The effects of medium pH and culture temperature on the expression and secretion of inulinase and invertase were investigated with recombinant Saccharomyces cerevisiae cells. These cells were obtained by transformation of 2$\mu$-based plasmids pYI10 and pYS10 which contain Kluyveromyces marxianus inulinase gene (INU1A) and S. cerevisiae invertase gene (SUC2), respectively, in the downstream of GAL1 promoter. The expression level and localization of inulinase and invertase were not affected significantly by the initial medium pH: secretion efficiencies of inulinase and invertase into the medium were about 90% and 60%, respectively, in the pH ranges of 4.0 to 6.5. However, the expression and secretion of both enzymes were strongly dependent on the culture temperature. The highest expression (7.7 units/mL) and secretion (6.7 units/mL) of inulinase were observed at 28$\circ$C and 30$\circ$C. As a consequence of decreased localization of inulinase in the periplasmic space, the secretion efficiency increased from 68% at 20$\circ$C, to 95% at 35$\circ$C,. The total expression level and secretion efficiency of invertase increased from 19 units/mL and 55% at 20$\circ$C to 25 units/mL and 68% at 35$\circ$C, respectively. Irrespective of the culture temperature, the invertase activity in the cellular fraction (periplasmic space and cytoplasmic fractions) was kept constant at around 33-45%.
KEM1 is known to control the spindle pole body or microtubule function, probably in response to the cellular nutritional conditions in Saccharomyces cerevisiae. Transposon insertions were performed in the cloned KEM1 gene using mini-Tn10-LUK element carrying E. coli ${\beta}$-galactosidase structural gene. A collection of ranfom Tn10-LUK insertions defined an approximately 3.5 kb region required for the KEM1 function. From this collection functional KEM1::lacZ protein fusions were identified. Indirect immunofluorescence using anti-${\beta}$-galacatosidase antibodies localized the KEM1::lacZ fusion protein to the periphery of the nucleus.
Fiber type-specific programs controlled by the transcription factor MEF2 dictate muscle functionality. Here, we show that HDAC4, a potent MEF2 inhibitor, is predominantly localized to the nuclei in fast/glycolytic fibers in contrast to the sarcoplasm in slow/oxidative fibers. The cytoplasmic localization is associated with HDAC4 hyper-phosphorylation in slow/oxidative-fibers. Genetic reprogramming of fast/glycolytic fibers to oxidative fibers by active CaMKII or calcineurin leads to increased HDAC4 phosphorylation, HDAC4 nuclear export, and an increase in markers associated with oxidative fibers. Indeed, HDAC4 represses the MEF2-dependent, PGC-$1{\alpha}$-mediated oxidative metabolic gene program. Thus differential phosphorylation and localization of HDAC4 contributes to establishing fiber type-specific transcriptional programs.
Cotesia vestalis is an endoparasitoid of Plutella xylostella larvae and injects a polydnavirus (CvBV) into its host during oviposition. In this report we characterize the gene, CvBV3307, and its products. CvBV3307 is located on segment S33 of the CvBV genome, is 517 bp, and encodes a putative protein of 122 amino acids, including a serine-rich region. The expression pattern of CvBV3307 in parasitized larvae and the subcellular localization of CvBV3307 only in granulocytes indicated that it might be involved in early protection of parasitoid eggs from host cellular encapsulation and in manipulating the hormone titer and developmental rhythm of host larvae. Western blot analysis showed that the size of the immunoreactive protein (about 55 kDa) in parasitized hosts at 48 hours post parasitization (h p.p.) is much larger than the predicted molecular weight of 13.6 kDa, which suggests that CvBV3307 undergoes extensive post-translational modification in hosts.
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2003.10a
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pp.81-81
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2003
DNA methylation is a covalent modification of DNA that can modulate gene expression and is now recognized as a major component of the epigenome. During evolution, the dinucleotide CpG has been progressively eliminated from the genome of higher eukaryotes and is present at only 5% to 10% of its predicted frequency. Approxymately 80% of the remaining CpG sites contain methylated cytosines in most vertebrates and they are distributed in a pattern that is unique in each tissue and is inversely correlated with gene expression. The pattern of methylation is faithfully maintained during cell division by the enzyme Dnmt1, the maintenance DNA methyltransferase, which catalyzes the transfer of a methyl group from S-adenosyl-methionine to the 5'-position of the cytosine ring. We have been identified bovine Dnmt1 cDNA full-length recently (AY173048) Little is known on the functions of Dnmt1 in bovine preimplantation embryos. Thus, we analyzed the specific pattern of Dnmt1 in in vitro derived/nuclear transfer bovine and in vivo derived mouse embryos to monitor the epigenetic reprogramming process. We investigated these process by using indirect immunofluresence with an antibody to Dnmt1. According to other studies, Dnmt1 accumulates in nuclei of early growing oocytes but is sequestered in the cytoplasm of mature oocytes. In 2-cell and 4-cell embryos, Dnmt1 is cytoplasmic, but at the 8-cell stage, it is present only in the nucleus. By the blastocyst stage, Dnmt1o is again found only in the cytoplasm. Thus, nuclear localization of Dnmt1o in preimplantation embryos is limited to the 8-cell stages After implantation, Dnmt1 is localized in the nucleus in mouse. However, we have found different patterns of Dnmt1 nuclear localization. Though we used the common antibody, immune-localization data revealed that Dnmt1 antibody have been detected at the nucleus in 1-cell to blastocyst embryos. Therefore, maybe we think that the functions of Dnmt1 between bovine and mice are different. In order to Identify the mechanisms that regulate DNA methylation in bovine preimplantation embryo, we have plans on using bovine oocyte and somatic specific Dnmt1 antibodies.
