hybridization revealed that the F1 hybrids have L. mollis genome. For the evaluation of salt and drought tolerance, seeds from the F2 were used. Under 2% NaCl solution, the F3 wheat-Leymus addition plants with salt tolerance showed more tillering and longer roots than other F3 plants without salt tolerance. Also, the F3 plants with salt tolerance showed better shallow-rooted than other F3 plants without salt tolerance. Finally, the F3 plants with salt tolerance made seed-setting under 2% NaCl condition, but other F3 plants without salt tolerance were not. Under drought conditions, the F3 plants with drought tolerance showed longer culm and spike length than other F3 plants without drought tolerance and even those of Chinese Spring under well-water conditions. We evaluated and selected the F3 plants with salt or drought tolerance for generation advancement.
Proceedings of the Korean Society for Bioinformatics Conference
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2001.10a
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pp.61-86
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2001
All cancers are caused by abnormalities in DNA sequence. Throughout life, the DNA in human cells is exposed to mutagens and suffers mistakes in replication, resulting in progressive, subtle changes in the DNA sequence in each cell. Since the development of conventional and molecular cytogenetic methods to the analysis of chromosomal aberrations in cancers, more than 1,800 recurring chromosomal breakpoints have been identified. These breakpoints and regions of nonrandom copy number changes typically point to the location of genes involved in cancer initiation and progression. With the introduction of molecular cytogenetic methodologies based on fluorescence in situ hybridization (FISH), namely, comparative genomic hybridization (CGH) and multicolor FISH (m-FISH) in carcinomas become susceptible to analysis. Conventional CGH has been widely applied for the detection of genomic imbalances in tumor cells, and used normal metaphase chromosomes as targets for the mapping of copy number changes. However, this limits the mapping of such imbalances to the resolution limit of metaphase chromosomes (usually 10 to 20 Mb). Efforts to increase this resolution have led to the "new"concept of genomic DNA chip (1 to 2 Mb), whereby the chromosomal target is replaced with cloned DNA immobilized on such as glass slides. The resulting resolution then depends on the size of the immobilized DNA fragments. We have completed the first draft of its Korean Genome Project. The project proceeded by end sequencing inserts from a library of 96,768 bacterial artificial chromosomes (BACs) containing genomic DNA fragments from Korean ethnicity. The sequenced BAC ends were then compared to the Human Genome Project′s publicly available sequence database and aligned according to known cancer gene sequences. These BAC clones were biotinylated by nick translation, hybridized to cytogenetic preparations of metaphase cells, and detected with fluorescein-conjugated avidin. Only locations of unique or low-copy Portions of the clone are identified, because high-copy interspersed repetitive sequences in the probe were suppressed by the addition of unlabelled Cotl DNA. Banding patterns were produced using DAPI. By this means, every BAC fragment has been matched to its appropriate chromosomal location. We have placed 86 (156 BAC clones) cytogenetically defined landmarks to help with the characterization of known cancer genes. Microarray techniques would be applied in CGH by replacement of metaphase chromosome to arrayed BAC confirming in oncogene and tumor suppressor gene: and an array BAC clones from the collection is used to perform a genome-wide scan for segmental aneuploidy by array-CGH. Therefore, the genomic DNA chip (arrayed BAC) will be undoubtedly provide accurate diagnosis of deletions, duplication, insertions and rearrangements of genomic material related to various human phenotypes, including neoplasias. And our tumor markers based on genetic abnormalities of cancer would be identified and contribute to the screening of the stage of cancers and/or hereditary diseases
Background: Gastrodia elata Blume is a saprophytic perennial plant in the Orchidaceae family, because of its agricultural and medicinal effectiveness, researchers focus on its genome and chemical components. However, cytogenetic information based on the chromosome structure and composition to construct chromosomal backbone for genome sequencing research and for the development and breeding of plants is very limited. Methods and Results: We determined the metaphase chromosome composition of the G. elata genome by fluorescence in situ hybridization (FISH) using 5S and 45S rDNAs and telomeric repeat probes. The nuclear genome of G. elata was organized into 2 n = 36, with relatively small ($2.71-5.50{\mu}m$)chromosomes that showed gradual decrease in size. Conglutination phenomenon was observed among the metaphase chromosomes, and it was distinguished from that in other plant metaphase chromosome spreads. One pair of signal was detected for each 5S and 45S rDNA in the pericentromeric region and interstitial region on the short arm of chromosomes 10 and 4, respectively, and telomeric DNA signals were detected in the terminal region of most chromosomes. Conclusions: To our knowledge, this is the first FISH chromosome composition result in G. elata and could be useful in more comprehensive molecular cytogenetic and genomic analyses as well as breeding programs of the medicinal plant G. elata.
L-asparaginase (EC 3.5.1.1) catalyzes the hydrolysis of the amide group of L-asparagine, releasing aspartate and $NH_4{^+}$. We isolated a low temperature-inducible cDNA sequence encoding L-asparaginase from soybean leaves. The full-length L-asparaginase cDNA, designated GmASP1, contains an open reading frame of 1,258 bp coding for a protein of 326 amino acids. Genomic DNA blotting and fluorescence in situ hybridization showed that the soybean genome has two copies of GmASP1. GmASP1 mRNA was induced by low temperature, ABA and NaCl, but not by heat shock or drought stress. E. coli cells expressing recombinant GmASP1 had 3-fold increased L-asparaginase activity. A possible function of L-asparaginase in the early response to low temperature stress is discussed.
