Mammalian spermatogenesis occurs in a precise and coordinated manner in the seminiferous tubules. One of the attempts to understand the detailed biological process during mammalian spermatogenesis at the molecular level has been to identify the testis specific genes followed by study of the testicular expression pattern of the genes. From the subtracted cDNA library of rat testis prepared using representational difference analysis (RDA) method, a complimentary DNA clone encoding type III member of a DnaJ family protein, DnaJC18, was cloned (GenBank Accession No. DQ158861). The full-length DnaJC18 cDNA has the longest open reading frame of 357 amino acids. Tissue and developmental Northern blot analysis revealed that the DnaJC18 gene was expressed specifically in testis and began to express from postnatal week 4 testis, respectively. In situ hybridization studies showed that DnaJC18 mRNA was expressed only during the maturation stages of late pachytene, round and elongated spermatids of adult rat testis. Western blot analysis with DnaJC18 antibody revealed that 41.2 kDa DnaJC18 protein was detected only in adult testis. Immunohistochemistry study further confirmed that DnaJC18 protein, was expressed in developing germ cells and the result was in concert with the in situ hybridization result. Confocal microscopy with GFP tagged DnaJC18 protein revealed that it was localized in the cytoplasm of cells. Taken together, these results suggested that testis specific DnaJC18, a member of the type III DnaJ protein family, might play a role during germ cell maturation in adult rat testis.
A transient ihpRNA-induced gene silencing system based on Agrobacterium-mediated injection infiltration has been established to evaluate candidate genes involved in proanthocyanidin (PAs) biosynthesis in persimmon (Diospyros kaki Thunb.). We chose DkPDS (phytoene desaturase) as a gene-silencing target to evaluate the newly developed transient gene silencing system. Our qRT-PCR analysis indicated that two ihpRNA constructs (pHG-PDS5' and pHG-PDS3') targeted DkPDS, which also led to significantly reduce expression of DkPDS in 'Mopanshi' persimmon leaves. To further confirm the reliability of the system, we successfully utilized it for DkLAR (leucoanthocyanidin reductase) gene silencing. The expression levels of DkLAR in 'Mopanshi' and 'Eshi 1' leaves were ca. 6-fold and ca. 5-fold lower than those in leaves harboring empty vector (pHG-GFP), respectively. DMACA (4-dimethylaminocinnamaldehyde) staining and the Folin-Ciocalteau assay showed that the accumulation of PAs was markedly inhibited in 'Mopanshi', 'Eshi 1' and 'Youhou' leaves. These results indicate that DkLAR plays an important role in the accumulation of PAs in persimmon. The transient ihpRNA-induced gene silencing method developed in this study is a highly efficient and useful tool for functional analysis of persimmon genes involved in PA biosynthesis.
We have isolated a cDNA encoding a calcium-dependent protein kinase (CDPK) in Nicotiana tabacum, which was designated NtCDPK1. Accumulation of the NtCDPK1 mRNA was stimulated by various stimuli, including phytohormones, CaCl$_2$ wounding, fungal elicitors, chitin and methyl jasmonate. The NtCDPK1 gene encodes a functional Ser/Thr protein kinase of which phosphorylation activity is strongly induced by calcium. By analyzing expression of the NtCDPK1-GFP fusion protein and by immunoblotting with antibody which reacts with NtCDPK1, we found that NtCDPK1 is localized in membrane and nucleus in plant cells. Silencing expression of the NtCDPK1 transgene resulted in marked decrease of lateral root development in the transgenic tobacco plants. Yeast two hybrid screening using NtCDPK1 as a bait identified a tobacco homologue of proteasome regulatory subunit 21D7, designated Nt21D7. The 21D7 mRNA has been shown to be predominantly expressed in proliferating tissues in the cell cycledependent manner in carrot. The recombinant NtCDPK1 protein associated with Nt21D7 in vitro, and could phosphorylate the Nt21D7 protein in vitro in the presence of calcium, suggesting that Nt21D7 protein is a natural substrate of NtCDPK1 in tobacco. These results suggest that NtCDPK1 may regulate tell proliferation processes, such as lateral root formation, by regulating specificity and/or activity of proteasome-mediated protein degradation pathway.
