This study was conducted to investigate the effects of in vitro fertilization, culture and embryo development according to in vitro maturation rate, protectant composition and equilibrium time after frozen /thawing of bovine immature oocytes. This results obtained in studies on the effect of different cryoprotectants on the viability, maturation and development of in vitro bovine oocytes were as follow: 1.The post-thawing of immature oocytes matured to metaphase II during culture time for 0 to 26 h, and those group (62~3%) were low than control group (76.7%). The optimal maturation time of frozen-thawed immature oocytes was at 24 h. 2.The viability of cryopreserved immature oocytes was not affected by sort of cryoprotectants. The developmental competence of frozen4hawed oocytes was not affected by cryoprotectants. These results indicate that an optimal maturation time of frozen /thawed immature oocytes was at 24h. Furthermore the viability of cryopreserved immature oocytes was not affected by sort of cryoprotectants and developmental competence of frozen /thawed oocytes.
This experiment was carried out to investigate effects of DMSO or ethylene glycol as a cryopotectant and of freezing methods on survival rate of forozen-thawed rat 2-cell embryos by morphological observation. 2-cell embryos were recovered from oviducts of Sprague Dawley females mated with males of same strain on day 2 of pregnancy after inducing superovulation by intrapertioneal injection of PMSG and HCG. In slow freezing and thawing groups, embryos were frozen to -79$^{\circ}C$ or -196$^{\circ}C$ in a glass test tube containing 0.2ml PBI with 1.5M DMSO or 1.2M ethylene glycol at a rate of 0.3-1.0C/min. and thawed slowly. When samples were frozen to -79$^{\circ}C$, higher survival rate was obtained in the medium containing DMSO (43.9%) than ethylene glycol (41%). And similar result was obtained (32.5% in DMSO vs. 31.4% in ethylene glycol) when samples were frozen. In rapid freezing and thawing groups, embryos were frozen to -79 or -196$^{\circ}C$ in a glass test tube containing 0.2ml of PBI with 1.5M DMSO or 1.2M ethylene glycol by rapid cooling, and thawed rapidly. When samples were frozen to -79$^{\circ}C$, 1.5M DMSO (13.2%) was more effective than 1.2M ethylene glycol (6.1%). When the storage temperature was -196$^{\circ}C$, survival rates were 9.8% in 1.5M and 5.4% in 1.2M ethylene glycol.
This case report describes the pregnancy following the transfer of embryos generated from intracytoplasmic sperm injection (ICSI) using frozen-thawed sperms obtained by testicular sperm extraction (TESE) in patient with hypoplasia of vas deferens.
Park, Y.J;S.J Song;J.T Do;B.S Yoon;Kim, A.J;K.S Chung;Lee, H.T
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.11a
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pp.78-78
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2002
The role of heat shock proteins in shielding organism from environmental stress is illustrated by the large-scale synthesis of these protein by the organism studied to date. However, recent evidence also suggests an important role for heat shock protein in fertilization and early development of mammalian embryos. Effects of elevated in vitro temperature on in vitro produced bovine embryos were analysed in order to determine its impact on the expression of heat shock protein 70 (HSP70) by control and frozen-thawed after in vitro fertilization (IVF) or nuclear transfer (NT). The objective of this study was to assess the developmental potential in vitro produced embryos with using of the various containers and examined expression and localization of heat shock protein 70 after it's frozen -thawed. For the vitrification, in vitro produced embryos at 2 cell, 8 cell and blastocysts stage after IVF and NT were exposed the ethylene glycol 5.5 M freezing solution (EG 5.5) for 30 sec, loaded on each containers such EM grid, straw and cryo-loop and then immediately plunged into liquid nitrogen. Thawed embryos were serially diluted in sucrose solution, each for 1 min, and cultured in CRI-aa medium. Survival rates of the vitrification production were assessed by re-expanded, hatched blastocysts. There were no differences in the survival rates of IVF using EM grid, cryo-loop. However, survival rates by straw were relatively lower than other containers. Only, nuclear transferred embryos survived by using cryo-loop. After IVF or NT, in vitro matured bovine embryos 2 cell, 8 cell and blastocysts subjected to control and thawed conditions were analysed by semiquantitive reverse transcription polymerase chain reaction methods for hsp 70 mRNA expression. Results revealed the expression of hsp 70 mRNA were higher thawed embryos than control embryos. Immunocytochemistry used to localization the hsp70 protein in embryos. Two, 8-cell embryos derived under control condition was evenly distributed in the cytoplasm but appeared as aggregates in some embryos exposed frozen-thawed. However, under control condition, blastocysts displayed aggregate signal while Hsp70 in frozen-thawed blastocysts appeared to be more uniform in distribution.
