Choi, Yeon Hee;Lee, Jun Seung;Bae, So Young;Yang, Keun Jae;Yeom, Kyu Won;Jo, Dong Hyeok;Kang, Ock Hwa;Baik, Hyung Suk
Journal of Life Science
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v.23
no.2
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pp.259-266
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2013
To isolate the fibrinolytic enzyme, 268 strains from 21 samples were morphologically isolated from Cheonggukjang collected from Korea and Japan. Among the 268 strains, protease-producing bacteria were isolated in nutrient agar medium including 1% skimmed milk. As a result of this, 22 strains were isolated. Apiweb site was used to identify these strains based on their biochemical properties. In addition, 16S rRNA sequencing was performed to identify the strain. Most of the identified strains were Bacillus subtilis and B. amyloliquefaciens. Fibrinolytic enzyme activity was measured with the fibrin plate method. Five strains were finally selected: A2-14, A2-20, C1-05, C1-09, and F2-01. Of those five strains, the A2-20 strain, which is close to B. amyloliquefaciens, showed the strongest fibrinolytic activity. The fibrinolytic enzyme produced by the A2-20 strain was partially purified from culture supernatant by gel filtration and ion exchange chromatography. The optimal pH and temperature values of the partially purified enzyme were 7.0 and $35^{\circ}C$, respectively. Purified protein analysis was carried out with SDS-PAGE and zymography. A genetic analysis was also conducted by PCR based on the consensus sequence of fibrinolytic enzyme. Corresponding genes with a partial sequence of the A2-20 strain were identified.
Kim, Seon-Ah;Son, Hong-Joo;Kim, Keun-Ki;Park, Hyun-Chul;Lee, Sang-Mong;Cho, Byung-Wook;Kim, Yong-Gyun
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.22
no.2
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pp.83-93
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2011
Biochemical and enzymatic characterization for extracellular protease isolated from Cordyceps militaris cultivated on rice bran medium was investigated. C militaris produced proteolytic enzymes from 10 days after inoculation, maximum enzyme production was found at 25 days. The optimum temperature and pH of proteases production was at $25^{\circ}C$ and pH 7.0, respectively. The protease activity was observed in the four peaks (Pro-I, Pro-II, Pro-III, and Pro-IV) separated through Sephadex G-100 column chromatography. The separated protease was optimally active at $25^{\circ}C$. Optimum pH of the protease was between 7 and 8. Enzyme was also stable over at $30-80^{\circ}C$. The enzyme was highly stable in a pH range of 4-9. Protease activity was found to be slightly decreased by the addition of $Mg^{2+}$, $Mn^{2+}$, $Zn^{2+}$, $Fe^{2+}$ and $Cu^{2+}$, whereas inhibited by the addition of $Ca^{2+}$ and $Co^{2+}$ Protease activity was inhibited by protease inhibitor PMSF. On the other hand, the partially purified protease was investigated on proteolytic protease activity by zymogram gel electrophoresis using three substances (casein, gelatin and fibrin). Four active bands (F-I, FII, F-III, and F-IV) of fibrin degradation were revealed on fibrin zymogram gels. Both of F-II and FIII showed caseinolytic, fibrinolytic and gelatinolytic activities in three gels. Thermostability, pH stability, and pH-thermostability of the enzyme determined the residual fibrinolytic activity also displayed on fibrin zymogram gel. The only one enzyme (F-II) displayed over a broad range of temperature at $30-90^{\circ}C$. The FII displayed fibrinolytic activity in the pH range 3-5, but was inactivated in the range of pH 6-11. The F-I and F-III showed enzyme activity in the pH range of 6-11. In the pH-thermostability, the F-II only kept fibrinolytic activity after heating at $100^{\circ}C$ for 10, 20 and 30 min at pH 3 and pH 7, respectively. On the other hand, the F-II was retained activity until heating for 10 min under pH 11 condition. By using fibrin zymogram gel electrophoresis, extracellular fibrinolytic enzyme F-II from C. militaris showed unusual thermostable under acid and neutral conditions.