We isolated many genes induced from pepper cDNA microarray data following their infection with the soybean pustule pathogen Xanthomonas axonopodis pv. glycines 8ra. A full-length cDNA clone of the Capsicum annuum ankyrin-repeat domain $C_3H_1$ zinc finger protein (CaKR1) was identified in a chili pepper using the expressed sequence tag (EST) database. The deduced amino acid sequence of CaKR1 showed a significant sequence similarity (46%) to the ankyrin-repeat protein in very diverse family of proteins of Arabidopsis. The gene was induced in response to various biotic and abiotic stresses in the pepper leaves, as well as by an incompatible pathogen, such as salicylic acid (SA) and ethephon. CaKR1 expression was highest in the root and flower, and its expression was induced by treatment with agents such as NaCl and methyl viologen, as well as by cold stresses. These results showed that CaKR1 fusion with soluble, modified green fluorescent protein (smGFP) was localized to the cytosol in Arabidopsis protoplasts, suggesting that CaKR1 might be involved in responses to both biotic and abiotic stresses in pepper plants.
Kim, Kangmin;Jang, Ye-Jin;Lee, Sang-Myeong;Oh, Byung-Taek;Chae, Jong-Chan;Lee, Kui-Jae
Molecules and Cells
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v.37
no.2
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pp.109-117
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2014
Microbiota in the niches of the rhizosphere zones can affect plant growth and responses to environmental stress conditions via mutualistic interactions with host plants. Specifically, some beneficial bacteria, collectively referred to as Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPRs), increase plant biomass and innate immunity potential. Here, we report that Enterobacter sp. EJ01, a bacterium isolated from sea china pink (Dianthus japonicus thunb) in reclaimed land of Gyehwa-do in Korea, improved the vegetative growth and alleviated salt stress in tomato and Arabidopsis. EJ01 was capable of producing 1-aminocy-clopropane-1-carboxylate (ACC) deaminase and also exhibited indole-3-acetic acid (IAA) production. The isolate EJ01 conferred increases in fresh weight, dry weight, and plant height of tomato and Arabidopsis under both normal and high salinity conditions. At the molecular level, short-term treatment with EJ01 increased the expression of salt stress responsive genes such as DREB2b, RD29A, RD29B, and RAB18 in Arabidopsis. The expression of proline biosynthetic genes (i.e. P5CS1 and P5CS2) and of genes related to priming processes (i.e. MPK3 and MPK6) were also up-regulated. In addition, reactive oxygen species scavenging activities were enhanced in tomatoes treated with EJ01 in stressed conditions. GFP-tagged EJ01 displayed colonization in the rhizosphere and endosphere in the roots of Arabidopsis. In conclusion, the newly isolated Enterobacter sp. EJ01 is a likely PGPR and alleviates salt stress in host plants through multiple mechanisms, including the rapid up-regulation of conserved plant salt stress responsive signaling pathways.
Kim, Suyeon;Huh, Sun Mi;Han, Hay Ju;Cho, Mi Hyun;Lee, Gang Sub;Kim, Beom Gi;Kwon, Taek Yun;Yoon, In Sun
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.90-90
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2017
Regulation of seed dormancy is important in many grains to prevent pre-harvest sprouting. To identify and understand the gene related to seed dormancy regulation, we have screened for viviparous phenotypes of rice mutant lines generated by insertion of Ds transposon in a Korean Japonica cultivar (Dongjin) background. One of the mutants, which represented viviparous phenotype, was selected for further seed dormancy regulation studies and designated dor1. The dor1 mutant has single Ds insertion in the second exon of OsDor1 gene encoding glycine-rich protein. The seeds of dor1 mutant showed a higher germination potential and reduced abscisic acid (ABA) sensitivity compared to wild type Dongjin. Over-expression of Dor1 complements the viviparous phenotype of dor1 mutant, indicating that Dor1 function in seed dormancy regulation. Subcellular localization assay of Dor1-GFP fusion protein revealed that the OsDor1 protein mainly localized to membrane and the localization of OsDOR1 was influenced by presence of a giberelin (GA) receptor OsGID1. Further bimolecular fluorescence complementation (BiFC) analysis indicated that OsDOR1 interact with OsGID1. The combined results suggested that OsDOR1 regulates seed dormancy by interacting with OsGID1 in GA response. Additionally, expression of OsDOR1 partially complemented the cold sensitivity of Escherichia coli BX04 mutant lacking four cold shock proteins, indicating that OsDOR1 possessed RNA chaperone activity.