This study was conducted to evaluate effect of ${\alpha}$-linolenic acid (ALA) and bovine serum albumin (BSA) on viability, acrosome reaction and mitochondrial intact in frozen-thawed boar sperm. The boar semen was collected by gloved-hand method and cryopreserved using freezing extender containing 3 ng/mL ALA and/or $20\;{\mu}g/mL$ BSA. Cryo-preserved boar sperms were thawed in $37^{\circ}C$ water-bath for 45 sec to analysis. Viability, acrosome reaction, and mitochondrial intact were analyzed using flow cytometry. In results, viability of frozen-thawed boar sperm was significantly higher in only ALA+BSA supplement group than control group (p<0.05), whereas there was no difference either in ALA or BSA supplement. However, acrosome reacted sperm in both of live and all sperm population were significantly decreased in all treatment groups than control (p<0.05). Interestingly, mitochondrial intact of boar sperm was enhanced in ALA and ALA+BSA groups compared with control (p<0.05). In this study, we showed that supplementation of ALA and BSA in freezing extender enhanced the sperm viability, mitochondrial intact and decrease acrosomal membrane damage. In conclusion, our findings suggest that quality of frozen-thawed sperm in mammalians could improve by using of ALA and BSA.
Vitrification methods are commonly used for mammalian reproduction through the long-term storage of blastocyst produced in vitro. However, the survival and quality of embryos following vitrification are significantly low compared with blastocyst from in vitro production (IVP). This study evaluates that the survival of frozen-thawed bovine embryos was relevant to mitochondrial superoxide derived mitochondrial activity. Here we present supplementation of the cryopreservation medium with Mito-TEMPO (0.1 µM) induced a significant (p < 0.001; non-treated group: 56.8 ± 8.7%, reexpanded at 24 h vs Mito-TEMPO treated group: 77.5 ± 8.9%, re-expanded at 24 h) improvement in survival rate of cryopreserved-thawed bovine blastocyst. To confirm the quality of vitrified blastocyst after thawing, DNA fragmentation of survived embryos was examined by TUNEL assay. As a result, TUNEL positive cells rates of frozen-thawed embryos were lower in the Mito-TEMPO treated group (4.2 ± 1.4%) than the non-treated group (7.1 ± 3.5%). In addition, we investigated the intracellular ROS and mitochondrial specific superoxide production using DCF-DA and Mito-SOX staining in survived bovine embryos following vitrification depending on Mito-TEMPO treatment. As expected, intracellular ROS levels and superoxide production of vitrified blastocysts after cryopreservation were significantly reduced (p < 0.05) according to Mito-TEMPO supplement in freezing medium. Also, mitochondrial activity measured by MitoTracker Orange staining increased in the frozen-thawed embryos with Mito-TEMPO compared with non-treated group. These results indicate that the treatment of Mito-TEMPO during cryopreservation might induce reduction in DNA fragmentation and apoptosis-related ROS production, consequently increasing mitochondrial activation for developmental capacity of frozen-thawed embryos.
Park, Yong-Soo;Park, Hum-Dae;Jang, Yong-Seok;Cho, Gil-Jae
Journal of Embryo Transfer
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v.23
no.3
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pp.161-166
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2008
The techniques for the collection, cooling and freezing of semen and artificial insemination of horses are not fully understood in Korea. We investigated the percentages of total motile (TM) and progressively motile (PM) sperms after the collection, cooling and freezing of stallion semen. The average volume of semen was 167 ml in Thoroughbred and 68 ml in Arab. The average numbers of spermatozoa in Thoroughbred and Arab were $104\times10^6/ml$ and $86\times10^6/ml$ respectively. The average percentages of TM and PM were 82.3% and 88.6% in Thoroughbred, and 61.4% and 82.6% in Arab, respectively. The average percentage of TM at 4 hr after cooling at $5^{\circ}C$ was significantly lower than that at 0 hr ($30.0\pm4.1%\;vs.\;78.0\pm2.5%,\;p<0.05$), but the percentage of PM was similar between 66.5 and 73.2% at 0, 1, and 4hr. The average percentage of frozen-thawed Thoroughbred semen frozen in MFR5 extender was 56.2%, which was significantly higher than that of the semen frozen in LE extender (average 32.9%, p<0.05). The percentage of TM in Arab was similar for semen frozen in MFR5 extender and LE extender (18.2% and 21.2%, respectively), but the percentage of PM was significantly higher in sperm frozen in MFR5 extender than in sperm frozen in LE extender (69.0% vs. 36.4%, p<0.05). Four mares were artificially inseminated by Thoroughbred frozen-thawed semen and one of them fertilized at 11 day after artificial insemination. In this study, the collection, cooling and freezing of equine semen were possible under domestic conditions.