Chromatin has highly organized structures in the nucleus, and these higher-order structures are proposed to regulate gene activities and cellular processes. Sequencing-based techniques, such as Hi-C, and fluorescent in situ hybridization (FISH) have revealed a spatial segregation of active and inactive compartments of chromatin, as well as the non-random positioning of chromosomes in the nucleus, respectively. However, regardless of their efficiency in capturing target genomic sites, these techniques are limited to fixed cells. Since chromatin has dynamic structures, live cell imaging techniques are highlighted for their ability to detect conformational changes in chromatin at a specific time point, or to track various arrangements of chromatin through long-term imaging. Given that the imaging approaches to study live cells are dramatically advanced, we recapitulate methods that are widely used to visualize the dynamics of higher-order chromatin structures.
Chromosomal microarray (CMA) is a high-resolution, high-throughput method of identifying submicroscopic genomic copy number variations (CNVs). CMA has been established as the first-line diagnostic test for individuals with developmental delay (DD), intellectual disability (ID), autism spectrum disorders (ASDs), and multiple congenital anomalies (MCAs). CMA analysis was performed in 42 Korean patients who had been diagnosed with unexplained DD, ID, ASDs, and MCAs. Clinically relevant CNVs were discovered in 28 patients. Variants of unknown significance were detected in 13 patients. The diagnostic yield was high (66.7%). CMA is a superior diagnostic tool compared with conventional karyotyping and fluorescent in situ hybridization.
A tandemly repeated DNA sequence was identified and characterized y the combined RAPD and FISH data from a total genomic DNA of Welsh onion (Allium fistulosum). A clone containing this repeating sequence was selected and sequenced. This repeating unit of 314 bp inserted into pAf 072 contained 54.1% adenine and thymine residues, and showed the primer sequence used, 5'-GAAACGGGTG-3', in both terminals of the sequence. Fluorescence in situ hybridization using this tandemly repeated sequence as a probe indicated that the detected sites were coincident with the major C-banded constitutive heterochromatin in the terminal regions of both arms of all 6 chromosomes.
RNase MRP is a ribonucleoprotein complex with a site-specific endonuclease activity. Its original substrate for cleavage is the small mitochondrial RNA near the mitochondrial DNA replication origin, thus it was proposed to generate the primer for mtDNA replication. Recently, it has been shown to have another substrate in the nucleus, such as pre-S.8S ribosomal RNA in nucleolus. The gene for the RNA component of RNase MRP (MRP RNA) was found to be encoded by the nucleus genome, suggesting an interesting intracellular trafficking of MRP RNA to both mitochondria and nucleolus after transcription in nucleus. In this study, genomic DNA encoding MRP RNA was microinjected into the nucleus of Xenopus oocytes, to analyze promoter regions involved in the transcription. It showed that the proximal sequence element and TATA box are important for basal level transcription; octamer motif and Sp1 binding sites are for elevated level transcription. Most of Xenopus MRP RNA was exported out to the cytoplasm following transcription in the nucleus. Utilizing various hybrid constructs, export of MRP RNA was found to be regulated by the promoter and the 5' half of the coding region of the gene. Interestingly, the transcription in nucleus seems to be coupled to the export of MRP RNA to cytoplasm. Intracellular transport of injected MRP RNA can be easily visualized by whole-mount in situ hybridization following microinjection; it also shows possible intra-nuclear sites for transcription and export of MRP RNA.
To demonstrate the importance of transformation efficiency in independent event, molecular and cytogenetic analysis were conducted with genomic DNA and chromosome of transgenic plants produced by Agrobacterium tumefeciens LBA4404 (pSBM-PPGN: gusA and bar). Selection ratios of putative transgenic calli were similar in independent experiments, however, transformation efficiencies were critically influenced by the type of regeneration media. MSRK5SS-Pr regeneration mediun, which contains 5 mgL$^{-1}$ kinetin, 2% (w/v) sucrose in combination with 3% (w/v) sorbitol, and 500 mgL$^{-1}$ proline, was efficient to produce transgenic plant of rice from putative transgenic callus in the presence of L-phosphinotricin (PPT). With MSRK5SS-Pr medium, transformation efficincies of Nagdongbyeo were significantly enhanced from 3.7% to 6.3% in independent callus lines arid from 7.3% to 19.7% in plants produced, respectively. Stable integration and expression of bar gene were confirmed by basta herbicide assay, PCR amplification and Southern blotting of bar gene, and fluorescence in situ hybridization (FISH) analysis using pSBM-PPGN as a probe. In Southern blot analysis, diverse band patterns were observed in total 44 transgenic plants regenerated from 20 independent PPT resistant calli showing from one to five copies of T-DNA segments, however, the transformants obtained from one callus line showed the same copy numbers with the same fractionized band patterns.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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