Image-based, high-content screening assays demand solutions for image segmentation and cellular compartment encoding to track critical events - for example those reported by GFP fusions within mitosis, signalling pathways and protein translocations. To meet this need, a series of nuclear/cytoplasmic discriminating probes have been developed: DRAQ5$^{TM}$ and CyTRAK Orange$^{TM}$. These are spectrally compatible with GFP reporters offering new solutions in imaging and cytometry. At their most fundamental they provide a convenient fluorescent emission signature which is spectrally separated from the commonly used reporter proteins (e.g. eGFP, YFP, mRFP) and fluorescent tags such as Alexafluor 488, fluorescein and Cy2. Additionally, they do not excite in the UV and thus avoid the complications of compound UV-autofluorescence in drug discovery whilst limiting the impact of background sample autofluorescence. They provide a convenient means of stoichiometrically labelling cell nuclei in live cells without the aid of DMSO and can equally be used for fixed cells. Further developments have permitted the simultaneous and differential labelling of both nuclear and cytoplasmic compartments in live and fixed cells to clearly render the precise location of cell boundaries which may be beneficial for quantitative expression measurements, cell-cell interactions and most recently compound in vitro toxicology testing.
Monoamine oxidases catalyze the oxidative deamination of dietary amines and amine neurotransmitters, and assist in maintaining the homeostasis of the amine neurotransmitters in the brain. Dysfunctions of these enzymes can cause neurological and behavioral disorders including Parkinson's and Alzheimer's diseases. To understand their physiological roles, efficient assay methods for monoamine oxidases are essential. Reviewed in this Perspective are the recent progress in the development of fluorescent probes for monoamine oxidases and their applications to enzyme assays in cells and tissues. It is evident that still there is strong need for a fluorescent probe with desirable substrate selectivity and photophysical properties to challenge the much unsolved issues associated with the enzymes and the diseases.
Treponema denticola is a gram-negative anaerobe that can cause periodontal disease. The adhesion of this bacterium to host tissues is considered to be the primary event in the colonization and infection of a host. Fibrinogen is generally found in damaged tissues resulting from periodontitis. The binding ability of T. denticola to fibrinogen may therefore be an important virulence factor in inducing periodontal diseases. It has been reported recently that oral spirochetes can be labeled with fluorescent fatty acids and we speculated that this labeling method could be used in an oral spirochete binding assay. The binding of several different strains of T. denticola to immobilized human fibrinogen was therefore tested using the fluorescent fatty acid labeling method. In the case of immobilized fibrinogen, the T. denticola ATCC 35405 strain showed saturable binding to immobilized fibrinogen. Indeed, all four different T. denticola strains tested in this experiment, T. denticola ATCC 35405, T. denticola ATCC 33520, T. denticola ATCC 35404 and T. denticola OTK showed binding to fibrinogen. The fluorescent fatty acid labeling method thus shows utility in binding assays for T. denticola, different strains of which can generally bind to immobilized fibrinogen.
Eukaryotic cells consist of a complex network of thousands of proteins present in different organelles where organelle-specific cellular processes occur. Identification of the subcellular localization of a protein is important for understanding its potential biochemical functions. In the post-genomic era, localization of unknown proteins is achieved using multiple tools including a fluorescent-tagged protein approach. Several fluorescent-tagged protein organelle markers have been introduced into dicot plants, but its use is still limited in monocot plants. Here, we generated a set of multicolored organelle markers (fluorescent-tagged proteins) based on well-established targeting sequences. We used a series of pGWBs binary vectors to ameliorate localization and co-localization experiments using monocot plants. We constructed different fluorescent-tagged markers to visualize rice cell organelles, i.e., nucleus, plastids, mitochondria, peroxisomes, golgi body, endoplasmic reticulum, plasma membrane, and tonoplast, with four different fluorescent proteins (FPs) (G3GFP, mRFP, YFP, and CFP). Visualization of FP-tagged markers in their respective compartments has been reported for dicot and monocot plants. The comparative localization of the nucleus marker with a nucleus localizing sequence, and the similar, characteristic morphology of mCherry-tagged Arabidopsis organelle markers and our generated organelle markers in onion cells, provide further evidence for the correct subcellular localization of the Oryza sativa (rice) organelle marker. The set of eight different rice organelle markers with four different FPs provides a valuable resource for determining the subcellular localization of newly identified proteins, conducting co-localization assays, and generating stable transgenic localization in monocot plants.
A phosphate-specific and fluorescent probe was prepared for label-free phosphatase assays based on fluorescence polarization. By using the probe, dephosphorylation reactions of DNA and protein substrates by calf intestinal alkaline phosphatase (CIP) could effectively be monitored in real-time. Since this assay method does not require additional materials such as labeled substrates and phosphospecific antibodies to obtain fluorescence polarization signals, it is simple, cost-effective, and expected to be useful not only for measuring activity of phosphatases but also for high-throughput screening of phosphatase inhibitors.