Han, Ae Ra;Park, Chan Woo;Lee, Hyoung-Song;Yang, Kwang Moon;Song, In Ok;Koong, Mi Kyoung
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.39
no.3
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pp.114-117
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2012
Objective: It is well known that fresh blastocyst transfer results in better pregnancy outcomes with a smaller number of transferred embryos compared with cleavage stage embryo transfer. However, in terms of frozen-thawed blastocyst transfer, only a few studies are available. We aimed to evaluate clinical outcomes of frozen-thawed embryo transfer (FET) with blastocysts. Methods: Retrospective analysis of FET cycles with blastocysts (B-FET) between Jan 2007 and June 2009 was performed. Age-matched FET cycles with cleavage stage embryos (C-FET) during the same period were collected as controls. A total of 58 B-FET cycles were compared with 172 C-FET cycles and also compared with those of post-thaw extended culture blastocysts from frozen pronuclear stage embryos (22 cycles). Results: There was no difference in the patient characteristics of each group. The embryos' survival rates after thawing were comparable (>90%) and there was no difference in the implantation rate or clinical and ongoing pregnancy rate among the three groups. Conclusion: In FET, blastocyst transfers may not present better pregnancy outcomes than cleavage stage embryo transfers. A further large-scale prospective study is needed.
This study was carried out to obtain informations regarding the effect of N-acetyl-D-glucosamine in the LEY (lactoseegg yolk) diluent according to incubation time in 5 ml maxi-straw and the effects of freezing rate, thawing temperature and thawing time in the LEN (lactose-egg yolk and N-acetyl-D-glucosamine) diluent on acrosome morphology and motility of frozen-thawed boar sperm. The study showed that the LEN diluent was higher post-thaw NAR (normal apical ridge) acrosome than the LEY diluent for 0.5 h incubation at 37$^{\circ}C$. However, there were no differences between the LEN and LEY diluents on post-thaw sperm motility according to incubation time. The straws frozen from 5.0 cm (20$^{\circ}C$/min) to 17.0 cm (1$^{\circ}C$/min) above the liquid nitrogen surface did not show any significant differences on post-thaw sperm motility. However, the straws frozen above 5.0 cm from the liquid nitrogen surface were higher NAR acrosome than those frozen above 17.0 cm. The post-thaw percentages of motile sperm and NAR acrosome were significantly higher (p<0.05) for the maxi-straws submerged for 40 or 45 sec in a 52$^{\circ}C$ water bath than for 30, 35, 50 or 55 sec. The mean sample temperatures of maxi-straws after 40 or 45 sec submersion were 20.7 or 26.4$^{\circ}C$. In conclusion, the sample temperature of the thawed semen was very important for post-thaw sperm survival in the LEN diluent of 5 ml maxi-straw. When the temperature of the thawed semen was 20.7$^{\circ}C$, the percentages of motile sperm and NAR acrosome were highest.
Park C. S.;Li Z. H.;Sung N. D.;Jin D. I.;Cong P. Q.;Kim E. S.;Song E. S.;Yi Y. J.
Reproductive and Developmental Biology
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v.29
no.4
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pp.253-257
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2005
This study was carried out to evaluate the effects of washing medium, breed and washing temperature of fresh and frozen-thawed boar sperm on mitochondrial activity and membrane integrity by flow cytometry. More than $80\%$ of fresh sperm washed with mTLP-PVA medium at $20^{\circ}C$ exhibited an intact membrane and a functional mitochondrion. With frozen-thawed samples, a large number of sperm showed both damaged membrane $(36.4\~46.9\%)$ and nonfunctional mitochondrion $(55.1\~71.1\%)$ in the mTLP-PVA and BTS washing media at $20^{\circ}C$. There were no breed effects of fresh and frozen-thawed sperm on mitochondrial activity and membrane integrity. The percentages of damaged membrane of fresh and frozen sperm, respectively, were higher at $4^{\circ}C$ washing temperature than at $20^{\circ}C$ washing temperature in the mTLP-PVA medium. We found that washing medium and washing temperature of fresh and frozen-thawed boar sperm were important for the analyses of mitochondrial activity and membrane integrity by flow cytometry.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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