Park, Soo-Dong;Lee, Sang-Nam;Park, Ik-Hyun;Choi, Jong-Su;Jeong, Wol-Kyu;Kim, Youn-Hee;Lee, Heung-Shick
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.14
no.4
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pp.789-795
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2004
A promoter-probe shuttle vector pSK1Cat was constructed for the isolation of transcriptional signal sequences from Corynebacterium glutamicum. Besides conferring resistance to kanamycin in Escherichia coli and C. glutamicum, the vector carried a promoterless cat gene to confer resistance to chloramphenicol upon insertion of the appropriate transcriptional signals in the multiple cloning site. By utilizing the vector, a series of transcriptionally active fragments were isolated from the genome of C. glutamicum. The clones, ranging from 200 bp to 1 kb in size, were grouped into 3 classes of strong, medium, and weak, based on the chloramphenicol acetyltransferase (CAT) activity and sensitivity to the chloramphenicol of the clone-carrying C. glutamicum cells. C. glutamicum cells carrying the $P_{19}$ clone, a representative in the strong class, were able to grow on minimal agar plates containing over $40 mg/mell$ chloramphenicol, and showed CAT activity of 10 m㏖/mgㆍmin, performing slightly better than the cells carrying $P_{tac}$ , a strong E. coli promoter. Subcloning analysis of the $P_{19}$ clone identified a 180 bp intergenic fragment ($P_{180}$), which was located upstream of a gene encoding a hypothetical membrane protein. The expression conferred by $P_{180}$ was not affected by either the kinds of carbon sources or changes in temperature. These properties make the $P_{180}$ clone useful for the deregulated expression of biosynthetic genes in C. glutamicum during amino acid fermentation.
In the model legume Medicago truncatula, two mutants, sickle and sunn, exhibit morphologically and genetically distinct hypernodulation phenotypes. However, efforts to isolate the single recessive and single semidominant genes for sickle and sunn, respectively, by map-based cloning have so far been unsuccessful, partly due to the absence of clones that enable walks from linked marker positions. To help resolve these difficulties, a new bacterial artificial chromosome (BAC) library was constructed using BamHI-digested genomic fragments. A total of 23,808 clones were collected from ligation mixtures prepared with double-size-selected high-molecular-weight DNA. The average insert size was 116 kb based on an analysis of 88 randomly selected clones using NotI digestion and pulsed-field gel electrophoresis. About 18.5% of the library clones lacked inserts. The frequency of the BAC clones carrying chloroplast or mitochondrial DNA was 0.98% and 0.03%, respectively. The library represented approximately 4.9 haploid M. truncatula genomes. Hybridization of the BAC clone filters with a $C_{0}t-l$ DNA probe revealed that approximately 37% of the clones likely carried repetitive sequence-enriched DNA. An ordered array of pooled BAC DNA was screened by polymerase chain reactions using 13 sequence-characterized molecular markers that belonged to the eight linkage groups. Except for two markers, one to five positive BAC clones were obtained per marker. Accordingly, the sickle- and sunn-linked BAC clones identified herein will be useful for the isolation of these biotechnologically important genes. The new library will also provide clones that fill the gaps between preexisting BAC contigs, facilitating the physical mapping and genome sequencing of M. truncatula.
Poultry products including meat and eggs constitute a major protein source in the American diet and disease-causing pathogens represent major challenges to the poultry industry. More than 95% of pathogens enter the host through the mucosal surfaces of the respiratory, digestive and reproductive tracts and over the past few decades, the two main mechanisms used to control diseases have been the use of vaccines and antibiotics. However, in the poultry industry, there are mounting concerns over the ability of current vaccines to adequately protect against emerging hyper-virulent strains of pathogens and a lack of suitable, cost effective adjuvants. Thorough investigation of the immunogenetic responses involved in host-pathogen interactions will lead to the development of new and effective strategies for improving poultry health, food safety and the economic viability of the US poultry industry. In this paper, I describe the development of immunogenomic and proteomic tools to fundamentally determine and characterize the immunological mechanisms of the avian host to economically significant mucosal pathogens such as Eimeria. Recent completion of poultry genome sequencing and the development of several tissue-specific cDNA libraries in chickens are facilitating the rapid application of functional immunogenomics in the poultry disease research. Furthermore, research involving functional genomics, immunology and bioinformatics is providing novel insights into the processes of disease and immunity to microbial pathogens at mucosal surfaces. In this presentation, a new strategy of global gene expression using avian macrophage (AMM) to characterize the multiple pathways related to the variable immune responses of the host to Eimeria is described. This functional immunogenomics approach will increase current understanding of how mucosal immunity to infectious agents operates, and how it may be enhanced to enable the rational development of new and effective strategies against coccidiosis and other mucosal pathogens.