Using in silico approaches and RACE we cloned a full length trinucleotide (CAG) repeat-containing cDNA (cag-3). The cDNA is 2478 bp long and the deduced polypeptide consists of 140 amino acids of which 73 are glutamines. The genomic sequence spans approximately 79 kb on mouse chromosome 7 and the gene is composed of four exons. Standard and real-time PCR analyses of several mouse tissues showed that the gene is exclusively expressed in the brain and is not detected in embryonic stages. Within the brain, it is expressed throughout the forebrain region with predominant expression in the hypothalamus and olfactory bulb and very low levels in the mid- and hindbrain.
Kim, Seong-Wan;Kim, Seong-Ryul;Goo, Tae-Won;Choi, Kwang-Ho
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.37
no.2
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pp.49-54
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2018
To artificially enhance antimicrobial peptide expression in Bombyx mori, we constructed genetically engineered silkworms overexpressing Rel family transcription factor. The truncated BmRelish1 (BmRelish1t) gene contained a Rel homolog domain (RHD), nuclear localization signal (NLS), acidic and hydrophobic amino acid (AHAA)-rich region, and death domain (DD), but no ankyrin-repeat (ANK) domain. The BmRelish1t gene was controlled by B. mori cytoplasmic actin 3 promoter in the PiggyBac transposon vector. Chromosome analysis of G1 generations of a transgenic silkworm with EGFP expression confirmed stable insertion of BmRelish1t. BmRelish1t gene overexpression in transgenic silkworms resulted in higher mRNA expression levels of B. mori antimicrobial peptides such as lebocin(~20.5-fold), moricin(~8.7-fold), and nuecin(~17.4-fold) than those in normal silkworms.
Jwa, Mi-Ri;Shin, Se-Jeong;Albright, Charles F.;Song, Ki-Won
BMB Reports
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v.32
no.1
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pp.92-97
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1999
Cytokinesis and septation should be coordinated to nuclear division in the cell division cycle for precise transmission of the genome into daughter cells. byr4, an essential gene in fission yeast Schizosaccharomyces pombe, regulates the timing of cytokinesis and septation in a dosage-dependent manner. We examined the intracellular localization of the Byr4 protein by expressing byr4 as a fusion of green fluorescence protein (GFP). The Byr4 protein localizes as a single dot on the nuclear periphery of interphase cells, duplicates before mitosis, and the duplicated dots segregate with the nuclei in anaphase. The behavior of Byr4p throughout the cell cycle strongly suggests that Byr4p is localized to the spindle pole body (SPB), a microtubule organizing center (MTOC) in yeast. The presence of the Byr4 protein in the SPB is consistent with its function to coordinate mitosis and cytokinesis. We also mapped the domains of Byr4p for its proper localization to SPB by expressing various byr4 deletion mutants as GFP fusions. Analyses of the diverse byr4 deletion mutants suggest that the indirect repeats and the regions homologous to the open reading frame (ORF) YJR053W of S. cerevisiae in its C-terminus are essential for its localization to the SPB.
Park, Kyoung-ae;Tanaka, Yuji;Suenaga, Yusuke;Tamura, Taka-aki
Molecules and Cells
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v.22
no.2
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pp.203-209
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2006
TBP (TATA-binding protein)-related factor 2 (TRF2) regulates transcription during a nuber of cellular processes. We previously demonstrated that it is localized in the cytoplasm and is translocated to the nucleus by DNA-damaging agents. However, the cytoplasmic localization of TRF2 is controversial. In this study, we reconfirmed its cytoplasmic localization in various ways and examined its nuclear migration. Stresses such as heat shock, redox agents, heavy metals, and osmotic shock did not affect localization whereas genotoxins such as methyl methanesulfonate (MMS), cisplatin, etoposide, and hydroxyurea caused it to migrate to the nucleus. Adriamycin, mitomycin C and ${\gamma}$-rays had no obvious effect. We determined optimal conditions for the nuclear migration. The proportions of cells with nuclei enriched for TRF2 were 25-60% and 5-10% for stressed cells and control cells, respectively. Nuclear translocation was observed after 1 h, 4 h and 12 h for cisplatin, etoposide and MMS and hydroxyurea, respectively. The association of TRF2 with the chromatin and promoter region of the proliferating cell nuclear antigen (PCNA) gene, a putative target of TRF2, was increased by MMS treatment. Thus TRF2 may be involved in genotoxin-induced transcriptional regulation.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.3
no.1
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pp.75-81
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2001
We have constructed a novel recombinant Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV) producing the green fluorescent polyhedra. For the production of the fluorescent polyhedra, partial polyhedrin gene containing KRKK as nuclear localization site from the BmNPV polyhedrin gene and the green fluorescent protein (gfp) gene were introduced under the control of p10 promoter of BmNPV. The recombinant BmNPV was stably produced fluorescent polyhedra in the infected Bm5 cells and the morphology of the fluorescent polyhedra was similar to that of wild-type BmNPV. The fluorescent polyhedra had 32 kDa native polyhedrin and 41 kDa fusion protein. From these data, we have further developed a novel BmNPV p10-based transfer vector producing recombinant polyhedra with foreign gene Product. The novel BmNPV P10-based transfer vector is composed of partial polyhedrin gene, factor Xa, and multiple cloning sites.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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