The mucilage production and tyrosine content in soy milk cake (SMC) fermented by Bacillus firmus NA-1, Bacillus subtilis GT-D, and B. subtilis KU-A was improved by fortification with 10% defatted soybean flour. The fibrinolytic activity and consistency of the SMC were drastically increased by solid-state fermentation for 1 day. However, the consistency of the fermented SMC gradually decreased during fermentation for 3 days. Furthermore, the tyrosine content of the freeze-dried powder of SMC fermented by three Bacillus sp. was 9 times higher than that of unfermented SMC. The soybean proteins, including the 7S and 11S subunits, were partially digested during alkaline fermentation, producing lower molecular-weight peptides. The fibrinolytic enzyme produced in SMC fermented by B. firmus NA-l and B. subtilis KU-A exhibited higher thermal stability than that of B. subtilis GT-D fermentation. The powder obtained from B. subtilis GT-D fermentation had an ${\alpha}$-amylase activity and lower consistency compared to those of B. firmus NA-1 and B. subtilis KU-A. In addition, this powder contained 6.3% moisture content, 27% crude protein content and 9 units of fibrinolytic activity and proteolytic activity.
To investigate the intestinal absorption of a fibrinolytic and proteolytic lumbrokinase extracted from Eisenia andrei, we used rat everted gut sacs and an in situ closed-loop recirculation method. We extracted lumbrokinase from Eisenia andrei, and then raised polyclonal antibody against lumbrokinase. Fibrinolytic activity and proteolytic activity in the serosal side of rat everted gut sacs incubated with lumbrokinase showed dose- and time-dependent patterns. Immunological results obtained by western blotting serosal side solution using rat everted gut sacs method showed that lumbrokinase proteins between 33.6 and 54.7 kDa are absorbed mostly by the intestinal epithelium. Furthermore, MALDI- TOF mass spectrometric analysis of plasma fractions obtained by in situ recirculation method confirmed that lumbrokinase F1 is absorbed into blood. These results support the notion that lumbrokinase can be absorbed from mucosal lumen into blood by oral administration.
An anticoagulant/fibrinolytic protease was purified to homogeneity from the earthworm Lumbricus rubellus. The protein was a single chain glycoprotein of 32 kDa that exhibited strong proteolytic activity on human thrombin and fibrin clots. Proteolytic degradation of these plasma proteins by the purified enzyme occurred at a neutral pH range. Among several human plasma proteins tested as possible substrates for the protease reaction, the 32 kDa enzyme specifically hydrolyzed both thrombin and fibrin polymers without affecting other proteins, such as serum albumin, immunoglobulin, and hemoglobin. Treatment of the purified enzyme at neutral pH with either phenylmethylsulfonylfluoride or soybean trypsin inhibitor resulted in a loss of catalytic activity. The enzyme hydrolyzed the chromogenic substrate H-D-Phe-L-Pipecolyl-L-Arg-p-nitroanilide with a $K_m$ value of 1.1 ${\mu}M$ at a neutral pH. These results suggest that the anticoagulant/fibrinolytic enzyme from Lumbricus rubellus is a member of the serine protease family having a trypsin-like active site, and one of the potential clevage sites for the enzyme is the carbonyl side of arginine residues in polypeptide chains.
By adding sodium chloride (2.5%) into a Bacillus amyloliquefaciens DJ-4 culture broth, two serine-type fibrinolytic proteases with a molecular weight of 29 (subtilisin DJ-4) and 38-kDa were stimulated on the SDS-fibrin zymogram or inhibitor gels. B. amyloliquefaciens DJ-4 showed the highest proteolytic activity (5.52 plasmin NIH unit/ml) on the fibrin plate based on the molar ratio when cells were subjected to the 2.5% NaCl. Using a fibrin plate, the secreted protease from this strain in the presence of 5% NaCl showed that about 49% of the enzyme's activity remained after incubation at $60^{\circ}C$ for 30 min, but as the salt concentration was increased (10% NaCl) the activity nearly disappeared (0.14 plasmin NIH unit/ml). However, through a fibrin zymography assay, three fibrinolytic enzymes (38, 53 and 80-kDa) from the cells in the presence of 10% NaCl were detected. Also, two salt-activated serine-type fibrinolytic professes (29 and 38kDa) showed thermostability from 65 to $70^{\circ}C$ for 30 min. Furthermore, these professes also showed stability, pH 6-11. In particular, 29-kDa (subtilisin DJ-4) was very stable in the pH range of 4-11 at $4^{\circ}C$ for 48 h.