Reovirus was found to inhabit both the respiratory and the enteric tract of human and animals. The genome of reovirus comprises 10 segments of double-stranded RNA, total size 24 kbp. Nine strains of reovirus were isolated from human and field mice in Korea. Aseptically collected sera from human and lung tissues from field mice were used for virus isolation. For serotype determination, hemagglutination inhibition test was used, and three strains were confirmed to type 2 and six strains to type 3. To determine the genomic diversity and molecular phylogeny of reoviruses isolated in Korea, part of S4 genomic segment of reovirus was enzymatically amplified and directly sequenced. In nucleotide level, Apo98-35 strain showed 15.4%, 19.3%, and 14.4% differences compared to type 1 (T1L, Lang), type 2 (T2J), and type 3 reference strains, respectively. In amino acid level, Apo98-35 strain showed 10.5%, 13.7%, and 9.5% differences compared to type 1, type 2, and type 3 reference strains, respectively. Using the maximum parsimony method based on 285 bp spaning region of the S4 genomic segment, phylogenetic analysis indicated that Apo98-35 from Korea formed different phylogenetic branch. Our data obtained by sequence and phylogenetic analyses of reoviruses are consistent with the distinct geographically dependent evolution of reoviruses in Korea.
Kian, Danielle;Lancheros, Cesar Armando Contreras;Damiani, Igor Alexandre Campos;Fernandes, Tamiris Zanforlin Olmos;Pinge-Filho, Phileno;dos Santos, Marcia Regina Machado;da Silveira, Jose Franco;Nakamura, Celso Vataru;da Silva, Joao Santana;Yamada-Ogatta, Sueli Fumie;Yamauchi, Lucy Megumi
Parasites, Hosts and Diseases
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v.53
no.4
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pp.483-488
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2015
This report describes the molecular characterization of the Tc8.2 gene of Trypanosoma cruzi. Both the Tc8.2 gene and its encoded protein were analyzed by bioinformatics, while Northern blot and RT-PCR were used for the transcripts. Besides, immunolocalization of recombinant protein was done by immunofluorescence and electron microscopy. Analysis indicated the presence of a single copy of Tc8.2 in the T. cruzi genome and 2-different sized transcripts in epimastigotes/amastigotes and trypomastigotes. Immunoblotting showed 70 and 80 kDa polypeptides in epimastigotes and trypomastigotes, respectively, and a differential pattern of immunolocalization. Overall, the results suggest that Tc8.2 is differentially expressed during the T. cruzi life cycle.
The cultivated potato as well as its tuber-bearing relatives are considered model plants for cell and tissue culture, and therefore for exploiting the genetic variation induced by in vitro culture. The association between molecular stability and tissue culture in different genetic backgrounds and ploidy levels has already been explored. However, it still remains to be ascertained whether somaclonal variation differs between callus-derived chromosome-doubled and undoubled regenerants. Our research aimed at investigating, through amplified fragment length polymorphism (AFLP) markers, the genetic changes in marker-banding patterns of diploid and tetraploid regenerants obtained from one clone each of Solanum bulbocastanum Dunal and S. cardiophyllum Lindl (both 2n = 2x = 24) and tetraploids from cultivated S. tuberosum L. (2n = 4x = 48). Pairwise comparisons between the banding patterns of regenerants and parents allowed detecting considerable changes associated to in vitro culture both at diploid and tetraploid level. The percentages of polymorphic bands between diploid and tetraploid regenerants were, respectively, 57 and 69% in S. bulbocastanum and 58 and 63% in S. cardiophyllum. On average, the frequencies of lost parental fragments in regenerants were significantly higher than novel bands both in S. bulbocastanum (48 vs. 22%) and S. tuberosum (36 vs. 18%) regenerants. By contrast, in S. cardiophyllum, a similar incidence of the two events was detected (32 vs. 29%). Our results revealed that structural changes after tissue culture process strongly affected the genome of the species studied, but diploid and tetraploids regenerated plants responded equally.
Heterosis or hybrid vigor describes a phenomenon that superior phenotypes compared to the two parents are observed in the heterozygous $F_1$-hybrid plants. Identification and characterization of heterosis-related genes (HRGs) will facilitate hybrid breeding in crops. To identify HRGs in Brassica rapa, we analyzed transcriptome profiling using a Br300K microarray in non-heading Chinese cabbage at three developmental stages. A large number of genes were differentially expressed in $F_1$ hybrids and non-additive expression was prominent. Genes that are expressed specifically for $F_1$ hybrid at all three stages were Brassica-specific uncharacterized genes and several defense-related genes. Expression of several photosynthesis- and stress-related genes were also $F_1$ hybrid-specific. Thirteen NBS-LRR class genes showed high and specific expression in $F_1$ hybrid Shulu: some of them were characterized as defense genes in Arabidopsis, but most have not been. Further characterization of these defense-related genes in Brassica species and its application will be helpful for understanding the role of defense responses in heterosis. In addition, results obtained in this study will be valuable to develop molecular markers for heterosis and disease resistance in B. rapa.