본 연구를 통해 환경 유해성을 평가하기 위한 동물세포를 개발했고 이를 이용한 모니터링 방법 연구와 다양한 독성 물질에 대한 반응성을 확인했다. 개발된 독성 모니터링 동물세포(KFC-A10)는 각 독성 물질에 따라 빛의 발현 양이 증가하는 성향을 가지므로 이번 실험에서 사용된 MMC, BPA, ${\gamma}-ray$에 농도 의존적으로 빛의 양이 증가함을 관찰할 수 있었다. 특히 BPA의 경우는 환경호르몬으로 알려진 바 그 estrogenic 효과를 관찰할 수 있었다.
The present study characterized the fast skeletal myosin light chain-2 gene (mlc2f) in the euryhaline Javanese ricefish (Oryzias javanicus: Beloniformes). Coding nucleotide and deduced amino acid sequences of Javanese ricefish mlc2f were well conserved in the vertebrate lineage. Javanese ricefish mlc2f showed a typical seven-exon structure, and its promoter exhibited transcription factor binding motifs common to most muscle-specific genes. However, Javanese ricefish mlc2f also displayed tandem duplications of intronic sequences in both intron 1 and intron 3. Based on quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction, the mlc2f transcripts were highly predominant in skeletal muscles of adults and were differentially modulated during embryonic development. Microinjection of the mlc2f promoter-driven red fluorescent protein (RFP) reporter construct successfully exhibited heterologous expression of the fluorescent reporter, primarily in muscular areas of hatchlings, although the distribution pattern of RFP signals was not uniform due to the mosaic nature of the introduced transgene. Data from this study indicate that the Javanese ricefish mlc2f gene has undergone "intra-intronic" duplication events in a species-specific manner and that the mlc2f regulator may also be useful in heterologous expression assays of the skeletal muscles of this species.
목 적: 본 연구에서는 삼핵산 반복서열 확장에 의해 발병하는 헌팅톤병, 척수소뇌성 운동실조증과 X-염색체 취약 증후군 등에 대한 착상전 유전진단을 시행하기 위한 전임상 검사에서 진단 방법을 최적화하는 과정을 통해 얻은 결과들에 대해 기술하고자 한다. 연구방법: 단일 림프구를 이용한 임상전 검사에서는 서로 다른 allele를 갖고 있는 환자의 단일 세포를 사용하였으며, 헌팅톤병과 척수소뇌성 운동실조증에서는 fluorescent semi-nested PCR 시행 후 fragment analysis를 수행하였다. X-염색체 취약 증후군의 경우 multiple displacement amplification (MDA) 방법을 이용한 whole genome amplification에서 얻어진 MDA 산물로 fluorescent PCR을 시도하였다. 결 과: 헌팅톤병의 경우 단일 림프구 시료 모두에서 CAG repeats 증폭에 성공하여 100.0%의 증폭성공률과 14.0% allele drop-out (ADO) rate를, 척수소뇌성 운동실조증의 경우 94.7%의 증폭성공률과 5.6%의 ADO rate을 나타내었다. X-염색체 취약 증후군의 경우 fluorescent semi-nested PCR 방법만으로는 단일 림프구 시료에서 CGG repeats이 증폭되지 않았지만, MDA 산물을 이용한 fluorescent PCR 결과 84.2%의 증폭성공률과 31.3%의 ADO rate을 얻을 수 있었다. 결 론: 본 연구를 통해 헌팅톤병과 척수소뇌성 운동실조증의 착상전 유전진단에는 fluorescent semi-nested PCR 방법의 적용이 가능함을 확인하였으며, X-염색체 취약 증후군의 경우에는 MDA를 이용한 fluorescent PCR 방법을 사용해야 함을 알 수 있었다. 유전자의 변이에 대한 분석이 쉽지 않은 단일 유전자 이상에 대한 착상전 유전진단의 경우 다양한 유전자 분석 방법을 이용한 단일 세포에서의 진단 방법의 최적화 연구가 필수적으로 선행되어야 할 것으로 사료된다.
We have developed a fluorescence optical detection system using a digital micromirror device (DMD) for monitoring 3D cell culture matrices in situ. Full 3D imaging with fast scanning speed was implemented by the combined action of a DMD and a motorized stage. Imaging results with fluorescent microbeads measure the minimum axial resolution of the system as $6.3{\mu}m$, while full 1-mm scanning through 3D alginate-based matrix was demonstrated. For cell imaging, improved images were obtained by removing background fluorescence although the scanning distance was reduced because of low intracellular fluorescence efficiency. The system is expected to be useful to study various dynamics and behaviors of 3-dimensionally cultured cells in microfluidic systems.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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