Human UHRF1 (ubiquitin-like PHD and RING finger domain-containing 1) has been reported to be over-expressed in many cancers, but its role in ovarian cancer remains elusive. Here, we determined whether knockdown of UHRF1 by lentivirus-mediated shRNA could inhibit ovarian cancer cell growth. Lentivirus-mediated short hairpin RNAs (lv-shRNAs-UHRF1) were designed to trigger the gene silencing RNA interference (RNAi) pathway. The efficiency of lentivirus-mediated shRNA infection into HO-8910 and HO-8910 PM cells was determined using fluorescence microscopy to observe lentivirus-mediated GFP expression and was confirmed to be over 80 percent. UHRF1 expression in infected HO-8910 and HO-8910 PM was evaluated by real-time PCR and Western blot analysis. The Cell Counting Kit-8 (CCK-8) assay was used to measure cell viability; flow cytometry and Hoechst 33342 assay was applied to measure cell cycle arrest and apoptosis. Cell invasion was assessed using transwell chambers. Our results demonstrated that the loss of UHRF1 promoted HO-8910 and HO-8910 PM cell apoptosis, while inhibiting cell proliferation. In addition, UHRF1 knockdown significantly inhibited the invasion of human ovarian cancer cells. In the present study, we also showed that depleting HO-8910 cells of UHRF1 caused activation of the DNA damage response pathway, with the cell cycle arrested in G2/M-phase. The DNA damage response in cells depleted of UHRF1 was illustrated by phosphorylation of CHK (checkpoint kinase) 2 on Thr68, phosphorylation of CDC25 (cell division control 25) on Ser 216 and phosphorylation of CDK1 (cyclin-dependent kinase 1) on Tyr 15.
Park, Myeong-Soo;Kang, Yoon-Hee;Cho, Sang-Hee;Seo, Jeong-Min;Ji, Geun-Eog
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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2001.06a
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pp.155-157
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2001
Bifidobacterium spp. is nonpathogenic, gram-positive and anaerobic bacteria, which inhabit the intestinal tract of humans and animals. In breast-fed infants, bifidobacteria comprise morethan 90% of the gut bacterial population. Bifidobacteria spp. are used in commericial fermented dairy products and have been suggested to exert health promoting effects on the host by maintaining intestinal microflora balances, improving lactose tolerance, reducing serum cholesterol levels, increasing synthesis of vitamins, and aiding the immune enchancement and anticarcinogenic activity for the host. These beneficial effects of Bifidobacterium are strain-related. Therefore continued efforts to improve strain characteristics are warranted. in these respect, development of vector system for Bifidobacterium is very important not only for the strain improvement but also because Bifidobacterium is most promising in serving as a delivery system for the useful gene products, such as vaccine or anticarcinogenic polypeptides, into human intestinal tract. For developing vector system, we have characterized several bifidobacterial plasmids at genetic level and developed several shuttle vectors between E. coli and Bifidobacterium using them. Also, we have cloned and sequenced several metabolic genes and food grade selection marker. Also we have obtained bifidobacterial surface protein, which will be used as the mediator for surface display of foreign genes. Recently we have succeeded in expressing amylase and GFP in Bifidobacterium using our own expression vector system. Now we are in a very exciting stage for the molecular breeding and safe delivery system using probiotic Bifidobacterium strains.
We isolated and identified a novel probiotic strain, Lactobacillus sakei proBio65 from Kimchi. To determine whether L. sakei proBio65 has an immunomodulatory effect, we investigated cells via an in vitro screening system which co-cultured freshly isolated mesenteric lymphocyte with probiotics. A significant increase of $Foxp3^+$ transcription regulatory factor expression was observed, followed by an increase in anti-inflammatory cytokines transcription regulatory factor. L. sakei proBio65 exhibited high levels of the IL-10/IL-12 production ratio and enhanced Foxp3 expression in vitro. L. sakei proBio65 may thus be therapeutically useful for the modulation of inflammatory immune disorders.
In Caenorhabditis elegans, SHN-1 is the homologue of SHANK, a scaffolding protein. In this study, we determined the molecular basis for SHN-1/SHANK in the regulation of innate immune response to fungal infection. Mutation of shn-1 increased the susceptibility to Candida albicans infection and suppressed the innate immune response. After C. albicans infection for 6, 12, or 24 h, both transcriptional expression of shn-1 and SHN-1::GFP expression were increased, implying that the activated SHN-1 may mediate a protection mechanism for C. elegans against the adverse effects from fungal infection. SHN-1 acted in both the neurons and the intestine to regulate the innate immune response to fungal infection. In the neurons, GLR-1, an AMPA ionotropic glutamate receptor, was identified as the downstream target in the regulation of innate immune response to fungal infection. GLR-1 further positively affected the function of SER-7-mediated serotonin signaling and antagonized the function of DAT-1-mediated dopamine signaling in the regulation of innate immune response to fungal infection. Our study suggests the novel function of SHN-1/SHANK in the regulation of innate immune response to fungal infection. Moreover, our results also denote the crucial role of neurotransmitter signals in mediating the function of SHN-1/SHANK in regulating innate immune response to fungal infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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