Cho, Min Seok;Park, Duck Hwan;Namgung, Min;Ahn, Tae-Young;Park, Dong Suk
The Plant Pathology Journal
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v.31
no.2
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pp.123-131
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2015
Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus (Cms) multiplies very rapidly, passing through the vascular strands and into the stems and petioles of a diseased potato. Therefore, the rapid and specific detection of this pathogen is highly important for the effective control of the pathogen. Although several PCR assays have been developed for detection, they cannot afford specific detection of Cms. Therefore, in this study, a computational genome analysis was performed to compare the sequenced genomes of the C. michiganensis subspecies and to identify an appropriate gene for the development of a subspecies-specific PCR primer set (Cms89F/R). The specificity of the primer set based on the putative phage-related protein was evaluated using genomic DNA from seven isolates of Cms and 27 other reference strains. The Cms89F/R primer set was more specific and sensitive than the existing assays in detecting Cms in in vitro using Cms cells and its genomic DNA. This assay was also able to detect at least $1.47{\times}10^2copies/{\mu}l$ of cloned-amplified target DNA, 5 fg of DNA using genomic DNA or $10^{-6}$ dilution point of 0.12 at $OD_{600}$ units of cells per reaction using a calibrated cell suspension.
Lim, Seungmo;Zhao, Fumei;Yoo, Ran Hee;Igori, Davaajargal;Lee, Su-Heon;Lim, Hyoun-Sub;Moon, Jae Sun
The Plant Pathology Journal
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v.30
no.2
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pp.183-187
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2014
Lettuce mosaic virus (LMV) causes disease of plants in the family Asteraceae, especially lettuce crops. LMV isolates have previously been clustered in three main groups, LMV-Yar, LMV-Greek and LMV-RoW. The first two groups, LMV-Yar and LMV-Greek, have similar characteristics such as no seed-borne transmission and non-resistance-breaking. The latter one, LMV-RoW, comprising a large percentage of the LMV isolates contains two large subgroups, LMV-Common and LMV-Most. To date, however, no Korean LMV isolate has been classified and characterized. In this study, LMV-Muju, the Korean LMV isolate, was isolated from lettuce showing pale green and mottle symptoms, and its complete genome sequence was determined. Classification method of LMV isolates based on nucleotide sequence divergence of the NIb-CP junction showed that LMV-Muju was categorized as LMV-Common. LMV-Muju was more similar to LMV-O (LMV-Common subgroup) than to LMV-E (LMV-RoW group but not LMV-Common subgroup) even in the amino acid domains of HC-Pro associated with pathogenicity, and in the CI and VPg regions related to ability to overcome resistance. Taken together, LMV-Muju belongs to the LMV-Common subgroup, and is expected to be a seed-borne, non-resistance-breaking isolate. According to our analysis, all other LMV isolates not previously assigned to a subgroup were also included in the LMV-RoW group.
Park, Jaejin;Kong, Sunghyung;Kim, Seryun;Kang, Seogchan;Lee, Yong-Hwan
The Plant Pathology Journal
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v.30
no.2
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pp.136-150
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2014
Although multiple transcription factors (TFs) have been characterized via mutagenesis to understand their roles in controlling pathogenicity and infection-related development in Magnaporthe oryzae, the causal agent of rice blast, if and how forkhead-box (FOX) TFs contribute to these processes remain to be characterized. Four putative FOX TF genes were identified in the genome of M. oryzae, and phylogenetic analysis suggested that two of them (MoFKH1 and MoHCM1) correspond to Ascomycota-specific members of the FOX TF family while the others (MoFOX1 and MoFOX2) are Pezizomycotina-specific members. Deletion of MoFKH1 (${\Delta}Mofkh1$) resulted in reduced mycelial growth and conidial germination, abnormal septation and stress response, and reduced virulence. Similarly, ${\Delta}Mohcm1$ exhibited reduced mycelial growth and conidial germination. Conidia of ${\Delta}Mofkh1$ and ${\Delta}Mohcm1$ were more sensitive to one or both of the cell cycle inhibitors hydroxyurea and benomyl, suggesting their role in cell cycle control. On the other hand, loss of MoFOX1 (${\Delta}Mofox1$) did not show any noticeable changes in development, pathogenicity, and stress response. Deletion of MoFOX2 was not successful even after repeated attempts. Taken together, these results suggested that MoFKH1 and MoHCM1 are important in fungal development and that MoFKH1 is further implicated in pathogenicity and stress response in M. oryzae.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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