The effect of fivrinolytic enzyme produced from Bacillus subtilis K-54 on the thrombosis and stress in vivo was investigated. Each partially purified fibrinolytic enzyme of 4 protein casein unit was administered orally for 3 days before intravenously injection with collagen and epinephrine. In the mice group administered with the enzyme and increased life span of mice was observed in comparison with that of control. The result suggest that the enzyme may prevent the formation of thrombos in vivo. Administration of the enzyme did not influence to stress itself because 5-hydroxyindoleacetatic acid concentration of brain in the mice group with stress did not decreased after the administration of the enzyme. The value of lipid peroxide (LPO) of the liver and brain cells in the group treted with the enzyme was lower than that of control. However, protein degradation (PDP value showed no significant difference between treatment and control groups. In addition, the value of activated partial thromboplastin time (APTT), protrombin time (PT0 and antiplasmin in blood were higher in the stress group than that of the enzyme treated group.
Bacillus subtilis CH3-5 was isolated from cheonggukjang prepared according to traditional methods. CH3-5 secreted at least four different fibrinolytic proteases (63, 47, 29, and 20 kDa) into the culture medium. A fibrinolytic enzyme gene, aprE2, encoding a 29kDa enzyme was cloned from the genomic DNA of CH3-5, and the DNA sequence determined. aprE2 was overexpressed in heterologous B. subtilis strains deficient in extracellular proteases using a E. coli-Bacillus shuttle vector. A 29 kDa AprE2 band was observed and AprE2 seemed to exhibit higher activities towards fibrin rather than casein.
These studies were carried out to characterize the physiological functionalities of Codonopsis lanceolata, Cornus officinalis, and their mixtures. We investigated the antioxidative, fibrinolytic, and ${\alpha}$-glucosidase inhibitory activities of them. The antioxidative activities of Codonopsis lanceoiata and Cornus officinalis were 87% and 90%, respectively. Addition of salt to Codonopsis lanceolata and Cornus officinalis did not affect its antioxidative activities. In spite of fourfold addition of Codonopsis lanceolata to Cornus officinalis, the antioxidative activity was conserved at 90%. The fibrinolytic activities of Codonopsis lanceolata and Cornus officinalis were 0.78 plasmin unit/ml and 1.74 plasmin unit/ml, respectively. Addition of salt decreased the fibrinolytic activities of both Codonopsis lanceolata and Cornus officinalis. A mixture (3:1) of Codonopsis lanceolata and Cornus officinalis exhibited a 21% increase in activity. The ${\alpha}$-glucosidase inhibitory activities of Codonopsis ianceoiata and 100-fold diluted Cornus officinalis were 25% and 73%, respectively. The addition of salt to Codonopsis lanceolata and Cornus officinalis slightly decreased their ${\alpha}$-glucosidase inhibitory activities. According to the addition of Cornus officinalis to Codonopsis lanceoiata, the ${\alpha}$-glucosidase inhibitory activities of the resulting mixture were highly increased. We anticipate that these results will be used as basic data for the development of new bifunctional foods.
Subtilisin QK, which is newly identified as a fibrinolytic enzyme from Bacillus subtilis QK02, has the ability of preventing nitrotyrosine formation in bovine serum albumin induced by nitrite, hydrogen peroxide and hemoglobin in vitro verified by ELISA, Western-blot and spectrophotometer assay. Subtilisin QK also attenuates the fluorescence emission spectra of bovine serum albumin in the course of oxidation caused by nitrite, hydrogen peroxide and hemoglobin. Furthermore, subtilisin QK could suppress the transformation of oxy-hemoglobin to met-hemoglobin caused by sodium nitrite, but not the heat-treated subtilisn QK. Compared with some other fibrinolytic enzymes and inactivated subtilisin QK treated by phenylmethylsulfonylfluoride, the ability of inhibiting met-hemoglobin formation of subtilisin QK reveals that the anti-oxidative ability of subtilisin QK is not concerned with its fibrinolytic function. Additionally, nitrotyrosine formation in proteins from brain, heart, liver, kidney, and muscle of mice that is intramuscular injected the mixture of nitrite, hydrogen peroxide and hemoglobin is attenuated by subtilisin QK. Subtilisin QK can also protect Human umbilical vein endothelial cell (ECV-304) from the damage caused by nitrite and hydrogen peroxide.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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